技术领域
本发明涉及一种抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体和用途，属于生物技术领域。
背景技术
淋巴瘤属原发于淋巴结或淋巴组织的恶性肿瘤，有淋巴细胞和(或)组织细胞的大 量增生，占我国常见恶性肿瘤的第八位，且年轻化趋势明显，近年发病率由2-4/10万 升至6.91/10万，并以每年5%的速度上升，每年新发患者约5万人，死亡人数超过2 万。一般认为霍奇金淋巴瘤主要来源于B细胞，大多数的非霍奇金淋巴瘤也来源于B 细胞，因此通过清除B细胞治疗淋巴瘤已成为一种新的治疗方案。
临床研究发现，淋巴瘤等恶性B细胞可以合成和分泌一种名为B淋巴细胞刺激因 子(B cells-activating fact BAFF)的蛋白，属肿瘤坏死因子超家族成员，其可与表达在 B细胞表面的受体结合，进而激活NF-kB途径，诱导抗细胞凋亡基因：Bcl-2、Bcl-xL 的表达，减少成熟B细胞的凋亡。不同亚型B-细胞淋巴瘤患者血清可溶性BAFF含量 较正常对照者是明显升高的，且BAFF血浆水平与基因变异及疾病的进展、严重程度 及治疗敏感性呈正相关关系。
纳米抗体是由羊驼血液中发现的缺失轻链的重链抗体，经比利时科学家应用分子 生物学技术结合纳米粒子科学的方法，而研发出来的最新及分子量最小的抗体分子。 其具有结构简单，穿透力强，易于纯化和表达，亲和力及稳定性高，无毒副反应等一 系列优点。
目前尚未有针对BAFF的纳米抗体的报道。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种抗BAFF的纳米抗体及其编码基因序列。
本发明要解决的另一个技术问题是提供抗BAFF的纳米抗体的用途。
为实现上述目的，本发明采用以下技术方案：
一种抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体，其氨基酸序列为序列表SEQ ID NO.1 所示。该序列包括框架区和互补决定区；互补决定区为CDR1—CDR3；框架区为分 别为FR1-FR4；互补决定区具有选自下组的氨基酸序列，具体为：
CDR1的氨基酸序列：MSAVA
CDR2的氨基酸序列：VAAISKSSISTYYADSVKG
CDR3的氨基酸序列：NSALNGRLPGRH
框架区的FR1-FR4的氨基酸序列，具体为：
FR1的氨基酸序列：QVQLVDSGGGLVKAGGSLRLSCAASGRTFS
FR2的氨基酸序列：WFRQAPGKEREF
FR3的氨基酸序列：RFTISRDNARNTVNLQMNSLKPEDTAVYYC
FR4的氨基酸序列：WGQGTQVTVSS
所述抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体其氨基酸组成顺序：FR1，CDR1，FR2， CDR2，FR3，CDR3，FR4。（序列表SEQ ID NO.1）命名为抗BAFF纳米抗体G3。
所述的抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体，其氨基酸序列与序列表SEQ ID NO.1 所示的氨基酸序列的同源性大于80%，优选大于90%，最优选大于95%。
一种多肽，选自上述纳米抗体，或称单域抗体片段，或称结构域抗体片段，或“dAb， VH，VHH”。
编码上述抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体的基因序列。
所述基因序列为序列表SEQ ID NO.2所示的核苷酸序列。
根据本发明的抗BAFF纳米抗体可变区中特异性核苷酸或氨基酸序列，可在体外 人工合成与此相同的抗体轻重链基因的核苷酸序列或编码相同氨基酸的核苷酸序列， 从而获得相同的抗体基因或用于相关基因的改造，而获得抗BAFF纳米抗体或相关蛋 白或多肽产物。
包含所述基因序列的表达载体。载体可以为原核细胞表达载体、真核细胞表达载 体或昆虫细胞表达载体。
包含所述表达载体的宿主细胞。所述的宿主细胞可以为原核表达细胞、真核表达 细胞或昆虫细胞，所述原核表达细胞优选大肠杆菌。
通过所述宿主细胞制备抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体的方法。
药用组合物，其包含一种或多种所述的抗BAFF纳米抗体分子作为活性成份，并 包含可药用载剂。
所述药物载剂选自细胞毒素、放射性同位素、免疫调谐剂、抗血管生成剂、抗增 殖剂、促凋亡剂、化学治疗剂或治疗性核酸的治疗剂。
所述药物组合物也可以采用包含包装的药物试剂盒的形式提供，所述包装包含在 分开容器内的或在单一容器内的一种或多种所逸拮抗剂。
所述的抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体用于制备检测BAFF的试剂的用途。包 括但不限于用于双抗体夹心酶标免疫检测BAFF ELISA试剂中的捕获抗原用纳米抗体 包被ELISA板和检测抗原用的生物素标记纳米抗体。
所述的抗B细胞生长刺激因子的纳米抗体用于制备治疗BAFF表达异常相关疾病 的药物的用途；所述BAFF表达异常相关疾病为B细胞非霍奇金氏淋巴瘤 (non-Hodgkins lymphoma)、B细胞慢性淋巴细胞白血病、多发性骨髓瘤、涉及B细 胞的自身免疫病或炎性疾病。
本发明构建了BAFF胞外区多肽重组基因克隆的pET30a表达载体，获得带有His 标签的BAFF胞外区（BAFFECD）高纯化蛋白，与能高亲和力结合带有His标签蛋 白的Ni+磁珠结合，展示多肽的正确空间结构，以此形式的抗原免疫羊驼，构建特异 性的纳米抗体基因库（纳米抗体噬菌体展示基因库），筛选免疫纳米抗体基因库，而获 得了B细胞刺激因子的特异性的纳米抗体（或称单域抗体片段，single domain antibody fragment），将此基因与表达载体连接重组，构建了能在大肠杆菌中高效表 达的纳米抗体株anti-BAFFG3。在实验室进行摇瓶小规模生产，经Ni+树脂凝胶亲和 层析纯化，可得到SDS-PAGE电泳纯达95%，约100mg/L细菌培养物的纳米抗体。
本发明涉及了针对BAFF的不同形式纳米抗体（单体、双体或五聚体）、制备B 细胞生长刺激因子（BAFF）的纳米抗体的所有技术（技术参考：Tanha J,Dubuc G, Selection by phage display of llama conventional V(H)fragments with heavy chain antibody V(H)H properties.J Immunol Methods.2002,263(1-2):97-109） （Gueorguieva D,Li S.Identification of single-domain,Bax-specific intrabodies that confer resistance to mammalian cells against oxidative-stress-induced apoptosis.FASEB J.2006,20(14):2636-8）及基于B细胞去除（B cell depletion)的免 疫疗法。所述抗体可以发挥拮抗剂的作用，并且可以用于体外(in vitro)，原位(in situ) 或体内(in vivo)检测或治疗与BAFF的存在(或缺乏)相关的哺乳动物细胞或病理情况。
本发明提供了使用BAFF抗体阻断或中和BAFF与TACI/或BCMA之间相互作用 的方法。所述拮抗剂还可以阻断或中和BAFF与TACI/或BCMA的相互作用。抗BAFF 受体抗体可与细胞毒性剂或酶相连，或与放射性同位素、荧光化合物或化学发光化合 物相连。
本发明的优点是：本发明筛选多个活性高且具有潜在中和能力的纳米抗体，最终 得到了抗BAFF的纳米抗体G3。该纳米抗体能特异性结合人BAFF抗原、调节与BAFF 抗原与其配体相关的生物学活性，有效抑制BAFF抗原与其受体结合以及产生相应的 信号级联效应。抗BAFF纳米抗体可以阻断BAFF与其三种相关受体的结合，显著抑 制B细胞增殖或存活，该纳米抗体可用于检测和/或治疗多种与BAFF表达异常相关疾 病。
以下结合附图和具体实施方式详细说明本发明，并不以此限定本发明的实施范围。
附图说明
图1：BAFF胞外段蛋白表达和纯化后的电泳结果。
图2：Protein G亲和层析法纯化重链抗体
图3：羊驼免疫血清效价
图4：第一轮次PCR普通重链抗体及单链抗体基因
图5：第二轮次VHH抗体目的片段
图6：sfiI/Pst酶切pHEN6载体
图7：sfiI/Pst酶切目的片段
图8：菌落PCR验证抗体插入率
图9：抗BAFF纳米抗体蛋白纯化结果
图10：FPLC方法纯化抗BAFF纳米抗体
图11：纳米抗体与BAFF抗原结合动力曲线
图12：纳米抗体对受体BCMA的竞争抑制作用
图13：纳米抗体对受体TACI的竞争抑制作用
图14：抗BAFFG3纳米抗体对在体外对Raji细胞的增殖抑制作用
具体实施方式
本发明的实施方案通过下列实施例举例说明。然而本发明的实施方案不限于这些 实施例的特定细节，因为对于本领域的普通技术人员来说，其它的变化是已知的，或 根据直接公开的内容和附属的权利要求是显而易见的。因此，凡基于本发明上述内容 所实现的技术均属于本发明的范围。
下述实施例中所述实验方法，如无特殊说明，均为常规方法；所述试剂和生物材 料，如无特殊说明，均可从商业途径获得。
实施例1：BAFF胞外段蛋白的表达
1.sBAFF基因的钓取：抽取正常人静脉血，按照常规方法提取外周血单个核细 胞(PBMC)。RNA的抽提按照Invitorgen公司的说明书进行。取3ug RNA逆转录 制备cDNA模版，以其作为模板，扩增BAFF基因。
引物序列为：
5’CGGGAATTCCTGGTGCCACGCGGTGCCGTCAGGGTCCAGAAG3’（SEQ ID No.3）
5’CCCAAGCTTTCACAGCAGTTTCAATGC3’（SEQ ID No.4）
PCR反应条件：
2.表达载体的构建：PCR扩增产物用琼脂糖凝胶电泳分离、回收，用EcoRI （BioLab公司）、HindIII（BioLab公司）消化后，与同样酶处理的载体pET-30a（Sigma） 按3:1的末端比例进行黏性末端连接。连接产物按CaCl2转化法转化感受态大肠杆菌 JM109（Sigma），利用卡那霉素抗性筛选重组克隆。提取阳性克隆的质粒DNA，进 行EcoR I、HindIII双酶切和琼脂凝胶电泳分析，并进行菌落PCR。将初步鉴定正确 的阳性重组子，送交上海博亚生物技术有限公司、上海申能博彩生物技术有限公司进 行DNA序列分析，并将测序结果与数据库中已知基因的序列进行比对。
3.目的基因的表达：以含有测序正确的BAFF基因的表达载体，按CaCl2转化 法转化感受态大肠杆菌BL21（Sigma）；同时，以不含BAFF基因的空载体质粒转化 感受态大肠杆菌BL21作为阴性对照。挑取单个菌落，接种于含卡那霉素的LB培养 基中，于37℃培养至对数期后，加入或不加入IPTG继续培养，诱导目的基因的表 达。取少量诱导、未诱导细菌的培养液，离心、沉淀。去上清后，将菌体加入到SDS 加样缓冲液中煮沸，分析目的蛋白的表达。
4.目的蛋白的大量表达与纯化：挑选单个菌落接种于含卡那霉素的LB培养基中， 于LB培养至对数期后，加入IPTG于30℃继续培养过夜。将菌体培养液于4℃以 12000r/min离心15min。收集细菌用细菌裂解液悬浮后，以超声波破碎菌体。离心后， 分别收集细菌上清液和包涵体沉淀。以镍螯合琼脂糖凝胶（北京本元正阳基因技术股 份有限公司）为柱填充介质，对细菌上清的提取液进行亲和层析。目的蛋白的洗脱采 用升高咪唑的浓度完成。收集不同浓度的咪唑洗脱峰样品，用SDS-PAGE分析目的 蛋白。）（图1）
BAFF胞外段蛋白的氨基酸序列为序列表SEQ ID No.5所示：
AVQGPEETVTQDCLQLIADSETPTIQKGSYTFVPWLLSFKRGSALEEKENKILVK
ETGYFFIYGQVLYTDKTYAMGHLIQRKKVHVFGDELSLVTLFRCIQNMPETLPNN
SCYSAGIAKLEEGDELQLAIPRENAQISLDGDVTFFGALKLL（SEQ ID No.5）
实施例2：抗BAFF特异性纳米抗体库的构建
1.免疫羊驼，酶免方法分析纳米抗体产生情况。
羊驼颈背部皮下多点注射抗原总计1.5mg，并加入福氏佐剂，分4次免疫，跟踪 观察注射包块吸收情况，以确认免疫正确。第一次免疫一个月后测定血清抗体效价（图 2）；其后免疫，每次免疫间隔时间减半，并测定效价。用Protein G柱，亲和层析方 法分离第四次免疫后一周的血清，ELISA法检测重链抗体产生情况及抗体效价，在第 四次免疫后，羊驼免疫血清效价可达到1：10000。（图3）。
2.分离羊驼外周血淋巴细胞
分离羊驼外周血淋巴细胞，用RNA抽提试剂盒（QIAGEN），从得到的淋巴细胞 中提取总RNA。
3.巢式PCR方法获得骆驼重链抗体可变区-VHH。
为提高扩增特异性，逆转录引物采用重链抗体的特异引物，合成cDNA第一链， 以此模板，分别用两套引物进行PCR扩增重链抗体VHH基因片段。采用巢式PCR 方法，第一次PCR扩增中大于800bp的为普通重链基因片段，在800～500bp之间的 为缺失轻链的重链抗体基因片段（图4），切胶回收缺失轻链重链抗体基因片段，以此 为模板用VHH特异性引物经PCR扩增得到VHH目的基因（500bp）（图5）。
多样性引物的合成：
Heavy Chain Fd5’primers:
YTCh-1:CGC CAT CAA GGT ACC AGT TGA（序列表SEQ ID NO.6）
YTCh-2:GGG GTA CCT GTC ATC CAC GGA CCA GCT GA（序列表SEQ ID NO.7）
Heavy Chain Fd3’primers:
YT1BN:GCC CAG CCG GCC ATG GCC SMK GTR CAG CTG GTG GAK TCT GGG GGA G（序列表SEQ ID NO.8）
YT2BN:GCC CAG CCG GCC ATG GCC CAG GTA AAG CTG GAG GAG TCT GGG GGA G（序列表SEQ ID NO.9）
4.VHH片段和噬菌体展示载体的连接及电转化TG1感受态。
（1）SfI单酶切VHH片段：
混匀，暂短离心，.置50℃ PCR仪中酶切过夜，纯化酶切后的PCR产物。
（2）SfI单酶切载体质粒：
混匀，暂短离心，置50℃ PCR仪中酶切过夜，凝胶回收试剂盒（QIA）纯化。
（3）pstI单酶切载体质粒：
混匀，暂短离心置37℃水浴酶切1h用PCR产物纯化试剂盒（QIA）纯化酶切 后的质粒载体，1％琼脂糖凝胶电泳，鉴定质粒。
（4）连接体系：
混匀后暂短离心，置16℃ PCR仪连接28h。
将VHH片段及pHEN6载体(Conrath,KEM other.Antimicrob Agents Chemother (Antimicrobial Chemotherapy)2001,45:(10)2807-12.，中国专利ZL20111028003.1) 分别经SfiI/PstI酶切并连接（图6-7），电转化至TG1感受态细胞中，涂布平板，经 菌落PCR验证抗体插入率。重组基因克隆效率检测：取电转化菌液涂布LB/Amp平 板上，32℃，过夜培养，次日用菌落PCR的方法验证抗体的连接效率，噬菌体抗体 库的连接效率在90%以上。（图8）
5.VHH抗体基因库的库容及多样性的鉴定和保存
根据转化后测定的滴度乘以转化的总量计算库存量。另外，随机选出电转后筛选 平板生长的20～50个阳性克隆，测序，如果没有重复序列发生，可以判断其多样性良 好。将剩余菌液加入适量2YT/Amp培养基2小时培养后，加甘油分装，于-80℃冻存， 从而得到BAFF免疫的VHH型抗体基因库。
6.VHH噬菌体抗体库的制备和初级功能鉴定
抗体库加入辅助噬菌体M13K07（Invitrogen）进行拯救。将1μl M13加入至含有 6ml2YT、0.4ml20%glucose+4μl Amp(100mg/ml)培养基的被感染细胞中，37℃静 置15min后，将此6ml培养基加入至含有92ml2YT,92ulAMP的培养基中，静置15 min，37℃250rmp，1h后，加100μl Kan(50mg/mL)37℃过夜。拯救后上清取100ul 用于抗体库的初级功能鉴定，剩余部分用PEG8000沉淀噬菌体，4℃条件下，离心收 集沉淀，保存并测定噬菌体抗体库滴度。
实施例3：抗BAFF纳米抗体的获得
1.抗BAFF特异性纳米抗体的筛选
用生物素化BAFF、链霉素亲和素磁珠方法从噬菌体库筛选抗体出抗BAFF的纳 米抗体。将生物素标记的BAFF抗原与噬菌体抗体库按比例混合，4℃反应过夜。将 抗原-噬菌体抗体复合物加入含有链霉亲和素磁珠的EP管中，翻滚转动0.5h，使磁 珠与生物素标记的抗原-噬菌体抗体复合物充分结合。PBST(0.05%T20)、PBS各漂 洗10次后，用TEA洗脱噬菌体，室温静置10min。1M Tris-HCl中合TEA，冰上保 存。将噬菌体感染半对数期生长TG1，取适量菌液稀释后涂布AMP/LB平板，32℃ 培养，测定洗脱液滴度，其余菌液扩大培养后以M13KO7超感染并振荡培养过夜，第 2天收集上清，用PEG纯化，浓缩后即为用于下一轮筛选的次级噬菌体抗体库。经3 轮筛选，测定每轮筛选后所获得的特异性噬菌体抗体的滴度，并计算每轮筛选噬菌体 投入\产出比(回收率)作为特异性噬菌体抗体富集的指标。
表l：亲和筛选对噬菌体抗体的富集效应
2.噬菌体ELISA方法挑选阳性克隆
从第3轮筛选生长菌落的琼脂平板上随机挑取单个菌落，接种在含有Amp的2YT 液体培养基的96孔培养板中培养，用辅助噬菌体超感染诱导表达噬菌体抗体。收获 表达上清，以BAFF为抗原进行ELISA测定，挑选出BAFF阳性孔，经DNA测序以 鉴定抗BAFF纳米抗体克隆的基因序列。得到包括序列表SEQ ID NO.2基因序列在内 的一系列纳米抗体基因序列，用于进一步表达和筛选特异性、高活性的纳米抗体。
实施例4：特异性纳米抗体表达质粒的构建
PCR扩增实施例3所获得的特异性的纳米抗体基因，而获得带有限制性内切酶 BbsI和BamHI位点PCR产物，用限制性内切酶BbsI和BamHI分别处理PCR产物 和载体(pSJF2载体)(kim Is.Biosic Biochem.2002,66(5):1148-51，中国专利ZL 201110280031），经T4连接酶连接重组，而获得能在大肠杆菌中高效表达的质粒 BAFFG3pSJF2，并进行基因序列测定以确定其序列的正确性。
1.获得VHH目的基因的PCR扩增条件：50ul PCR体系的组成：
PCR反应条件：
上游引物—TATGAAGACACCAGGCCCAGGTRMAGCTGGWGGAGTCT；（序列 表SEQ ID NO.10）
下游引物——GAAGATCTCCGGATCCTGAGGAGACGGTGACCTGGGT。（序列 表SEQ ID NO.11）
2.目的基因的酶切：
3.载体质粒的酶切：
混匀，暂短离心，置37℃水浴中酶切1h，用胶回收试剂盒回收酶切后的目的片 段及质粒载体。
4.连接目的基因与载体
在1.5mlEppendorf管中依次加入下列组分：
混匀后暂短离心，16℃中连接18h，得到特异性纳米抗体表达质粒 BAFFG3-pSJF2的质粒。
实施例5：抗BAFF纳米抗体的表达和纯化
1.纳米抗体蛋白在大肠杆菌中表达、纯化：
（1）将实施例4所述的含有质粒BAFFG3-pSJF2的菌种接种在含氨基苄青霉素 的LB培养板上，37℃过夜。
（2）挑选单个菌落接种于20ml的含氨基苄青霉素的LB培养液中，37℃，摇床 培养过夜。
（3）转种于1L含氨基苄青霉素的2YT培养液中，37℃摇床培养，240转/分， 培养到OD值达0.6～1.0时，加入0.1～0.5M IPTG，继续培养过夜。
（4）离心，收菌。
（5）加融菌酶裂解细菌，离心，收上清中可溶性纳米抗体蛋白。
（6）经Ni+离子亲和层析高压液相获得纯度达90%以上的蛋白。
表达的抗BAFF纳米抗体蛋白，经Ni+树脂凝胶亲和层析纯化，1-5号为250mM 咪唑洗脱出抗BAFF纳米抗体，M为标准分子量蛋白marker，纯化蛋白SDS-PAGE 结果所示，纯化蛋白纯度可达95%以上。（图9）
2.快速蛋白液相色谱：
（1）抗原及缓冲液准备准备：用0.22μm微孔滤膜过滤蛋白溶液及PB缓冲液。
层析柱准备：用PB缓冲液(PH7.2)平衡Superdex75TM层析柱，流速为0.5ml/min。
（2）样品纯化：用注射器将1ml纳米抗体样品注入样品环中，流速为0.5ml/min， 以紫外检测器自动测定洗脱液的A280nm值，收集所需纯化的纳米抗体。
经分子筛葡聚糖凝胶（superG75）过滤高压液相分析实验所显示，抗BAFF纳米 抗体的洗脱峰出现的时间经与标准分子量蛋白Marker相比较，其峰值的分子量应为 15kd。（图10）
测序得到抗BAFF纳米抗体G3的氨基酸序列为序列表SEQ ID NO.1所示。
实验例6：生物膜层干涉技术对抗BAFF纳米抗体亲和力测定实验
1.生物素化抗原准备：先将溶解在PBS中的BAFF抗原（实施例1方法制备） 与生物素按1:3的摩尔比混合均匀，室温静置0.5h，然后通过10KD超滤管超滤除去 游离的生物素分子，得到生物素化的BAFF抗原，并测定生物素化抗原的浓度。
2.抗体准备：Broford法测定抗体浓度，用PBST(0.005%T20)稀释抗BAFF纳 米抗体为20μM、10μM、5μM、2.5μM、1.25μM5个不同浓度，设20μM抗CD20 抗体(R&D公司)为无关对照。
3.包被抗原：将生物素化的抗原用PBST(0.005%T20)缓冲液稀释至20ug/ml， 然后在OctetQk系统上（Fortebio,pull公司），将6根SA传感器置于抗体溶液中反 应，使抗原偶联在SA传感器上。
4.抗原与抗体结合动力学分析：在OctetQk系统上，将包被了抗原的传感器分 别置于5个不同浓度的BAFF纳米抗体及对照抗体溶液中，作用300s，使抗体与传感 器上的抗原结合，然后将传感器置于PBST溶液中，使结合在芯片表面的抗体解离， 解离时间1500s。这一过程中机器会自动记录抗原与抗体结合、解离的实时信息。
5.亲和常数计算：所得数据用分析软件进行1：1Langmuir结合模型拟合，计 算抗原抗体结合的动力学常数。结合常数：kon(1/Ms):2.90E+03；解离常数：kdis(1/s) 2.39E-04；亲和力：KD(M)8.27E-07。
生物膜层干涉技术方法对纳米抗体的亲和力测定及动力学分析，分别用不同浓度 （20μM、10μM、5μM、2.5μM、1.25μM）的纳米抗体与BAFF抗原结合，通过结 合常数及解离常数，计算抗体的亲和力为8.27E-07。（图11）
实施例7：抗BAFF纳米抗体G3与受体BCMA/TACI的ELISA竞争抑制实验
1.0.05M NaHCO3（pH9.5）稀释BAFF抗原（实施例1制备）至10μg/ml， 100μl抗原包被2块96孔板，4℃过夜。
2.300μl0.5%BSA-PBS封闭96孔板，37℃2h。
3.先在第1块96孔板的板孔中加入浓度为50μg/ml的BCMA（B细胞成熟抗 原，Sigma）50μl，再将抗BAFF纳米抗体以一定浓度比例稀释，按50μl/孔加入， 37℃，1h。
阴性对照Anti-CD20（R&D公司）
表2：纳米抗体对受体BCMA的竞争抑制作用
4.依照第3步加样办法，在第2块96孔板的板孔中加入浓度为10ug/ml的TACI （跨膜激活物与亲环素相互作用物，Sigma）50ul，再将抗BAFF纳米抗体以一定浓 度比例稀释，按50ul/孔加入，37℃，1h。
表3：纳米抗体对受体TACI的竞争抑制作用
5.将HRP-GAH-Ig-抗体（辣根过氧化物酶标记的山羊抗人二抗，Abbkine公司） 按1:5000倍稀释，每孔加入100μl，37℃1h后，用0.05%PBST洗板三次。
6.加TMB100μl，避光室温静置20min。
7.1mol/LHCl100μl终止反应。
8.用酶标仪测定450nm波长下的样品OD值。
图12和图13显示，在纳米抗体及BAFF抗原的受体TACI与BAFF抗原结合的 竞争ELISA实验中，发现纳米抗体对TACI作用抑制率达35%，且作用特异（无关对 照抗CD20纳米抗体结果呈阴性）。
实施例8：抗BAFF纳米抗体对BAFF刺激Raji细胞增殖的抑制作用
1.细胞培养：Raji细胞（人B淋巴细胞瘤，购于ATCC）于10%FBS的1640 培养基于37℃、5%CO2条件下常规培养。
2.细胞计数：计数培养细胞，将细胞配制成106/ml的细胞悬液后，以每孔100ul 加入至96孔细胞培养板中，每孔约105个细胞。
3.BAFF刺激Raji细胞增殖：将BAFF抗原（实施例1制备）按终浓度0ng/ml、 125ng/ml、250ng/ml、500ng/ml、750ng/ml、1μg/ml，对照组为100μl无血清改良 型RPMI-1640培养基，每组设3个重复孔，分别培养24h、48h、72h后，加入10ul 的CCK-8（Doj indo Laboratories），于37℃、5%CO2条件下继续常规培养5h。在 450nm波长下，检测各孔的吸光度值，观察BAFF刺激Raji细胞增殖作用。
表4：BAFF刺激Raji细胞增殖
4.纳米抗体对细胞的增值抑制：在BAFF抗原刺激Raji细胞增殖第24h及48h 后，加入抗BAFF纳米抗体G3使其终浓度为0μg/ml l、25μg/ml、50μg/ml、75μg/ml、 100μg/ml，每组3个复孔，再分别继续培养细胞48h、24h，使BAFF抗原刺激Raji 细胞增殖达72h。
图14显示，750ng/ml的BAFF抗原对刺激Raji细胞72h，细胞可见明显见增殖。 在BAFF抗原刺激48h后加入纳米抗体，对细胞增殖的抑制作用更加明显，并且抗 BAFF纳米抗体G3的抑制率为25%。