技术领域
本发明涉及检测领域，更具体地说，涉及一种铅-IgM螯合物及其制备方法 和应用。
背景技术
血清中IgM是由5个单体通过一个J链和二硫键连接成五聚体，分子量最 大，为970kD，沉降系数为19S，称为巨球蛋白(macroglobulin)。在分子结构 上IgM无铰链区，Cμ2可能替代了铰链区的功能。在生物进化过程中IgM是最 早出现的免疫球蛋白。在个体发育过程中，无论是B细胞膜表面Ig(SmIg)， 还是合成分泌到血清中的Ig，IgM都是最早出现的Ig，在胚胎发育晚期的胎儿 即有能力产生IgM。在抗原刺激诱导体液免疫应答过程中，一般IgM也最先产 生。IgM占血清总Ig的5％～10％。由于IgM在免疫应答早期产生，并在补体参 与下的溶血作用比IgG强500倍以上，而且活化补体后通过C3b、C4b等片段发 挥调理作用，因此IgM在机体的早期免疫防护中占有重要地位。天然的血型抗 体(凝集素)为IgM，血型不符的输血，易发生严重的溶血反应。IgM不能过胎 盘，脐血中如出现针对某种病原微生物的IgM，表示胚胎期有相应病原微生物如 梅毒螺旋体、风疹或巨细胞毒等感染，称为胚胎感染或垂直感染。正常人血清中 也含有产量单体IgM。
铅在体内的含量超过一定水平就会对健康引起难以恢复的损害,它可以铅 烟，铅尘和各种氧化物形式被人体经呼吸道和消化道摄入体内，通过与钙离子的 竞争作用,氧化损伤,细胞凋亡等机制，引起以神经、消化、造血系统障碍为主的 全身性、渐进性、持久性不可逆性疾病，而且其危害还可能遗传到下一代。贫血 是铅中毒的早期症状之一，铅可抑制血红素合成过程中许多酶的活性。铅中毒可 致血管痉挛、腹绞痛、视网膜小动脉痉挛和高血压，时常导致细小动脉硬化。铅 的肾损害常表现为间质性肾炎或萎缩性肾炎等病变，肾小管重吸收功能下降是早 期的症状。铅接触还可能影响生殖功能，接触铅的女性发生不孕症、流产及死胎 的机率增多，并可通过胎盘转移到胎儿身上。经口铅中毒者肝脏为主要受损器官 之一,可引起肝肿大呈现黄疸，甚至肝硬变或肝坏死，肝损害可能是肝内小动脉 痉挛引起局部缺血所致。铅引起卟啉代谢障碍、抑制含巯基酶,干扰植物神经。
研究发现发铅测定误差大，齿铅、骨铅及组织铅取材不易，而尿铅主要反映 铅排泄情况。2006年中国《儿童高铅血症和铅中毒预防指南》规定，儿童血铅 水平的筛查可以采用末梢血或静脉血，但诊断必须采用静脉血。但影响机体免疫 球蛋白的蛋白结合铅的含量从未有过检测。
综合以上，关于铅中毒，特别是慢性铅中毒的评价，仅能通过检测血铅含量， 间接反应人体内的循环铅含量，无法进一步评估铅对于机体功能的损伤程度，而 随着科学技术的飞速发展，铅与人体的关系也日益紧密，因而寻找一种可以从机 体功能角度评价铅中毒，特别是慢性铅中毒对于机体的损害程度的评价方式日益 重要。
发明内容
针对铅污染严重的问题，本发明的目的在于提供一种铅-IgM螯合物及其制 备方法，并建立铅-IgM螯合物的定性、定量检测方法，以便定量检测铅-IgM螯 合物在评价一个地区铅污染程度的应用。通过定量检测一个地区人群血清中铅 -IgM螯合物可以间接反映这个地区人群受铅污染的情况，从而间接反映这个地 区铅污染程度。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是：提供一种铅-IgM螯合物，铅 离子与IgM通过巯基或/和半胱氨酸残基螯合而成。
本发明还提供一种上述的铅-IgM螯合物的制备方法，包括以下步骤：
A)铅与IgM的螯合反应：在人源的IgM中加入铅离子进行螯合反应，得 到反应溶液；
B)纯化铅-IgM螯合物的提取：采用免疫亲和层析法，去除反应溶液中未反 应的IgM以及多余的铅离子，即得铅-IgM螯合物。
其中，体外合成法中所述步骤B)具体如下：
(1)溶解样品：向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水，使铅-IgM 螯合物复溶；
(2)平衡层析柱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路，在层析柱中装入能 与IgM特异性结合的填料，装柱后，继续使用稀释缓冲液平衡层析柱；
(3)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品，然后上 柱，IgM与填料特异性结合；
(4)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.05-0.1mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(5)收集：收集经过步骤(4)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白复 性；
(6)透析：将步骤(5)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析除 盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本；
(7)平衡层析柱：采用新的层析柱，用稀释缓冲液冲洗管路，在该层析柱 中装入能与铅特异性结合的填料，装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱；
(8)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本，然后上 柱；
(9)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.5-1.0mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(10)收集：收集经过步骤(9)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白 复性；
(11)透析：将步骤(10)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析 除盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本，即得铅-IgM螯合物。
其中，上述铅-IgM螯合物的制备方法，还包括步骤C)：对铅-IgM螯合物 的鉴定；
其中，步骤C)中具体如下：
(1)制备胶床：以琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种作为介质制备胶 床；
(2)加样：取步骤B)中提取纯化得到的铅-IgM螯合物，加入稀释缓冲液， 并混匀，然后加样于样品槽中；
(3)电泳：连接电泳板，进行电泳；
(4)检测：在胶床上找出含铅的蛋白条带，将该蛋白条带取出，将蛋白条 带复溶，然后再采用ICP-MS法、AAS法或ELISA法检测是否含有铅以及检测 铅的含量。
本发明还提供一种如上述的铅-IgM螯合物在制备检测人体内铅-IgM螯合物 的试剂或试剂盒中的应用。
本发明还提供一种至少包括如上述的铅-IgM螯合物作为对照品的试剂盒。
优选地，该试剂盒中还包括包被液，该包被液含有可捕获IgM的蛋白或捕 获金属铅的物质。
本发明还提供一种定量检测铅-IgM螯合物的方法，以已知含量的上述的铅 -IgM螯合物作为对照品，采用以下方法之一对样品进行检测：酶联免疫法、酶 联免疫与原子吸收光谱结合法、酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法、提纯 铅-IgM螯合物与酶联免疫结合法、提纯铅-IgM螯合物与原子吸收光谱结合法、 提纯铅-IgM螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法、电泳与酶联免疫或原子吸 收光谱或电感耦合等离子体质谱结合法。
实施本发明的铅-IgM螯合物及其制备方法和应用，具有以下有益效果：
1.本发明首次体外合成铅-IgM螯合物；
2.本发明首次提出铅-IgM螯合物可用于制备检测血样中铅-IgM螯合物的试 剂或试剂盒中的应用。
3.本发明建立了铅-IgM螯合物的定性定量检测方法，以便定量检测铅-IgM 螯合物在评价一个地区铅污染程度的应用。通过定量检测一个地区人群血清中铅 -IgM螯合物可以间接反映这个地区人群受铅污染的情况，从而间接反映这个地 区铅污染程度。本发明建立的铅-IgM螯合物定量检测方法其准确度大大提高， 并且使检测的重复性得到大大提高。
附图说明
图1为本发明所述的铅-IgM螯合物的非变性电泳条带图；
图2为本发明所述的铅-IgM螯合物的同步辐射X线电泳条带的荧光分析 图；
其中，图1中，M为Marker，2为铅-IgM螯合物；图2中，横坐标为蛋白 条带位置，纵坐标为该蛋白条带中铅金属能量。
具体实施方式
下面，结合具体实施方式，对本发明做进一步描述：
本发明除特别说明外，涉及的实验操作步骤均为本领域常规的步骤，所用试 剂、材料如下述所列举，在本发明中没有列举出来的均为本领域常用的试剂或可 以通过市购方式获得：
提取试剂为PEG溶液、硼酸盐缓冲液等(采用PEG法)；
胶床介质为琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种；
本发明中的所述能与IgM特异性结合的填料，为表面附有能捕获IgM的蛋 白的硅胶或树脂；
本发明中的能捕获IgM的蛋白(抗IgM抗体)，包括但不限于兔Anti-人 类IgMH&L，其品牌为Abcam、型号为ab8505；
本发明中的能与铅特异性结合的填料，为表面附有能捕获铅的物质的硅胶 或树脂；
本发明中的能捕获铅的物质，包括但不限于鼠抗PbmAb，购买自巴傲德生 物技术公司(BioWorldInc)、货号为AP7019；
酶标抗体为含有辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体中的一种；
底物为甲基联苯胺(TMB)溶液；
洗涤液为含有KH2PO40.2mg/ml、Na2HPO4·12H2O2.90mg/ml、NaCl 8.0mg/ml、KCl0.2mg/ml、0.5％Tween-20的pH为7.4的0.15MPBS溶液；
封闭液为1％-5％牛血清白蛋白或脱脂奶粉；
稀释缓冲液为含1.5mg/mLNa2CO3、2.93mg/mlNaHCO3的PH为9.6的0.05M 磷酸盐缓冲液；
酶标抗体为HRP酶标抗体；
终止液为：将21.7ml的2MH2SO4定容至200ml的ddH2O中；
洗脱液为含1-2mg/ml木瓜蛋白酶的PH为8.0的0.1mol/LTris-HCL缓冲液；
酸化剂为硝酸；
上样缓冲液为含有1MTris-HCl(pH6.8)15.5mL、1％溴酚蓝2.5mL、 ddH2O7mL、甘氨酸25mL的Samplebuffer(5X)；
电泳缓冲液为含Tris3mg/ml、甘氨酸14.4mg/ml的PH为6.8的ddH2O溶 液。
本发明还提供一种铅-IgM螯合物的制备方法，包括以下步骤：
A)铅与IgM的螯合反应：在人源的IgM或按照生物学方法重组的IgM中 加入铅离子进行螯合反应，得到反应溶液；
B)纯化铅-IgM螯合物的提取：采用免疫亲和层析法，去除反应溶液中未反 应的IgM以及多余的铅离子，即得铅-IgM螯合物，具体步骤如下：
(1)溶解样品：向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水，使铅-IgM 螯合物复溶
(2)平衡层析柱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路，在层析柱中装入能 与IgM特异性结合的填料，装柱后，继续使用稀释缓冲液平衡层析柱；
(3)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品，然后上 柱，IgM与填料特异性结合；
(4)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.05-0.1mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(5)收集：收集经过步骤(4)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白复 性；
(6)透析：将步骤(5)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析除 盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本；
(7)平衡层析柱：采用新的层析柱，用稀释缓冲液冲洗管路，在该层析柱 中装入能与铅特异性结合的填料，装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱；
(8)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本，然后上 柱；
(9)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.5-1.0mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(10)收集：收集经过步骤(9)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白 复性；
(11)透析：将步骤(10)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析 除盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本，即得铅-IgM螯合物；
C)对铅-IgM螯合物的鉴定，具体步骤如下：
(1)制备胶床：以琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种作为介质制备胶 床；
(2)加样：取步骤B)中提取纯化得到的铅-IgM螯合物，加入稀释缓冲液， 并混匀，然后加样于样品槽中；
(3)电泳：连接电泳板，进行电泳；
(4)检测：在胶床上找出含铅的蛋白条带，将该蛋白条带取出，将蛋白条 带复溶，然后再采用ICP-MS法、AAS法或ELISA法检测是否含有铅以及检测 铅的含量。
本发明还提供一种至少包括如上述的铅-IgM螯合物作为对照品的试剂盒。
优选地，该试剂盒中还包括包被液，该包被液含有可捕获IgM的蛋白或可 捕获金属铅的物质。
在本发明中，能实现本发明目的的试剂盒可以列出以下几种，但并不限于 此。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：含有可捕获IgM的蛋白的 包被液、封闭液、洗涤液、作为二抗的可捕获铅的物质、酶标抗体、底物、终止 液、稀释缓冲液、上样缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：含有可捕获IgM的蛋白的 包被液、封闭液、洗涤液、洗脱液、上样缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：含有可捕获IgM的蛋白的 包被液、封闭液、洗涤液、洗脱液、上样缓冲液、酸化剂、过氧化氢、标准品、 阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：作为提纯全血中IgM所需 提取试剂、复溶液、含有可捕获铅的物质的包被液、封闭液、洗涤液、酶标抗体、 底物、终止液、稀释缓冲液、上样缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：作为提纯全血中IgM所需 提取试剂、复溶液、上样缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：作为提纯全血中IgM所需 提取试剂、上样缓冲液、复溶液、酸化剂、过氧化氢、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：含有可捕获IgM的蛋白的 包被液、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含铅的蛋白条带所需液体、 含有可捕获铅的物质的包被液、封闭液、洗涤液、酶标抗体、底物、终止液、稀 释缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：作为提纯全血中IgM所需 提取试剂、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含铅的蛋白条带所需液 体、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中铅-IgM螯合物的试剂盒，包括：作为提纯全血中IgM所需 提取试剂、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含铅的蛋白条带所需液 体、酸化剂、过氧化氢、阳性对照、阴性对照等。
上述几种试剂盒中，所述阳性对照为标准品，即螯合有重金属铅的IgM螯 合物或螯合有重金属铅的BSA螯合物；所述阴性对照为稀释缓冲液。
上述试剂盒用于检测螯合铅的IgM，以提高检测的准确性，重复性，并使之 在临床中得到推广。
本发明还提供一种定量检测铅-IgM螯合物的方法，以已知含量的上述的铅 -IgM螯合物作为对照品，采用以下方法之一对样品进行检测：酶联免疫法、酶 联免疫与原子吸收光谱结合法、酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法、提纯 铅-IgM螯合物与酶联免疫结合法、提纯铅-IgM螯合物与原子吸收光谱结合法、 提纯铅-IgM螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法、电泳与酶联免疫或原子吸 收光谱或电感耦合等离子体质谱结合法。在本发明中，用检测铅螯合型免疫复合 物的方法可以列出的有以下几种，但并不限于以下几种。
其中，上述定量检测铅-IgM螯合物的方法中采用的试剂如下：
方法一：酶联免疫法(ELISA法)检测铅-IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)将能够捕获IgM的物质，如人IgM抗体包被于固相载体上：用稀释缓冲 液稀释抗IgMAb至500-4000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜16-18小时， 或37℃水浴1-3小时，储存冰箱；
2)从循环系统取全血，作待检样品，1000rmp离心5-8分钟，离心弃去沉 淀；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以 1％-5％牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并 用洗涤液进行洗涤，洗涤完成后，ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至相应倍数，即稀释10-40倍， 加入微孔中，37℃作用1-2小时；
5)加入可以捕获铅的物质，并且温育：移去待检样品，并用洗涤液进行洗 涤，待洗涤完成后，加入用稀释缓冲液稀释与可以捕获铅的物质或能与铅反应形 成抗原抗体复合物的抗pbAb，37℃作用1-2小时，使抗pbAb与IgM上的金属 铅反应；
6)酶结合物温育：移去抗铅抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后， 加入用稀释缓冲液稀释的酶标抗体，使稀释的酶标抗体的浓度为2μg/ml，37℃ 作用1-2小时，使其与酶标抗体反应；
7)底物温育：移去酶标抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入 底物，37℃避光作用30分钟；
8)终止反应：滴加终止液至每一微孔；
9)取波长405nm，加完终止液后，将ELISA板置于在酶标仪上分别读取待 检样品和标准品的OD值，通过绘制标准曲线，求得待检样品的含量(也可不使 用酶标仪，直接通过染色情况进行定性检测)。
该方法利用ELISA原理，可以将全血中的特异性IgM提取出来，提取出来 的IgM上部分螯合有重金属铅，而这部分IgM上的铅可以被抗铅的特异性抗体 所捕获，之后可以再被辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体所捕获(该 抗体不识别包被蛋白)，捕获上的抗体在显色剂及终止液的作用下，可以在仪器 下读出OD值，而不含有螯合金属铅的IgM，则不会被抗铅的特异性抗体所捕获， 也不会与辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体所捕获，而所用试剂中也 不含有金属铅(阴性对照组结果为阴性)，因而当所读取的OD值结果显示为阳 性时，即可证明检测出IgM上螯合的金属铅。
方法二：酶联免疫与原子吸收光谱结合法(ELISA法+AAS法)检测铅-IgM 螯合物按照如下步骤检测：
1)将能够捕获IgM的物质，如人IgM抗体包被于固相载体上：用稀释缓冲 液稀释抗IgMAb至500-4000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜16-18小时， 或37℃水浴1-3小时，储存冰箱；
2)从循环系统取全血，作待检样品，1000rpm离心5-8分钟，离心弃去沉 淀；
3)封闭：移去包被液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以1％-5％ 牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤 液进行洗涤，洗涤完成后，ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至相应倍数，即稀释10-40倍， 加入微孔中，37℃作用1-2小时；
5)洗脱：移去待检样品，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，用洗脱液 洗脱1-3小时。
6)检测：从ELISA微孔中取样，于原子吸收光谱仪检测螯合于IgM上的铅， 并绘制标准曲线，读出相应数值；
该实施例利用ELISA原理的基础上结合原子吸收光谱(AAS)原理，利用 原子吸收光谱仪检测螯合于IgM上的铅，由于溶液中仅含有IgM，且所用试剂 中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性)，不会对结果造成干扰，因而当所 读取的结果显示为阳性时，即可证明检测出IgM上螯合的金属铅。
方法三：酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法(ELISA法+ICP-MS法) 检测铅-IgM螯合物按照如下步骤检测：
1)将能够捕获IgM的物质，如人IgM抗体包被于固相载体上：用稀释缓冲 液稀释抗IgMAb至500-4000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜16-18小时， 或37℃水浴1-3小时，储存冰箱；
2)从循环系统取全血，作待检样品，1000rmp离心5-8分钟，离心弃去沉 淀；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以 1％-5％牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并 用洗涤液进行洗涤，洗涤完成后，ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至相应倍数，即稀释10-40倍， 加入微孔中，37℃作用1-2小时；
5)洗脱：移去待检样品，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，用洗脱液 洗脱1-3小时。
6)酸化：在步骤5)中的溶液中加入相应酸化剂对溶液进行酸化，封口过 夜，彻底酸化；
7)检测：加入过氧化氢，并且加热赶酸，并从ELISA试剂板中洗脱的溶液 中取样，于电感耦合等离子体质谱仪下检测螯合于IgM的铅，并绘制标准曲线， 读出相应数值。
该方法在利用ELISA原理的基础上，结合感耦合等离子体质谱(ICP-MS) 原理，用电感耦合等离子体质谱仪检测螯合于IgM上的铅，由于溶液中仅含有 IgM，且所用试剂中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性)，不会对结果造 成干扰，因而当所读取的结果显示为阳性时，即可证明检测出IgM上螯合的金 属铅。
方法四：提纯铅-IgM螯合物与酶联免疫结合法(提纯法+ELISA法)检测铅 -IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法采用全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复 溶液；
2)将抗pbAb包被于固相载体上：用稀释缓冲液稀释抗pbAb至 50000-400000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜16-18小时，或37℃水浴1-3 小时，储存冰箱；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以 1％-5％牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并 用洗涤液进行洗涤，洗涤完成后，ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时；
4)加待检样品，并且温育：从提取的IgM的复溶液中取样，作待检样品； 以已知含量的铅-IgM螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释相应倍数，即稀释 10-40倍，加入微孔中，37℃作用1-2小时；
5)酶结合物温育：移去IgM的复溶液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成 后，加入用稀释缓冲液稀释的酶标抗体，使稀释的酶标抗体的浓度为2μg/ml，， 37℃作用1-2小时，使其与酶标抗体反应；
6)底物温育：移去酶标抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入 底物，37℃避光作用30分钟；
7)终止反应：滴加终止液至每一微孔；
8)取波长405nm，加完终止液后，将ELISA板置于在酶标仪上分别读取待 检样品和标准品的OD值，通过绘制标准曲线，求得待检样品的含量(也可不使 用酶标仪，直接通过染色情况进行定性检测)。
方法五：提纯铅-IgM螯合物与原子吸收光谱结合法(提纯法+AAS法)检 测血样中铅-IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法从全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复溶 液；
2)检测：从步骤1)中的复溶液中取样，于原子吸收光谱仪检测螯合于IgM 上的铅，并绘制标准曲线，读出相应数值。
方法六：提纯铅-IgM螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法(提纯法 +ICP-MS法)检测铅-IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法从全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复溶 液；
2)酸化：从步骤1)中的复溶液中取样，在溶液中加入相应酸化剂(如硝 酸)对溶液进行酸化，封口过夜，彻底酸化；
3)检测：加入过氧化氢，并且加热赶酸，并从相应溶液中取样，于电感耦 合等离子体质谱仪下检测螯合于IgM上的铅，并绘制标准曲线，读出相应数值。
方法七：电泳与酶联免疫法(电泳法-ELISA法)检测铅-IgM螯合物，按照 如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法从全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复溶 液；
2)制备胶床：根据需要选择琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶或SDS-聚丙烯酰 胺凝胶等作为介质，按照常规方法制备好相应胶床；
3)加样：取步骤1)中的复溶液8μL加入2μL上样缓冲液，混匀，短暂 离心；(注意此处步骤不能煮)
4)电泳：连接电泳板，进行电泳分离；
5)检测：在胶床上找出含有铅的蛋白条带，将该条带取出，将该蛋白条带 复溶，然后再利用ELISA原理检测溶于液体中的铅含量。此外，还可以利用此 方法检测螯合铅的IgM的等电点、分子量及含量等。
方法八：电泳与原子吸收光谱法(电泳法-AAS法)检测铅-IgM螯合物， 按照如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法从全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复溶 液；
2)制备胶床：根据需要选择琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶或SDS-聚丙烯酰 胺凝胶等作为介质，制备好胶床；
3)加样：从步骤1)中的复溶液中取样，加入上样缓冲液，并混匀，然后 加样于样品槽中；
4)电泳：连接电泳板，进行电泳分离；
5)检测：在胶床上找出含有铅的蛋白条带，将该条带取出，将该蛋白条带 复溶，然后再利用AAS原理检测溶于液体中的铅含量。此外，还可以利用此方 法检测螯合铅的IgM的等电点、分子量及含量等。
方法九：电感耦合等离子体质谱结合法(电泳法-ICP-MS法)检测铅-IgM 螯合物，按照如下步骤检测：
1)从全血中提取IgM：采用聚乙二醇PEG沉淀法、超速离心、分子超滤、 凝胶过滤等方法从全血提取法将血液的提纯出来的IgM复溶，得到IgM的复溶 液；
2)制备胶床：根据需要选择琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶或SDS-聚丙烯酰 胺凝胶等作为介质，制备好胶床；
3)加样：从步骤1)中的复溶液中取样，加入上样缓冲液，并混匀，然后 加样于样品槽中；
4)电泳：连接电泳板，进行电泳分离；
5)检测：在胶床上找出含有铅的蛋白条带，将该条带取出，将该蛋白条带 复溶，然后再利用ICP-MS原理检测溶于液体中的铅含量。此外，还可以利用此 方法检测螯合铅的IgM的等电点、分子量及含量等。
方法七至九中的IgM可以用多种方法提纯出来(例如超速离心法，高压液 相层析法，凝胶过滤层析法，凝胶电泳法，ELISA方法等)，将提纯出来的IgM 复溶，得到IgM的复溶液，取一定量的IgM，利用电荷移动原理，进行电泳 (electrophoresis，EP)，在凝胶板(可根据需要采用不同介质)上可根据分子 量、等电点等不同跑出不同的条带，寻找出富含铅的相应条带，将凝胶中的蛋白 质用相应复溶剂复溶于溶液中，即可以在特定波长下检测相关IgM的含量，也 可以利用ELISA、AAS、ICP-MS等原理检测出螯合于IgM上的铅含量，由于溶 液中仅含有IgM，且所用试剂中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性)，不 会对结果造成干扰，因而当所读取的结果显示为阳性时，即可证明检测出IgM 上螯合的金属铅。
实施例1：铅-IgM螯合物的制备方法，包括以下步骤：
A)铅与IgM的螯合反应：在人源的IgM中加入铅离子进行螯合反应，得 到反应溶液；
试剂配制：
1)硼酸盐缓冲液(0.01M)：称取0.31g硼酸溶于400ml超纯水中，用0.1M 的NaOH调节pH至9.0，定容至500mL。
2)IgM溶液：称取4.0mgIgM溶于4.0mL0.01MpH9.0硼酸盐缓冲液中，充 分振荡溶解，配制成1.0mg/mL的蛋白溶液；
3)5mmol/LEDTA+200mmol/LNaHCO3溶液：称取EDTA·2H2O1.86g、 NaHCO316.8g溶于900mL超纯水中，用1.0MNaOH调整pH至8.0定容至 1000ml，高压灭菌，室温保存；
4)ITCBE(购买自日本同仁化学研究所，货号M030)
5)透析袋(截留分子量14000)(BioshopInc)
制备步骤具体为：
1)透析袋的处理：将透析袋放入500ml(根据烧杯体积可变换用量)体积 的5mmol/LEDTA+200mmol/LNaHCO3溶液中，煮沸10min；倾弃EDTA/NaHCO3液，用超纯水轻轻漂洗，再用500ml5mmol/LEDTA煮沸10min；弃掉煮沸液， 彻底用超纯水清洗，加入大量的超纯水浸泡透析袋4℃过夜。使用时，戴上手套， 取出透析袋，用大量的超纯水彻底冲洗其内外表面；
2)取2.0mgITCBE溶于2mlDMSO中；
3)取4.0mgIgM溶于4.0ml硼酸盐缓冲溶液中(0.01MpH9.0)中；
4)缓慢将步骤2制备的液体加入IgM溶液中，边滴加边震荡，于25℃， 100r/min的摇床中作用24h，然后用透析袋透析24h，除去未与IgM结合的ITCBE；
5)将透析所得的液体用1mol/LHCl调节pH值至7.0，然后缓慢逐渐滴加 80μl1mmol/L铅离子溶液，边滴加边振荡，以免铅离子使蛋白变性沉淀；
6)将加好的溶液在25℃，100r/min的摇床中反应2h，用处理好的透析袋进 行透析24h；
7)将透析后的液体于-20℃分装保存。
B)纯化铅-IgM螯合物的提取：采用免疫亲和层析法，去除反应溶液(即步 骤A中7)的透析后的液体)中未反应的IgM以及多余的铅离子，即得铅-IgM 螯合物，具体步骤如下：
(1)溶解样品：向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水，使铅-IgM 螯合物复溶；
(2)平衡层析柱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路，在层析柱中装入能 与IgM特异性结合的填料，装柱后，继续使用稀释缓冲液平衡层析柱；
(3)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品，然后上 柱，IgM与填料特异性结合；
(4)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.05-0.1mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(5)收集：收集经过步骤(4)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白复 性；
(6)透析：将步骤(5)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析除 盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本；
(7)平衡层析柱：采用新的层析柱，用稀释缓冲液冲洗管路，在该层析柱 中装入能与铅特异性结合的填料，装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱；
(8)上样：待层析柱平衡后，用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本，然后上 柱；
(9)洗脱：使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡，然后使用0.5-1.0mol/L 的磷酸盐溶液进行洗脱；
(10)收集：收集经过步骤(9)洗脱后的洗脱液，收集完毕后立即使蛋白 复性；
(11)透析：将步骤(10)中的收集的洗脱液，装透析袋，用ddH2O透析 除盐，换水三次后，4℃透析过夜，收集样本，即得铅-IgM螯合物；
C)对铅-IgM螯合物的鉴定，具体步骤如下：
(1)制备胶床：以琼脂糖凝胶作为介质制备胶床；
(2)加样：取步骤B)中8μL提取纯化得到的铅-IgM螯合物，加入2μL上 样缓冲液，并混匀，然后加样于样品槽中；
(3)电泳：连接电泳板，加入电泳缓冲液进行电泳；电泳过程中，电流为 22mA恒流，环境温度为4度；至溴酚蓝移至胶底部时停止电泳；
(4)检测：在胶床上找出含铅的蛋白条带，将该蛋白条带取出，将蛋白条带复 溶，然后再采用AAS法检测是否含有铅以及检测铅的含量。
D)检测结果
(1)电泳结果：
其中，图1为本发明所述的铅-IgG螯合物的非变性电泳条带图。
(2)同步辐射X荧光分析：
蛋白条带内微量元素含量的SRXRF分析在北京正负电子对撞机(BEPC)的 4W1"同步辐射束线上完成。储存环中电子束流能量为2.2GeV，束流强度100 mA。样品移动台(TSA200型，北京卓立汉光公司)可在计算机控制的步进马达 驱动下沿X、Y二维方向上移动以改变入射光斑位置，移动步长为0.0025mm。 从样品发射出的X射线由Si(Li)探测器(PGTInc.LS30143-DS)探测，探头与入 射SR线共平面且相互垂直，距样品照射点20mm，信号用PGT多道分析仪(MCA 4000)获取输出。用11.5keV的单色同步辐射光激发样品，调节入射光斑(1mmx 3mm)位置使之处于条带一端，在300s的测定时间内，光斑一直沿条带均匀缓 慢移动，计数结束时光斑移到该条带另一端。沿电泳方向每1mm取一个谱。采 用AXIL软件处理数据，并用来源于空气且含量恒定的Ar信号峰对其它元素峰 进行归一处理，以抵消束流强度变化对信号强弱产生的影响。在相同的条件下以 同样的方式测量定量标准干胶膜的荧光谱。
图2为本发明所述的铅-IgM螯合物的同步辐射X线电泳条带的荧光分析图， 图中横坐标为蛋白条带位置，纵坐标为该蛋白条带中铅金属能量(含量)值。
(3)采用石墨炉原子吸收光谱法(AAS)初步测定本实施例得到的铅-IgG 螯合物中的铅含量，其含量为591.339μg/L。
本发明一种定量检测铅-IgM螯合物的方法的检测条件的确定：
1.补体蛋白最佳工作浓度以及血浆的最佳稀释倍数的确定
步骤如下：
(1)将抗IgMAb用稀释缓冲液按照以下质量体积比(稀释度)1:500、1:1000、 1:2000、1:4000进行稀释，加入ELISA板微孔中，将抗IgMAb包被于固相载体 上，每个浓度包被三排，4℃过夜18小时；
(2)移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，用2％牛血清 白蛋白作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤液进行洗涤；
(3)待检样品用稀释缓冲液按照以下质量体积比(稀释度)1:10、1:20、1:40 进行稀释，加入微孔中，按照上述包被的抗IgMAb浓度，同一个浓度的抗IgMb Ab的分别加入不同稀释度血浆，37℃作用1小时；
(4)移去待检样品，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入抗pbAb， 抗pbAb用稀释缓冲液按照以下质量体积比(稀释度)1:50000、1:100000、 1:200000、1:400000进行稀释，按照每一个相同抗IgMAb、血清稀释浓度，不 同浓度抗pbAb各加2孔，37℃作用1小时，使抗pbAb与IgM上的金属铅反 应；
(5)酶标抗体选择最适工作浓度，即2ng/ml，移去抗pb抗体，并用洗涤液 进行洗涤，待洗涤完成后，加入用稀释缓冲液稀释HRP酶标抗体，37℃作用1 小时，使HRP酶标抗体与铅-IgM螯合物反应；
(6)移去酶标抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入底物，37℃ 避光作用30分钟；
(7)滴加终止液至每一微孔；
(8)取波长405nm，加完终止液后，将ELISA板置于在酶标仪上分别读取 各孔OD值。根据各孔OD值数值，选择抗IgMAb、抗pb-Ab的最佳工作浓度 以及血浆的最佳稀释倍数。
试验中同时以所制对照品作为阳性对照，选择IgM抗体+封闭+pb抗+酶标+ 底物(即不加检测样本)作为阴性对照1、IgM抗体+封闭+血浆+酶标+底物(即 不加pb抗)作为阴性对照2、IgM抗体+封闭+酶标+底物(即不加检测样本和 pb抗)作为阴性对照3、IgM抗体+封闭+血浆+pb抗+底物(即不加酶标)作为 阴性对照4，封闭+血浆+pb抗+酶标+底物(即不加IgM抗体)作为空白对照1， 只加底物及PBS作为空白对照2；检测结果见表1-2。
表1：抗IgMAb和pb抗体最佳工作浓度以及血浆稀释倍数的确定
表2：ELISA阳性对照及阴性对照ELISA检测结果
由表1-2数据显示，我们可以看出当人IgM抗体的稀释度为1:1000、全血稀 释度为1:10、pb抗稀释度为1:50000时，OD值最大，虽然OD值小于0.8，但 是其所对应的阴性对照组OD值全部小于0.1，并且其所对应的阳性对照组，OD 值大于0.8，所以选此值所对应的浓度作为最佳工作浓度(即人IgM抗体浓度为 1:1000，全血稀释度为1:10，pb抗稀释浓度为1:50000)。
2.ELISA洗脱液最佳工作浓度及时间确定
步骤如下：(1)将人IgM抗体用稀释缓冲液稀释至1000倍(质量体积比)， 加入ELISA板微孔中，37℃水浴3小时，储存冰箱；
(2)移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，用2％牛血清 白蛋白作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤液进行洗涤；
(3)移去封闭液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入用稀释缓冲 液稀释的HRP酶标抗体，37℃作用2小时，使其与人IgM抗体反应；
(4)准备洗脱液：将木瓜蛋白酶用pH8.0,0.1mol/LTris-HCI缓冲液配制成 1-2mg/ml，再加入1mmol/L二硫苏糖醇(DTT)37℃孵育30min；
(5)移去酶标抗体，用稀释缓冲液对洗脱液进行稀释，使洗脱液中的木瓜 蛋白酶浓度：酶标抗体浓度比＝1:80、1:40、1:20、1:10、1:5，其中，每个浓度作 3个复孔，分别放置于37℃温度下洗脱1h、2h、3h；
(6)移去洗脱液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入底物，37℃ 避光作用30分钟；
(7)滴加终止液至每一微孔；
(8)取405nm波长，加完终止液后，将ELISA板置于在酶标仪上分别读 取每组OD值，通过与PBS缓冲液组比较，比较出洗脱液的最适浓度及洗脱时 间，具体结果参见表3。
表3：ELISA洗脱液最佳工作浓度及洗脱时间确定
1:5 1:10 1:20 1:40 1:80 1h 0.281 0.168 0.081 0.114 0.469 2h 0.250 0.115 0.050 0.183 0.438 3h 0.225 0.106 0.100 0.196 0.441
从表4中我们可以发现，洗脱液中的木瓜蛋白酶的浓度与酶标抗体的浓度之 比＝1:20时，即木瓜蛋白酶的浓度100ng/ml时，各组OD值均低于其他几组，说 明该浓度洗脱液洗脱效果最优(即将ELISA孔壁上结合的人IgM抗体-酶标复 合物洗脱程度达到最大，因而OD值最低)；而作用时间不管是1h、2h、3h， 各组OD值变化均不大，可见随着时间的延长，酶活力逐渐减弱，在酶浓度不变 的情况下，延长消化时间并不能提高消化率，所以本实验中洗脱液的作用时间为 1-3h皆可。
应用实施例1
取采用ELISA法检测100份标本血浆中的铅-IgM螯合物，按照以下步骤进 行检测：酶联免疫法(ELISA法)检测铅-IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)将抗IgMAb包被于固相载体上：用稀释缓冲液稀释抗IgMAb至1000 倍，加入ELISA板微孔中，37℃水浴1小时，储存冰箱；
2)从循环系统取全血，作待检样品，再加入甲苯，溶解细胞膜；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加2％ 牛血清白蛋白作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤液进行洗涤， 洗涤完成后，ELISA板于37℃放置1小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至相应倍数，即稀释10倍， 加入微孔中，37℃作用1小时；
5)加入可以捕获铅的物质，并且温育：移去待检样品，并用洗涤液进行洗 涤，待洗涤完成后，加入用稀释缓冲液稀释50000倍，37℃作用1小时，使抗 pbAb与IgM上的金属铅反应；
6)酶结合物温育：移去抗铅抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后， 加入用稀释缓冲液稀释的HRP酶标抗体，37℃作用1小时，使其与酶标抗体反 应；
7)底物温育：移去酶标抗体，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入 底物，37℃避光作用30分钟；
8)终止反应：滴加终止液至每一微孔；
9)取波长405nm，加完终止液后，将ELISA板置于在酶标仪上分别读取待 检样品和标准品的OD值(也可不使用酶标仪，直接通过染色情况进行定性检 测)，检测结果如表4所示。
表4：100份血样标本中铅-IgM螯合物的ELISA检测结果
编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 OD405 0.440 0.658 0.4 0.575 0.348 0.781 0.593 0.348 0.691 0.272 编号 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 OD405 0.405 0.638 0.542 0.615 0.338 0.411 0.279 0.558 0.749 0.625 编号 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 OD405 0.413 0.110 0.320 0.650 0.672 0.271 0.649 0.384 0.353 0.506 编号 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 OD405 0.582 0.123 0.642 0.292 0.463 0.642 0.145 0.588 0.561 0.733 编号 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 OD405 0.715 0.471 0.796 0.485 0.309 0.455 0.704 0.381 0.683 0.479 编号 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 OD405 0.800 0.292 0.584 0.650 0.363 0.182 0.243 0.326 0.706 0.764
编号 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 OD405 0.465 0.384 0.68 0.529 0.337 0.354 0.262 0.759 0.355 0.399 编号 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 OD405 0.201 0.516 0.449 0.457 0.794 0.721 0.325 0.199 0.692 0.584 编号 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 OD405 0.346 0.581 0.533 0.598 0.773 0.604 0.538 0.447 0.472 0.552 编号 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 OD405 0.566 0.558 0.791 0.353 0.435 0.328 0.700 0.362 0.330 0.355
应用实施例2
采用酶联免疫与原子吸收光谱结合法(ELISA法+AAS法)检测100分标本 血样中的铅-IgM螯合物，按照如下步骤检测：
1)将能够捕获IgM的物质，如抗IgM抗体(抗IgMAb)包被于固相载体 上：用稀释缓冲液稀释抗IgMAb至1000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜 18小时；
2)从循环系统取全血，作待检样品，再加入甲苯，溶解细胞膜；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入2％ 牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤 液进行洗涤，洗涤完成后，ELISA板于37℃放置1小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至10倍，加入微孔中，37℃ 作用1小时；
5)洗脱：移去待检样品，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以木 瓜蛋白酶的浓度为100ng/ml的洗脱液，洗脱3小时；
6)检测：从ELISA微孔中取样，于原子吸收光谱仪检测螯合于IgM上的铅， 检测值如表5所示。
表5：100份血样标本中铅-IgM螯合物的AAS检测结果
编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 μg/L 2.271 2.22 3.324 3.071 3.154 3.247 3.231 1.686 2.903 2.227 编号 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 μg/L 2.426 3.241 3.656 1.986 3.473 2.786 2.54 3.047 1.081 2.533 编号 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 μg/L 2.076 3.188 3.156 3.039 2.853 2.545 2.874 2.49 3.334 1.063 编号 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 μg/L 4.000 1.407 2.207 2.944 2.23 2.465 3.431 2.234 1.951 2.929 编号 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 μg/L 3.378 2.363 1.979 3.407 2.568 1.184 4.509 4.488 3.500 2.701 编号 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 μg/L 1.666 2.614 3.138 3.074 3.024 2.815 1.381 2.449 2.918 2.483 编号 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 μg/L 2.275 3.051 3.371 3.282 2.132 3.479 2.816 1.981 3.01 2.544 编号 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 μg/L 1.916 1.972 3.098 1.949 3.468 2.941 2.211 3.399 1.381 1.958 编号 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 μg/L 3.155 1.959 2.84 3.036 2.092 3.282 2.43 2.658 2.681 1.081 编号 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 μg/L 2.680 2.838 2.433 2.702 2.092 3.025 3.446 3.396 3.374 3.643
应用实施例3
采用酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法(ELISA法+ICP-MS法)检 测100分标本血样中的铅-IgM螯合物含量，按照如下步骤检测：
1)将能够捕获IgM的物质，如抗IgM抗体(抗IgMAb)包被于固相载体 上：用稀释缓冲液稀释抗IgMAb至1000倍，加入ELISA板微孔中，4℃过夜 18小时；
2)取100份标准血样作为待检样品，再加入甲苯，溶解细胞膜；
3)封闭：移去稀释缓冲液，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入2％ 牛血清白蛋白作为封闭液，37℃放置1小时，移去封闭液，并用洗涤液进行洗涤， 洗涤完成后，ELISA板于37℃放置1小时；
4)加待检样品，并且温育：加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的铅-IgM 螯合物作标准品；用稀释缓冲液稀释待检样品稀释至10倍，加入微孔中，37℃ 作用1小时；
5)洗脱：移去待检样品，并用洗涤液进行洗涤，待洗涤完成后，加入以木 瓜蛋白酶的浓度为100ng/ml的洗脱液，洗脱3小时；
6)酸化：在步骤5)中的溶液中加入硝酸对溶液进行酸化，封口过夜，彻 底酸化；
7)检测：加入过氧化氢，并且加热赶酸，并从相应溶液中取样，于电感耦 合等离子体质谱仪下检测螯合于IgM的铅，检测值如表6所示。
表6100份标本血样铅-IgM螯合物的ICP-MS检测结果
编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 μg/L 3.268 2.713 2.029 2.556 2.198 1.954 2.879 2.12 1.941 4.060 编号 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 μg/L 3.378 2.423 2.656 3.210 2.309 2.366 1.987 3.174 4.073 2.901 编号 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 μg/L 2.218 3.068 2.669 3.454 2.11 3.328 2.094 2.087 2.210 1.960 编号 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 μg/L 2.158 2.764 1.784 4.499 4.468 2.258 2.163 1.339 3.165 3.440 编号 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 μg/L 2.43 2.632 2.337 1.981 2.859 3.377 3.065 2.537 2.083 2.243 编号 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 μg/L 2.841 2.214 3.034 3.145 1.181 2.779 1.946 3.111 2.382 3.084 编号 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70
μg/L 3.412 1.908 3.334 2.962 3.289 4.440 1.913 3.222 2.608 3.100 编号 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 μg/L 2.898 2.103 2.039 3.186 1.736 2.629 3.327 2.655 3.141 3.158 编号 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 μg/L 3.41 2.935 2.121 2.588 3.341 1.454 2.415 2.433 3.261 2.24 编号 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 μg/L 3.326 2.666 2.734 3.119 3.116 2.887 3.200 1.959 3.105 3.323
对本领域的技术人员来说，可根据以上描述的技术方案以及构思，做出其它 各种相应的改变以及形变，而所有的这些改变以及形变都应该属于本发明权利要 求的保护范围之内。