《一种西红花酸衍生物GXE及其制备方法、以及在预防或治疗心脑血管疾病中的应用.pdf》由会员分享，可在线阅读，更多相关《一种西红花酸衍生物GXE及其制备方法、以及在预防或治疗心脑血管疾病中的应用.pdf（11页完整版）》请在专利查询网上搜索。
1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201610495674.2 (22)申请日 2016.06.23 (71)申请人 丽珠医药集团股份有限公司 地址 519020 广东省珠海市金湾区红旗镇 联港工业区双林片区创业北路38号行 政研发楼 (72)发明人 陆文岐姜志宏尚强高进 孔祥生张润容 (51)Int.Cl. C07C 233/09(2006.01) C07C 233/13(2006.01) C07C 231/02(2006.01) A61P 9/00(2006.01) A61P 9/10(2006.01) (5。
2、4)发明名称 一种西红花酸衍生物GX-E及其制备方法、 以 及在预防或治疗心脑血管疾病中的应用 (57)摘要 本发明涉及一种西红花酸酰胺GX-E及其制 备方法， 其制备方法包括下列步骤： 1)取西红花 酸、 EDCl(1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚 胺盐酸盐)、 HOBt(1-羟基苯并三唑)于反应瓶中； 冰浴条件下， 加入Et3N、 CH2Cl2， 再加入有机胺类 化合物， 在0下反应2-8小时， 室温过夜； 2)反应 完全后， 停止反应； 将反应液过滤， 除去溶剂， 加 入EA溶解， 洗涤； 除去溶剂后， 得到粗品； 3)将粗 品用硅胶柱进行分离， 洗脱， 得到产物； 本发明涉 及。
3、的西红花酰胺衍生物GX-B克服了西红花酸脂 溶极低导致的生物利用度低的问题， 可以制备成 片剂、 缓释片剂、 颗粒剂、 混悬剂等口服制剂用于 预防或治疗心脑血管疾病， 临床应用广泛。 权利要求书1页 说明书7页 附图2页 CN 106397253 A 2017.02.15 CN 106397253 A 1.一种西红花酸酰胺GX-E， 其结构式为： 2.根据权利要求1所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 其制备方法包括以下步骤： 1)取西红花酸、 EDCl(1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐)、 HOBt(1-羟基 苯并三唑)于反应瓶中； 冰浴条件下， 加入Et3N、 CH2。
4、Cl2， 再加入有机胺类化合物， 在0下反 应2-8小时， 室温过夜； 2)反应完全后， 停止反应； 将反应液过滤， 除去溶剂， 加入EA溶解， 洗涤； 除去溶剂后， 得 到粗品； 3)将粗品用硅胶柱进行分离， 洗脱， 得到产物。 3.根据权利要求2所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤1)中酰胺 盐为乙二胺。 4.根据权利要求3所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤1)中反应 时间优选为4小时。 5.根据权利要求4所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤1)西红花 酸与乙二胺的摩尔比为1 1-8。 6.根据权利要求5所述的西红花。
5、酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤1)西红花 酸与乙二胺的摩尔比为1 2。 7.根据权利要求6所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤2)反应中 的洗涤方法为： 依次用盐酸、 碳酸氢钠、 水洗涤， 分别洗涤2-5次。 8.根据权利要求7所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤2)反应中 的洗涤方法为： 依次用盐酸、 碳酸氢钠、 水洗涤， 分别洗涤3次。 9.根据权利要求8所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于， 所述制备方法步骤3)反应中 洗脱的方法为： 先用CHCl3洗脱， 再用CHCl3 CH3OH10 1进行洗脱。 10.根据权利要。
6、求1-9任一项所述的西红花酸酰胺GX-E， 其特征在于所述西红花酸酰胺 GX-E用于治疗和预防心血管疾病。 权利要求书 1/1 页 2 CN 106397253 A 2 一种西红花酸衍生物GX-E及其制备方法、 以及在预防或治疗 心脑血管疾病中的应用 技术领域 0001 本发明涉及一种新的西红花酸衍生物， 具体涉及西红花酸的可药用酰胺及其制备 方法， 以及该衍生物在预防和治疗心脑血管疾病中的应用。 背景技术 0002 西红花(Crocus sativus L.)又称藏红花， 是鸢尾科番红花属植物番红花Crocus sativus L.的干燥柱头。 西红花是一种名贵的中药材， 在治疗或预防心脑血。
7、管疾病， 以及肿 瘤、 炎症、 疼痛抑制及对肝脏、 肾脏、 神经系统的保护作用等方面临床应用广泛， 且疗效显 著。 0003 西红花的主要药效物质包括西红花酸、 藏红花素、 西红花酸二甲酯、 西红花苦素 等， 此外还含有桉脑、 蒎烯、 多种维生素。 国内外现代研究表明， 西红花酸(crocetin)是西红 花在体内发挥心脑血管疗效的主要活性组分。 西红花酸具有多不饱和共轭烯酸结构， 属类 胡萝 卜素物质， 在抗心血管系统疾病、 抗氧化、 抗动脉粥样硬化、 防治糖尿病并发症等方面有 明确的生物活性。 0004 近年来， 西红花酸在心血管系统疾病中的防治作用成为许多学者的研究热点， 大 量研究成果。
8、也表明西红花酸具有很好的心血管保护作用， 且其作用是多靶点、 多途径的。 这 些研究成果预示着西红花酸有良好的开发前景， 很有希望开发成为新型的防治心血管系统 疾病的药物， 值得深入研究。 0005 然而， 西红花酸的脂溶性和水溶性较差， 极难溶于水以及除吡啶和与吡啶相似的 有机碱以外的常用有机溶剂， 难以达到较高的药物浓度及给药剂量， 另外， 由于药物脂溶性 较高才能容易被胃肠道上皮细胞黏膜所吸收， 而西红花酸由于其脂溶性极差， 从而造成生 物利用度低， 临床应用受到极大的限制。 0006 同时， 通过西红花酸衍生物解决溶解性问题， 仍有许多技术难点， 比如衍生物结构 不稳定， 活性降低等问。
9、题。 为此， 本研究以西红花酸为基础进行结构修饰， 以期获得到溶解 性较好， 且心脑血管活性与西红花酸本体相当甚至更优的新药先导化合物。 发明内容 0007 本发明目的在于提供一种西红花酸酰胺类衍生物以及其制备方法与用途。 0008 本发明的技术方案如下： 0009 一种西红花酸酰胺GX-E， 其结构式如下所示： 0010 0011 一种制备西红花酸酰胺GX-E的方法， 包括下列步骤： 0012 (1)取西红花酸、 EDCl(1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐)、 HOBt(1- 说明书 1/7 页 3 CN 106397253 A 3 羟基苯并三唑) 于反应瓶中； 冰浴条件下，。
10、 加入Et3N、 CH2Cl2， 再加入有机胺类化合物， 在0 下反应2-8小时， 室温过夜； 0013 (2)反应完全后， 停止反应； 将反应液过滤， 除去溶剂， 加入EA溶解， 洗涤； 除去溶剂 后， 得到粗品； 0014 (3)将粗品用硅胶柱进行分离， 洗脱， 得到产物。 0015 具体地， 步骤(1)中有机胺类化合物为二乙胺。 0016 具体地， 步骤(1)中反应时间优选为4小时。 0017 具体地， 步骤(1)中的西红花酸与二乙胺的摩尔比为1 1-1 8。 0018 优选地， 步骤(1)中的西红花酸与二乙胺的摩尔比为1 2。 0019 具体地， 步骤(2)反应中的洗涤方法为： 依次用。
11、盐酸、 碳酸氢钠、 水洗涤， 分别洗涤 2-5次。 0020 优选地， 步骤(2)反应中的洗涤方法为： 依次用盐酸、 碳酸氢钠、 水洗涤， 分别洗涤3 次。 0021 具体地， 步骤(3)中洗脱的方法为： 先用CHCl3洗脱， 再用CHCl3 CH3OH10 1进行洗 脱。 0022 目前， 西红花酸存在脂溶性极低的问题， 0.1g西红花酸不溶于1000ml乙醇、 氯仿- 乙醇等有机溶剂， 导致西红花酸生物利用度极低， 临床应用受限。 0023 西红花酸GX-1结构如下所示： 0024 0025 本发明通过筛选大量的西红花酸衍生物， 用以解决西红花酸脂溶性低导致的生物 利用度降低的问题。 本发。
12、明合成了一系列西红花酸衍生物， 如GX-M、 GX-N等。 0026 西红花酸酰胺GX-M， 其结构式如下所示： 0027 0028 西红花酸酰胺GX-N， 其结构式如下所示： 说明书 2/7 页 4 CN 106397253 A 4 0029 0030 本发明涉及的西红花酸酰胺衍生物GX-E， 与同类西红花酸衍生物GX-M、 GX-N相比， 在相同药物浓度下， 通过线粒体活性试剂检测， GX-E活性明显优于GX-M、 GX-N， 甚至优于西 红花酸GX-1， 对缺氧小室诱导H9c2心肌细胞缺氧损伤有明显的保护作用， 可以有效预防或 治疗心脑血管疾病。 0031 本发明涉及的西红花酸酰胺衍生物。
13、GX-E， 脂溶性也远高于西红花酸GX-1， 更容易 被胃肠道上皮细胞黏膜所吸收， 生物利用度相比于西红花酸而言得到极大提升。 0032 本发明涉及的西红花酰胺衍生物GX-E通过细胞毒性实验证明该化合物安全有效， GX-E脂溶性提升的同时生物活性并没有降低， 甚至优于西红花酸， 克服了西红花酸脂溶极 低导致的生物利用度低的问题， GX-E可以制备成片剂、 缓释片剂、 颗粒剂、 混悬剂、 滴丸、 注 射剂等剂型用于预防或治疗心脑血管疾病， 其临床应用更为广泛。 附图说明 0033 图1、 GX-E的高分辨MS图谱： GX-E C28H42N2O2 Found： M+H+439.3318Calcd。
14、： M+H+ 439.3319(0.24ppm) 0034 图2、 GX-E的高分辨NMR图谱： GX-E： 1H NMR spectrum 0035 图3、 GX-E的高分辨NMR图谱： GX-E： 13C NMR spectrum 具体实施例 0036 实施例1： 制备西红花酸衍生物GX-E 0037 0038 取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于100ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 l)及 CH2Cl220ml， 最后加。
15、入二乙胺(1.0mmol， 112 l)， 在0条件下反应4h， 然后室温反应过夜。 利 用TLC和LC-MS检测产物是否生成。 停止反应， 将反应液过滤， 真空除去溶剂， 加入10ml EA溶 解， 依次用2HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤3次， 真空除去溶剂得到粗品。 将粗产物 GX-E用硅胶柱进行分离， 先4-5柱体积的CHCl3进行洗脱， 然后加大洗脱剂极性CHCl3 CH3OH 10 1进行洗脱。 得到GX-E， 并用NMR表征其结构。 黄色粉末， 产率： 72。 0039 实施例2： 制备西红花酸衍生物GX-M： 说明书 3/7 页 5 CN 106397253。
16、 A 5 0040 0041 分别取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于25ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 l) 及CH2Cl220ml， 最后加入4-氟苯甲胺(1.1mmol， 125 l)， 在0条件下反应4h， 然后室温反应 过夜。 利用TCL和LC-MS检测产物是否生成， 确定反应完全后， 停止反应。 将反应液过滤， 真空 除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用2HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤。
17、3次， 最后真空 除去溶剂EA得到粗品。 将得到的粗产物用硅胶柱进行分离， 用三个柱体积的CHCl3进行洗 脱。 得到产物GX-M粗品， 然后再次硅胶柱分离， 用两个柱体积的溶剂(石油醚 乙酸乙酯20 1)进行洗脱， 最终得到产物GX-M， 并用NMR表征其结构， 产率： 75。 0042 实施例3： 制备西红花酸衍生物GX-N： 0043 0044 分别取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于25ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 。
18、l) 及CH2Cl220ml， 最后加入3， 5-二氟苄胺(1.1mmol， 130 l)， 在0条件下反应4h， 然后室温反 应过夜。 利用TCL和LC-MS检测产物是否生成， 确定反应完全后， 停止反应。 将反应液过滤， 真 空除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用2HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤3次， 最后真 空除去溶剂EA得到粗品。 将得到的粗产物用硅胶柱进行分离， 用三个柱体积的CHCl3进行洗 脱。 得到产物GX-N粗品， 然后再次硅胶柱分离， 用两个柱体积的溶剂(石油醚 乙酸乙酯10 1)进行洗脱。 最终得到产物GX-N， 并用NMR表征其结构， 产率。
19、： 68。 0045 实施例4： 制备西红花酸衍生物GX-E 0046 取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于100ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 l)及CH2Cl2 20ml， 最后加入二乙胺(1.5mmol)， 在0条件下反应2h， 然后室温反应过夜。 利用TLC和LC- MS检测产物是否生成。 停止反应， 将反应液过滤， 真空除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用 2HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗。
20、涤3次， 真空除去溶剂得到粗品。 将粗产物GX-E用硅胶 柱进行分离， 先4-5柱体积的CHCl3进行洗脱， 然后加大洗脱剂极性CHCl3 CH3OH10 1进行 洗脱。 得到GX-E， 并用NMR表征其结构。 黄色粉末， 产率： 68。 0047 实施例5： 制备西红花酸衍生物GX-E 说明书 4/7 页 6 CN 106397253 A 6 0048 取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于100ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350。
21、 l)及CH2Cl2 20ml， 最后加入二乙胺(4mmol)， 在0条件下反应4h， 然后室温反应过夜。 利用TLC和LC-MS 检测产物是否生成。 停止反应， 将反应液过滤， 真空除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用2 HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤2次， 真空除去溶剂得到粗品。 将粗产物GX-E用硅胶柱进 行分离， 先4-5柱体积的CHCl3进行洗脱， 然后加大洗脱剂极性CHCl3 CH3OH10 1进行洗脱。 得到GX-E， 并用NMR表征其结构。 黄色粉末， 产率： 61。 0049 实施例6： 制备西红花酸衍生物GX-E 0050 取西红花酸GX-1(。
22、购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于100ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 l)及CH2Cl2 20ml， 最后加入-乙胺(0.5mmol)， 在0条件下反应8h， 然后室温反应过夜。 利用TLC和LC-MS 检测产物是否生成。 停止反应， 将反应液过滤， 真空除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用2 HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤5次， 真空除去溶剂得到粗品。 将粗产物GX-E用硅胶柱进 行分离， 先4-5柱体积的CH。
23、Cl3进行洗脱， 然后加大洗脱剂极性CHCl3 CH3OH10 1进行洗脱。 得到GX-E， 并用NMR表征其结构。 黄色粉末， 产率： 57。 0051 实施例7： 制备西红花酸衍生物GX-E 0052 取西红花酸GX-1(购自于Sigma公司)(0.5mmol， 164mg)， EDCI(1.25mmol， 239mg)， HOBt(1.25mmol， 169mg)于100ml反应瓶。 在冰浴条件下， 加入Et3N(2.5mmol， 350 l)及CH2Cl2 20ml， 最后加入二乙胺(2.0mmol)， 在0条件下反应4h， 然后室温反应过夜。 利用TLC和LC- MS检测产物是否生成。
24、。 停止反应， 将反应液过滤， 真空除去溶剂， 加入10ml EA溶解， 依次用 2HCl， 5NaHCO3， H2O各10ml分别洗涤3次， 真空除去溶剂得到粗品。 将粗产物GX-E用硅胶 柱进行分离， 先4-5柱体积的CHCl3进行洗脱， 然后加大洗脱剂极性CHCl3 CH3OH10 1进行 洗脱。 得到GX-E， 并用NMR表征其结构。 黄色粉末， 产率： 65。 0053 实施例8： 西红花酸及其系列衍生物抗心肌细胞缺氧作用实验 0054 1、 取GX-1、 GX-E、 GX-M、 GX-N适量， 制备方法如实施例1-3， 用无水乙醇配制成1mM浓 度， 贮存于-20KRB cultu。
25、ral buffer(NaCl 115mM， KCl 4.7mM， CaCl2 2.5mM， NaHCO3 24mM， KH2PO4 1.2mM， MgSO47H2O 1.2mM， HEPES 10mM， 0.01BSA)， KRB wash buffer(KRB cultural buffer without FBS)， 使用前氮气平衡过夜； MTT， 购自于Sigma公司； 线粒体活 性测定试剂盒， 购自于Abcam公司； DMEM培养基及胎牛血清均购自与Gibco公司。 RSE为人参 提取物(澳门科技大学中药质量研究国家重点实验室自制)， 该样品已被证实在该模型上具 有缺氧损伤心肌细胞保。
26、护作用。 0055 2、 细胞培养： 实验用心肌细胞选用大鼠成纤维心肌细胞， H9c2(CRL-1446)， 购自于 ATCC公司。 取出培养中的细胞， 倾去培养基， 用PBS润洗一遍， 倾去PBS， 加入1ml的胰蛋白酶， 37消化1min， 加入培养基中止消化， 1000rpm离心5min， 弃上清液， 加入培养基重悬细胞。 用细胞计数板调整细胞浓度为5104/ml， 将细胞悬液加入96孔板中， 每孔100 l， 放入CO2培 养箱(5CO2， 37)中培养48h。 0056 3、 实验分组： 将H9c2心肌细胞分为正常对照组、 缺氧模型组(心肌细胞缺氧诱导损 伤模型组)、 RSE阳性对照。
27、组(人参提取物RSE作为阳性对照组)、 GX-1组、 GX-E组、 GX-D组及 GX-E组。 正常对照组不做任何处理， 其余各组倾去培养基， 加入KRB wash buffer润洗一次， 说明书 5/7 页 7 CN 106397253 A 7 倾去KRB wash buffer， 加入含药KRB cultural buffer： RSE阳性对照组中RSE终浓度为200 g/ml， GX各组终浓度均为10nM。 0057 4、 心肌细胞缺氧诱导损伤： 各组给药后， 立即将96孔板置入缺氧小室(billups- rothenberg， Inc.)， 用氮气饱和缺氧小室5min， 密封缺氧小室，。
28、 使其内部形成低氧环境， 并 将其置入37 CO2培养箱中， 开始缺氧。 3h后， 将96孔板从缺氧小室中取出， 倾去含药KRB cultural buffer， 加入100 l培养基。 0058 5、 细胞活性及线粒体活性检测： 细胞活性检测： 每孔加入10 l MTT， 37避光孵育 4h， 再加入10SDS-HCL(0.01M)过夜， 570nm波长下检测。 线粒体活性检测： 每孔加入100 l 线粒体活性测定试剂， 37避光孵育4h， 检测荧光强度(激发波长： 550nm， 发射波长590nm)。 0059 结论： 通过检测表明， 与正常对照组(1000.04)相比， 缺氧小室诱导缺氧。
29、显著 降低了H9c2心肌细胞存活率(18.90.03， p0.001)； 阳性对照RSE 200 g/ml组H9c2心 肌细胞存活率(33.50.01)较缺氧损伤组有显著提高(p0.001)。 结果显示缺氧损伤心 肌细胞模型成功。 0060 GX-E对缺氧诱导心肌细胞损伤保护作用具体如下表1所示： 0061 表1： GX四种化合物对缺氧诱导心肌细胞损伤保护作用(线粒体活性试剂检测结 果) 0062 序号 组别 H9c2心肌细胞线粒体存活率 1 NORMAL(正常对照组) 1.00 2 HYPOXIA(缺氧模型组) 0.42 3 GX-1 0.65 4 GX-E 0.71 5 GX-M 0.29。
30、 6 GX-N 0.39 0063 结论： 线粒体活性试剂检测结果如表1所示， GX系列化合物在1 M剂量下分别呈现 对缺氧心肌细胞的不同作用， 在相同药物浓度下， GX-E活性明显优于藏红花酸GX-1， 同时与 藏红花酸衍生物GX-M、 GX-N相比， GX-E的活性更优， 对缺氧小室诱导H9c2心肌细胞缺氧损伤 有明显的保护作用。 0064 实施例9： GX-1、 GX-E溶解性实验比较 0065 取0.1g固体试样(西红花酸(GX-1)及其衍生物(GX-E)于试管中， 加1mL乙醇/氯 仿-甲醇(10 1)振荡后， 如不溶解可加至100mL和1000mL观察是否溶解， 具体结果如下表2所 示： 0066 表2溶解性实验比对表 0067 0068 注： 表中 “+” 表示溶解；“-” 表示不溶解； 若介于溶解和不溶解之间的现象， 则用符 说明书 6/7 页 8 CN 106397253 A 8 号 “” 表示；“/” 表示不需试验的项目。 0069 结论： 由上述表2的实验结果可以看出， 经过结构修饰后的GX-E的脂溶性明显优于 西红花酸。 说明书 7/7 页 9 CN 106397253 A 9 图1 图2 说明书附图 1/2 页 10 CN 106397253 A 10 图3 说明书附图 2/2 页 11 CN 106397253 A 11 。