技术领域
本发明属于分子生物学领域，涉及医学和生物技术，具体的是涉及一种CASP8基因突 变检测特异性引物和液相芯片。
背景技术
CASP8(apoptosis-related cysteine peptidase)基因的全称是半胱氨酸蛋白酶 (apoptosis-related cysteine peptidase)基因，简写为CASP8或caspase8，是一种编码蛋白型 基因，属于半胱氨酸蛋白酶caspase(cysteine-aspartic acid protease caspase)家族，该基因定位 于人2号染色体的长臂33-34，DNA全长2938bp，是单外显子基因，外显子位于202-1818bp 处，mRNA全长2097bp，其中编码序列1998bp，编码665个氨基酸、分子量为73Kd的 驱动蛋白样DNA结合蛋白(kinesin-like DNA binding protein，kinesin-like4，Kid)。CASP8是 CASP家族的第8个成员，因此也被命名为caspase8(caspase family8)。该家族作为非活化 的蛋白酶原，由一系列蛋白结构域，大小蛋白酶亚基组成的，在细胞凋亡活化的执行期起重 要作用。其中CASP8需要由在保守氨基酸末端的蛋白水解过程中产生的二聚酶来激活。它 的基因编码产物由Fas和多种不同的细胞凋亡激活因子诱导，研究表明，caspases对免疫细 胞的生死存亡起决定性作用，其表达或激活异常与包括肿瘤在内的多种疾病有关。caspase-8 由CASP8基因编码，它是死亡配体-受体相互作用介导的细胞凋亡过程的起始型caspase。来 自死亡配体与受体结合的凋亡信号，首先激活caspase-8，后者将凋亡信号传递给caspase-10(由 CASP10基因编码)引起caspase级联反应导致细胞凋亡。在该过程中，CFLAR(由CFLAR基 因编码)对caspase-8起负调节作用。这三个凋亡相关分子在凋亡信号传导过程共同作用，是 细胞凋亡事件中的关键分子。据研究发现，CASP8基因与多种常见肿瘤，包括头颈部鳞状细 胞癌、脑膜瘤、膀胱癌、肺癌、食管癌、结直肠癌、子宫颈癌、乳腺癌的发生风险呈现相关 性。
目前，CASP8基因突变检测方法主要有：Illumina光纤微珠芯片技术、PCR-RFLP技术、 SNPlexTM System技术和荧光定量PCR技术，虽然Illumina光纤微珠芯片技术是高灵敏度和精 确性的高通量检测系统，但是自动化程度低，手工操作比较多，难以满足实际应用的需要， PCR-RFLP法是基于基因突变造成的限制性内切酶识别位点的改变，如位点丢失或产生新位 点，通过PCR扩增某一特定片段，再用限制性内切酶酶切扩增产物，电泳观察片段的大小，
这种方法用于检测酶切位点改变的基因突变，可直接判断基因型，但该法不能用于没有产生 新酶切位点的基因突变检测。SNPlexTM System技术对SNP序列特异性要求较高，不能随意地 分析所选择的单核苷酸多态性位点，难以应用于临床检测诊断，而且该方法操作比较复杂， 不能满足实际应用的需要。而荧光定量PCR技术灵敏度高、特异性强、自动化程度高的特点， 但存在样品易污染、假阳性率高的缺点，且每次只能检测一种突变类型，同样不能满足实际 应用的需要。
本发明目标检测的CASP8基因突变，如表所示：
序号 CASP8基因突变的内容 标记为 1 SEQ ID NO.57的第158位核苷酸开始，发生了6bp缺失 缺失突变
SEQ ID NO.57CASP8基因缺失突变
TGTCTTTACTCTGCATGCCAGGAGCTAAGTATTTTGCATGTATTAACTCATTTTGTTCTCA TAATAACCTTCACATGCAGGAATCATTATAGCTACTTTATGAATGAGCCGAGGAAGGCAC TGAGACGTTAAGTAACTTGCCCAAGGTCACGCAGCTTGGCAGAGCAAGAATT ACTATGGCTTTATAAGCCTAGGAAAAAGTCTGAAAGAATCAAAATGTTAACAGCGGGG ACCTCAAGGAAGCATTGAAGAGGCCATGGGAGAAGTTTTCACTTTGTTAAAAAATCAG TCCTTCAAATAAATAAATACAGTGAGGCTTCCCCAGAAGCAGATGTCACTA
(说明：该序列从第158位碱基开始，发生了6位碱基的缺失突变，框中序列即为缺失区域， 本领域技术人员使用常规技术手段，根据缺失区域前后的碱基组成，在基因库中便能容易获 得该缺失区域的碱基组成，因此，本发明目标检测的CASP8基因缺失突变的内容是充分公开 的。)
发明内容
本发明的目的之一是提供CASP8基因突变检测液相芯片，该液相芯片可用于单独或并 行检测CASP8基因六种常见基因型G1122A、G808C、T845A、G34767T、T35438G和缺失 突变的野生型和突变型。
实现上述目的的技术方案如下。
一种CASP8基因突变检测液相芯片，包括有：
(A).针对CASP8基因不同突变位点分别设计的野生型和突变型的ASPE引物对：每条 ASPE引物由5’端的tag序列和3’端针对目的基因突变位点的特异性引物序列组成，所述特异 性引物序列为：针对G1122A位点的SEQ ID NO.13及SEQ ID NO.14，针对G808C位点的SEQ ID NO.15及SEQ ID NO.16，针对T845A位点的SEQ ID NO.17及SEQ ID NO.18，针对G34767T位点 的SEQ ID NO.19及SEQ ID NO.20，针对T35438G位点的SEQ ID NO.21及SEQ ID NO.22，和/或 针对缺失突变位点的SEQ ID NO.23及SEQ ID NO.24；所述tag序列选自SEQ ID NO.1～SEQ ID NO.12；
(B).有不同anti-tag序列包被的、具有不同颜色编码的微球，所述anti-tag序列与微 球连接中间还设有间隔臂序列；所述anti-tag序列选自SEQ ID NO.25～SEQ ID NO.36，且所 述anti-tag序列能相应地与(A)中所选的tag序列互补配对；
(C).用于扩增出需要检测的、具有相应突变位点的目标序列的引物。
在其中一个实施例中，所述扩增引物为：针对G1122A位点的SEQ ID NO.37及SEQ ID NO.38，针对G808C位点的SEQ ID NO.39及SEQ ID NO.40，针对T845A位点的SEQ ID NO.41 及SEQ ID NO.42，针对G34767T位点的SEQ ID NO.43及SEQ ID NO.44，针对T35438G位点的 SEQ ID NO.45及SEQ ID NO.46，和/或针对缺失突变位点的SEQ ID NO.47及SEQ ID NO.48。
在其中一个实施例中，所述ASPE引物对为：针对G1122A位点的由SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.13组成的序列及由SEQ ID NO.2和SEQ ID NO.14组成的序列，针对G808C位点的由SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.15组成的序列及由SEQ ID NO.4和SEQ ID NO.16组成的序列，针对T845A 位点的由SEQ ID NO.5和SEQ ID NO.17组成的序列及由SEQ ID NO.6和SEQ ID NO.18组成的序 列，针对G34767T位点的由SEQ ID NO.7和SEQ ID NO.19组成的序列及由SEQ ID NO.8和SEQ ID NO.20组成的序列，针对T35438G位点的由SEQ ID NO.9和SEQ ID NO.21组成的序列及由SEQ ID NO.10和SEQ ID NO.22组成的序列，和/或针对缺失突变位点的由SEQ ID NO.11和SEQ ID NO.23 组成的序列及由SEQ ID NO.12和SEQ ID NO.24组成的序列。
本发明的另一目的是提供用于CASP8基因突变检测的特异性引物。
实现该目的的技术方案如下。
用于CASP8基因突变检测的特异性引物，所述特异性引物为针对G1122A位点的SEQ ID NO.13及SEQ ID NO.14，针对G808C位点的SEQ ID NO.15及SEQ ID NO.16，针对T845A位点的 SEQ ID NO.17及SEQ ID NO.18，针对G34767T位点的SEQ ID NO.19及SEQ ID NO.20，针对T35438G 位点的SEQ ID NO.21及SEQ ID NO.22，和/或针对缺失突变位点的SEQ ID NO.23及SEQ ID NO.24。
本发明的主要优点在于：
1.本发明所提供的检测方法与测序法的吻合率高达100％。且检测所需要的时间远远低于常 用的测序技术，特别符合实际应用需要。所制备的CASP8基因突变检测液相芯片具有非常好 的信号-噪声比，并且所设计的探针以及anti-tag序列之间基本上不存在交叉反应，tag标签序列、 anti-tag标签序列的选取以及tag标签序列与具体ASPE引物的结合，能够避免交叉反应，实现 多个突变位点的并行检测。
2.本发明通过发明人长期积累的设计经验和大量的实验操作，从众多的特异性引物中选取 了最优的组合。本发明设计的ASPE引物特异性引物能够灵敏特异地识别目标检测的突变位 点，准确区分各种型别的基因型；在同一个反应体系中，不同的特异性引物之间、特异性引 物与非目标检测的PCR扩增产物之间基本上不存在交叉反应，检测特异性好，交叉反应率低 于3％；除了能够检测单个位点突变情况，也能够同时并行检测多个突变位点的突变情况，检 测效果一致。
3.本发明的检测方法步骤简单，6种突变位点检测可通过一步PCR即可完成6条含有突变位点 的目标序列的扩增，避免了反复多次PCR等复杂操作过程中存在的诸多不确定因素，因而可 大大提高检测准确率，体现了精确的同时定性、定量分析特征。
4.本发明不仅克服了传统固相芯片敏感性不高，检测结果的可重复性差的缺陷，同时对现有 的液相芯片技术进行改进，使得所制备微球能适用于不同的检测项目，具有很强的拓展性。 检测的荧光信号值大大提高，从而使得检测的灵敏度进一步得到提高，信噪比增强，检测结 果更加准确可靠。
具体实施方式
实施例1CASP8基因突变检测液相芯片，主要包括有：
一、ASPE引物
针对CASP8基因六种常见基因型G1122A、G808C、T845A、G34767T、T35438G和缺 失突变的野生型和突变型，分别设计特异性引物序列。ASPE引物由“tag序列+特异性引物序 列”组成。ASPE引物序列如下表所示：
表1CASP8基因的ASPE引物序列(tag序列+特异性引物序列)
每条ASPE引物包括两个部分，5’端为针对相应微球上anti-tag序列的特异性tag序列，3’ 端为突变型或野生型特异的引物片段(如上述表1所示)。所有ASPE引物由上海生工生物工 程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用10mmol/LTris Buffer配制成100pmol/mL 的贮存液。
二、anti-tag序列包被的微球
根据所设计的ASPE特异性引物片段，选择tag序列，最大限度地减少各微球的anti-tag序 列之间以及tag与ASPE特异性引物片段可能形成的二级结构，选择的12种微球编号与微球上 相应的anti-tag序列如表2所示：
表2微球编号与微球上相应的anti-tag序列
选择的12种微球购自美国Luminex公司，将anti-tag序列包被于微球上。anti-tag序列与微 球之间连接有5-10个T的间隔臂序列，即在每个anti-tag序列前加上一段5-10个T的间隔臂 序列，anti-tag序列由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。将合成的anti-tag序列用灭菌 ddH2O配成100nmol/ml的贮存液。所述间隔臂为用于将anti-tag与微球表面间隔开来或是将 anti-tag置于亲水性环境中的序列。通过在anti-tag序列与微球之间设置适当长度的间隔臂序 列，可减少空间位阻，提高杂交反应的效率以及杂交反应的特异性。常见的间隔臂序列包括 多聚dT，即poly(dT)，寡聚四聚乙二醇以及(CH2)n间隔臂(n≥3)，如(CH2)12、(CH2) 18等。另外，如果存在poly(dA)干扰，还可以用poly(TTG)作为间隔臂。本发明间隔臂 优选为5-10个T，微球包被的过程如下：
分别取5×106个上述编号的羧基化的微球(购自Luminex公司)悬浮于50ul0.1mol/L的 MES溶液中(pH4.5)，加入10ul合成的anti-tag分子(100nmol/ml)。配制10ng/ml的EDC(N- (3-Dimethylaminopropyl-N-ethylcarbodiimide)(购自Pierce Chemical公司)工作液。往微球 悬液中加入2.5ul的EDC工作液，恒温孵育30分钟，再加入2.5ul的EDC工作液，再恒温孵育30 分钟。反应结束后，用0.02％的Tween-20洗涤一次，再用0.1％的SDS液洗涤一次。将洗涤后 的包被有anti-tag序列的微球重悬于100ul的Tris-EDTA溶液[10mmol/LTris(pH8.0)]，1mmol/L EDTA中，2-8℃避光保存。
三、扩增出含有突变位点的目标序列的引物
针对CASP8基因六种常见基因型G1122A、G808C、T845A、G34767T、T35438G和缺 失突变，设计扩增引物对(见表3)，扩增出6条含有6个突变位点的目标序列。
表3扩增出具有突变位点的目标序列的引物
所有引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用 10mmol/L Tris Buffer配制成100pmol/mL的贮存液。
实施例2运用实施例1所述的CASP8基因突变检测液相芯片对样本的检测
所述各种溶液的配方如下：
50mM的MES缓冲液(pH5.0)配方(250ml)：
2×Tm杂交缓冲液
过滤后贮存于4℃。
ExoSAP-IT试剂盒购自美国USB公司。
生物素标记的dCTP购自上海生工生物工程技术服务有限公司。
一、样本的DNA提取：
参照《分子克隆》关于DNA提取的相关方法，得到待检测的DNA。
二、待测样品的PCR扩增
设计6对引物，多重PCR一步扩增出6条分别含CASP8基因六种常见基因型G1122A、 G808C、T845A、G34767T、T35438G、缺失突变的目标序列，G1122A、G808C、T845A、 G34767T、T35438G五种基因型产物大小分别为237bp、264bp、285bp、333bp、243bp，缺失 突变野生型产物为346bp，缺失突变突变型产物为340bp，引物序列(SEQ ID NO.37-48)见 上述表3所示。
首先配制多重PCR引物工作液：分别各取SEQ ID NO.37-48的引物贮存液100ul于1.5ml微 量离心管中，混合均匀即为多重PCR引物工作液。多重PCR反应体系如下：
PCR扩增程序为：95℃3min；94℃30s，56℃30s，72℃40s，30个循环；72℃10min4℃ 保存备用。
三、PCR产物的酶切处理
1.取7.5ul PCR反应后的产物，加入1ul10×SAP缓冲液、1ul SAP酶和0.5ul Exo-I酶；
2.37℃孵育15min，80℃孵育15min，灭活多余的酶。酶切处理后的产物直接用于后续的
ASPE引物延伸反应。
四、位点特异的引物延伸反应(ASPE)
利用实施例1中设计的ASPE引物进行引物延伸反应，在反应过程中掺入生物素标记的 dCTP，从而使反应后的产物带上多个的生物素标记。
首先配制混合的ASPE引物工作液：分别取待检测基因相应的野生型和突变型ASPE引物 贮存液10ul于1.5ml微量离心管中，加入10mmol/L Tris Buffer补至200ul，混合均匀即为ASPE 混合引物工作液。ASPE反应的体系如下：
反应程序为：96℃2min；94℃30s，54℃1min，72℃2min，30个循环；4℃保存备用。
五、杂交反应
1.根据设计的ASPE引物，每组选择相应的12种包被的微球(如实施例1所述)，每种微球浓 度均为2.5×105个/ml；
2.分别取1ul每种编号的微球于1.5ml的微量离心管中；
3.微球于≥10000g离心1-2min；
4.弃去上清，微球重悬于100ul的2×Tm杂交缓冲液中，涡旋混匀；
5.取25ul上述微球悬液于96孔滤板相应的孔中，对照孔加25ul的ddH2O；
6.取5-25ul的ASPE反应液于相应的孔中，用ddH2O补足至50ul；
7.用锡箔纸包住96孔板以避光，95℃60s，37℃15min孵育杂交；
8.杂交后的微球于≥3000g离心2-5min；
9.去上清，将微球重悬于75ul的1×Tm杂交缓冲液中；
10.微球于≥3000g离心2-5min；
11.将微球重悬于75ul的1×Tm杂交缓冲液中，加入15ul浓度为10ug/ml的链霉亲和素-藻红 蛋白(SA-PE)；
12.37℃孵育15min，于Luminex仪器上检测。
六、结果检测与数据分析
反应后产物通过Luminex系列分析仪器检测。检测结果如表4、表5和表6所示。
对荧光值(MFI)和数据处理有以下要求：
1.每个位点需至少有一个等位基因MFI大于300而且大于10×PCR阴性对照MFI；
2.NET MFI＝样品MFI-PCR阴性对照MFI(NET MFI小于0的以0表示)；
3.满足以上两个条件的数据，按下列公式计算突变比值：
突变比值＝突变型NET MFI÷(突变型NET MFI+野生型NET MFI)
4.根据经验对每个检测位点的突变比值确定阈值(cut-off值)，以划分野生型纯合子、杂合 子和突变型纯合子。
使用本方法检测20份样本的CASP8基因SNP位点，实验数据符合上述要求，因此可计 算得它们的突变比值。阈值(cut-off值)的设置如下：突变比值范围在0％-20％视为野生型纯 合子；30％-70％视为杂合子；80％-100％视为变异型纯合子。以测序法检测与液相芯片结果 作对照，计算本发明所提供的分型方法检测结果的吻合率。本方法检测20份样本的CASP8基 因型检测结果与测序结果吻合率达到100％。可见本发明所提供的CASP8基因SNP检测液相 芯片能够准确地检测出CASP8的SNP类型，且结果稳定可靠。
表4样本检测结果(MFI)之一
表5样本检测结果(MFI)之二
表6样本CASP8基因突变比值(％)
样品号 G1122A G808C T845A G34767T T35438G 缺失突变 1 2％ 1％ 2％ 2％ 3％ 2％ 2 2％ 2％ 1％ 2％ 1％ 1％ 3 2％ 1％ 2％ 1％ 1％ 2％ 4 2％ 1％ 2％ 2％ 1％ 2％ 5 2％ 2％ 2％ 1％ 2％ 1％ 6 2％ 2％ 2％ 1％ 98％ 1％ 7 1％ 2％ 1％ 1％ 3％ 1％ 8 1％ 3％ 2％ 2％ 2％ 2％ 9 2％ 3％ 1％ 1％ 2％ 2％ 10 1％ 2％ 2％ 1％ 1％ 2％ 11 2％ 99％ 2％ 2％ 2％ 2％ 12 1％ 2％ 2％ 2％ 2％ 1％ 13 2％ 3％ 2％ 2％ 1％ 1％ 14 2％ 2％ 2％ 2％ 1％ 2％ 15 1％ 3％ 2％ 1％ 3％ 3％ 16 2％ 2％ 2％ 1％ 1％ 98％ 17 1％ 2％ 2％ 2％ 1％ 3％ 18 2％ 2％ 51％ 2％ 2％ 2％ 19 2％ 2％ 2％ 1％ 1％ 2％ 20 1％ 1％ 2％ 2％ 2％ 2％
表7样本CASP8基因突变类型分析结果
实施例3不同的ASPE引物的液相芯片对CASP8基因SNP位点的检测
一、液相芯片制备的设计(Tag序列及Anti-Tag序列的选择)
以CASP8基因G1122A、G808C、G34767T和缺失突变位点突变检测液相芯片为例，分别针 对G1122A、G808C、G34767T和缺失突变的野生型和突变型设计ASPE引物3’端的特异性引物 序列，而ASPE引物5’端的Tag序列则选自SEQ ID NO.1-SEQ ID NO.12，相应的，包被于微球 上的与对应tag序列互补配对的anti-tag序列选自SEQ ID NO.25-SEQ ID NO.36。具体设计如下 表(表8)所示。ASPE引物的合成、anti-tag序列包被微球、扩增引物、检测方法等如实施例1 和实施例2所述。
表8液相芯片制备的设计
一、样品检测
采用上述设计制备的液相芯片，按实施例2所述检测过程和方法对样品21-40进行检测，检 测结果如下：
表9样本CASP8基因G1122A检测结果与基因多态性分析
表10样本CASP8基因G808C检测结果与基因多态性分析
表11样本CASP8基因G34767T检测结果与基因多态性分析
表12样本CASP8基因缺失突变检测结果与基因多态性分析
从上述实施例可见，其它针对不同突变位点的液相芯片，ASPE引物运用不同的tag序列， 其结果依然稳定可靠，具体数据省略。而ASPE引物选用实施例1中tag序列与特异性引物序列 搭配时，效果更佳(信噪比更好)，参见本实施例试验组1、试验组5、试验组8和试验组12。 其它不同tag序列与特异性引物序列搭配，与实施例2和本实施例的结果相同，具体数据省略。
实施例4CASP8基因突变检测特异性引物序列的选择
一、液相芯片制备的设计(野生型和突变型特异性引物序列的选择)
以CASP8基因T845A和T35438G的多态性位点检测液相芯片为例，以该突变位点所 在目标序列的正向或反向互补序列为模板，分别针对T845A和T35438G的野生型和突变型 设计ASPE引物3’端的特异性引物序列，包括本发明实施例1中优选的特异性引物序列和2 条备选的特异性引物序列，如表13所示。其中，内碱基为多态性位点。
表13特异性引物序列
以CASP8基因T845A和T35438G的多态性位点检测液相芯片为例，针对T845A和 T35438G选用不同的特异性引物序列，而ASPE引物5’端的tag序列则固定为实施例1中的 最佳效果序列，并选用与之相对应的anti-tag序列，具体设计如下表(表14)所示。ASPE引 物的合成、anti-tag序列包被微球、扩增引物、检测方法等如实施例1和实施例2所述。
表14液相芯片制备的设计之二
二、样品检测
采用上述设计制备的液相芯片，按实施例2所述检测过程和方法对样品41-60进行检测，检 测结果如下：
表15样本CASP8基因T845A检测结果与基因多态性分析
表16样本CASP8基因T35438G检测结果与基因多态性分析
由本实施例可见，ASPE引物选用实施例1中特异性引物序列与tag序列搭配时，效果更 佳(信噪比更好)，参见本实施例试验组13和试验组16。其它来源于目标检测位点所在序 列的正向或反向互补序列的不同特异性引物序列与tag序列搭配，与实施例2和本实施例的 结果相同，即依然是实施例2中所述的特异性引物序列与不同的tag序列搭配效果更佳，具 体数据省略。
其它针对不同的SNP位点的多种特异性引物序列与tag序列搭配，与实施例2和本实施 例的结果相同，即实施例1所选择的特异性引物，具有更好的信噪比，检测效果也更好，具 体数据省略。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而 理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本 发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明 专利的保护范围应以所附权利要求为准。