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防治果蔬采后病害的生物拮抗菌菌株、其制备方法及其应用.pdf

  • 上传人:xia****o6
  • 文档编号:8871842
  • 上传时间:2021-01-09
  • 格式:PDF
  • 页数:16
  • 大小:1.90MB
  • 摘要
    申请专利号:

    CN201310344832.0

    申请日:

    20130803

    公开号:

    CN103952327B

    公开日:

    20160427

    当前法律状态:

    有效性:

    失效

    法律详情:

    IPC分类号:

    C12N1/20,A23B7/155,C12R1/01

    主分类号:

    C12N1/20,A23B7/155,C12R1/01

    申请人:

    山西省农业科学院农产品贮藏保鲜研究所

    发明人:

    施俊凤,孙常青,王潇冉,王春生,白云凤,郭志利

    地址:

    030031 山西省太原市农科北路16号

    优先权:

    CN201310344832A

    专利代理机构:

    代理人:

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    内容摘要

    本发明涉及微生物和生物防治领域中的一种生物拮抗菌、其制备方法及其应用。菌株名称为Enterobacter cowanii B-6-1,属于肠杆菌属Enterobacteriaceae。其主要形态特征包括:杆状,短棒状,长0.8-1.2μm,宽1.0-1.6μm,革兰氏染色阴性,菌落白色,表面光滑,在常温下生长良好。本发明的菌株具有优良的抗病性能,最佳配方为:拮抗菌菌液浓度为1×108cfu/mL以上,添加50mmol/L的Na2SiO3,能够达到最佳的抗病效果,对果蔬农业的发展具有十分重要的价值。

    权利要求书

    1.防治果蔬采后病害的生物拮抗菌菌株B-6-1,其名称为EnterobactercowaniiB-6-1,属于肠杆菌属Enterobacteriaceae,保藏日期2012年10月11日,保藏号CCTCCMNO:2012398;其主要特征见下表:。 2.利用权利要求1所述的生物拮抗菌菌株B-6-1制备的抗病菌液,其特征在于:拮抗菌菌液浓度为1×10cfu/mL以上,添加25-100mmol/L的NaSiO。 3.根据权利要求2所述的抗病菌液,其特征在于:拮抗菌菌液浓度为1×10cfu/mL以上,添加50mmol/L的NaSiO。 4.权利要求2或3所述的抗病菌液的制备方法,其特征步骤包括:挑取原种,将其接种在LB液体培养基中,在28℃下摇床培养1-2天后,得种子液;种子液在28℃条件下,200rpm摇床培养,LB培养基中摇床培养24-36小时后即得目的菌液。 5.权利要求2或3所述的抗病菌液的使用方法,其特征在于:将果蔬浸泡于抗病菌液中,其腐烂即得到良好控制。

    说明书

    技术领域

    本发明涉及微生物和生物防治领域中的一种生物拮抗菌、其制备方法及其应用, 特别是涉及此生物拮抗菌在果蔬采后病害防治中的应用。

    背景技术

    果蔬采后由真菌引起的腐烂而造成的损失非常巨大。目前,化学杀菌剂是防治果 蔬采后真菌病害的主要手段之一。然而,长期使用化学杀菌剂,其残留水平不断升高,同时 也导致具有抗性病原菌的产生。例如,许多杀菌剂可控制柑桔的青霉病和绿霉病的发生,但 近年来由于大量使用杀菌剂引起指状青霉和意大利青霉的获得性抗性已经成为采后病害 防治的一大难题而引起人们的重视。许多杀菌剂具有异味,污染环境,不易降解,因此,寻找 低毒性、高效、环境友好和残留量低的杀菌剂的替代品或部分替代品就日渐迫切。

    使用拮抗酵母菌防治果蔬采后病害,可以减少化学农药的用量和在果蔬产品上的 残毒,对保护人体健康和防止环境污染都极为重要。AspireTM、Biosave110和Biosave111是 国外己经注册升记的酵母类微生物抗菌剂,主要用于控制柑橘类和仁果类果实的采后腐 烂。这展示了利用拮抗菌来安全有效地防治水果采后病害具有广阔的前景。

    发明内容

    本发明要解决的技术问题是提供一种能防治果蔬采后病害的菌株Enterobacter cowaniiB-6-1,同时提供此菌株的制备方法以及利用此菌株制备的抗病菌液。

    为解决上述技术问题,本发明所采取的技术方案如下。

    防治果蔬采后病害的生物拮抗菌菌株B-6-1,其名称为EnterobactercowaniiB- 6-1,属于肠杆菌属Enterobacteriaceae,保藏日期2012年10月11日,保藏号CCTCCMNO: 2012398;其主要特征见下表:

    防治果蔬采后病害的生物拮抗菌菌株B-6-1的制备方法,其步骤包括:

    A、取一至多个番茄,将其放在盛有0.2M磷酸缓冲液的容器中,在100rpm旋转振荡 器中洗涤10min,丢弃洗液;再用相同方法进行二次清洗,二次清洗前,先对番茄进行30秒超 声处理,保留洗液;

    B、然后对二次洗液进行连续稀释后,将稀释液涂布在LB固体培养基上,每皿 0.1mL,在28℃下培养24-48h至长出单菌落,依据不同的菌落特征随机选取单菌落,在LB固 体培养基上重复划线后,挑取纯化的单菌落与配制的灰葡萄孢孢子悬液在PDA平皿上做对 峙试验,选择可明显抑菌作用的菌落;

    C、将有明显抑菌作用的菌落于200r/min28℃下,在LB液体培养基中摇菌,48小时 后进行番茄的活体实验;每果刺5mm×5mm伤口两个,于伤口处分别接种悬浮液接种50μL,2h 后再分别接种1X105孢子/mL的灰葡萄孢悬液20μL,将上述经处理的果实于25℃下保湿,7d 后统计发病率和病斑直径;

    D、筛选出抑菌效果较好的菌株,再根据权利要求1所述的特征对其进行鉴定,即得 目的菌株。

    利用上述生物拮抗菌菌株B-6-1制备的抗病菌液,其中拮抗菌菌液浓度为1× 107cfu/mL以上,添加25-100mmol/L的Na2SiO3;优选的,拮抗菌菌液浓度为1×108cfu/mL以 上,添加50mmol/L的Na2SiO3。

    上述抗病菌液的制备方法,其步骤包括:

    挑取原种,将其接种在LB液体培养基中,在28℃下摇床培养1-2天后,得种子液;

    种子液在28℃条件下,200rpm摇床培养,LB培养基中摇床培养24-36小时后即得目 的菌液。

    上述抗病菌液的使用方法,将果蔬浸泡于抗病菌液中,其腐烂即得到良好控制。

    菌株的16SrDNA序列见SEQIDNO:1,基于16SrDNA构建的系统发育树见附图1。

    菌株的rpoB基因序列见SEQIDNO:2,基于rpoB基因构建的系统发育树树见附图 2。

    采用上述技术方案所产生的有益效果在于:参看具体实施方式部分的具体试验结 果,本发明的菌株具有优良的抗病性能,对果蔬农业的发展具有十分重要的价值。

    ①本发明通过大量试验获取了抗病菌液的配方:拮抗菌菌液浓度为l×107cfu/mL 以上,添加25-100mmol/L的Na2SiO3;并进一步确定了最佳配方:拮抗菌菌液浓度为1× 108cfu/mL以上,添加50mmol/L的Na2SiO3;能够达到最佳的抗病效果。

    ②本发明得到了目的菌株的分离方法,简便快捷,成本也很低。

    ③另外,本发明的菌株具有固氮能力,同时还可以产生细胞激肽和植物生长素,促 进植物生长。

    附图说明

    图1是基于菌株16SrDNA构建的系统发育树。

    图2是基于菌株rpoB基因构建的系统发育树

    图3是实施例3试验效果的柱形图。

    图4是实施例4试验效果的柱形图。

    图5显示不同浓度的菌液对灰葡萄孢菌丝生长的抑制效果,此图源自发明人的系 列科学试验。

    图6中,上:CK;下:1×1010菌液对樱桃番茄灰霉病的抑制效果,此图源自发明人的 系列科学试验。

    菌株Enterobactercowanii属细菌域(Bacteria)、变形菌门(Proteobacteria)、 γ-变形菌纲(Gammaproteobacteria)、肠杆菌目(Enterobacteriales)、肠杆菌科 (Enterobacteriaceae)、肠杆菌属(Enterobacter)。由中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保 藏,中心位于武汉大学。保藏日期为2012年10月11日,保藏号为:CCTCCMNO:2012398。

    具体实施方式

    以下实施例详细说明了本发明。本发明所使用的各种原料及各项设备均为常规市 售产品,均能够通过市场购买直接获得。

    实施例1:生物拮抗菌菌株EnterobactercowaniiB-6-1的制备

    番茄果面存在大量能够对病原物产生抑制作用的微生物。现从番茄表面及伤口处 分离菌株,具体方法如下:取3个番茄,将其放在盛0.2M磷酸缓冲液容器中,在100rpm旋转振 荡器中洗涤10min,丢弃洗液。再用相同方法进行二次清洗(二次清洗前,先对番茄进行30秒 超声处理),保留洗液。然后对二次洗液进行连续稀释后(10、102、103和104倍),将稀释液涂 布在LB固体培养基上,每皿0.1mL,在28℃下培养24-48h至长出单菌落,依据不同的菌落特 征随机选取单菌落,在LB固体培养基上重复划线后,挑取纯化的单菌落与配制的灰葡萄孢 孢子悬液在PDA平皿上做对峙试验,选择可明显抑菌作用的菌落。将有明显抑菌作用的菌 落,200r/min28℃下,在LB液体培养基中摇菌,48小时后进行番茄的活体实验。每果刺5mm ×5mm伤口两个,于伤口处分别接种悬浮液接种50μL,2h后再分别接种1X105孢子/mL的灰葡 萄孢悬液20μL,将上述经处理的果实于25℃下保湿,7d后统计发病率和病斑直径。在本实施 例中,其筛选到浓度为1X1010cfu/mL以上可完全抑制灰霉病发生的细菌菌株2株,浓度为 1X109cfu/mL可完全抑制灰霉病发生的酵母菌菌株2株。而Enterobactercowanii为其中一 株菌株,根据其特征对其进行鉴定,或者利用实施例2的鉴定方法进行鉴定,即得。

    实施例2:生物拮抗菌菌株EnterobactercowaniiB-6-1的鉴定

    菌株的16SrDNA序列见SEQIDNO:1,基于16SrDNA构建的系统发育树见附图1。

    菌株的rpoB基因序列见SEQIDNO:2,基于rpoB基因构建的系统发育树树见附图 2。

    菌株的鉴定方法如下:

    1、PCR引物

    16SrDNA正向引物27F:5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’(见SEQIDNO:3),

    16SrDNA反向引物1541R:5’-AAGGAGGTGATCCACCC-3’(见SEQIDNO:4),

    RopB基因正向引物CM7-f:5′-AACCAGTTCCGCGTTGGCCTG-3′(见SEQIDNO:5),

    RopB基因反向引物CM7-r:5′-CCTGAACAACACGCTCGGA-3′(见SEQIDNO:6);

    2、菌体培养

    将冻干保藏的菌种复状培养后,在平板上划线分离,培养20h后挑取单菌落接种到 20ml液体培养基中,37℃200rpm培养15h。

    3、基因组DNA提取

    用SDS-蛋白酶K裂解,十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)沉淀细胞碎片和多糖,再用异 丙醇沉淀来提取总DNA。

    1)取单菌落接种于5ml相应的培养基中,在合适的温度下培养。根据细菌的生长率 不同培养时间可由几小时到几天不等。

    2)取1.0ml菌液于1.5ml离心管中,13,000rpm离心2min,弃上清。

    3)沉淀重悬于1.0ml0.85%NaCl中。

    4)室温13,000rpm离心2min,弃上清。

    5)沉淀重悬于550μl1×TE中。

    6)加17μl溶菌酶(35mg/ml),37℃温育30min。

    7)加3μl蛋白酶K(20mg/ml),37℃温育30min。

    8)加30μl10%SDS,37℃温育30min。

    9)加100μl5MNaCl充分混匀。

    10)加80μlCTAB/NaCl溶液,混匀,65℃水浴10min。

    11)加等体积(0.7~0.8ml)氯仿/异戊醇(24∶1),轻轻振荡混匀。

    12)室温,13,000rpm离心10min。

    13)将上清液转移到一新1.5ml离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇(25∶24∶1) 轻轻振荡混匀。

    4、PCR扩增

    16SrDNA序列PCR反应条件:

    95℃for5min;95℃for1min,57℃for1min,72℃for1min20sec,30cycles:72 ℃for

    5min;4℃save,end。

    16SrDNA序列反应体系为100μl:

    Taq(5U/μl)0.8μl;10×PCRBuffer(Mg2+Plus)10μl;dNTPMixture(2.5mM/each)8 μl;模板DNA2.5ng;引物F1(10μmol/L)2μl,引物R1(10μmol/L)2μl;ddH2O补足到100μl。

    ropB基因序列反应条件:

    denaturationat95℃for5min;3cyclesofdenaturationat95℃for1min, annealingat55℃for2min15s,elongationat72℃for1min15s;30cyclesof denaturationat95℃for35s,annealingat55℃for1min15s,elongationat72℃ for1min15s;afurther7minofelongationat72℃.Anannealingtemperatureof 50℃wasusedforseveralstrainswhichwouldnotamplifyat55℃.

    ropB基因序列反应体系为100μl:

    Taq(5U/μl)0.8μl;10×PCRBuffer(Mg2+Plus)10μl;dNTPMixture(2.5mM/each)8 μl;模板DNA2.5ng;引物F1(10μmol/L)2μl,引物R1(10μmol/L)2μl;ddH2O补足到100μl。

    实施例3:对番茄灰霉病的生防效果

    配制浓度分别为0(对照)、1×107cfu/mL、1×108cfu/mL、1×109cfu/mL、1× 1010cfu/mL的Enterobactercowanii菌液,番茄果实经2%的NaClO表面消毒后,每果刺5mm ×5mm伤口两个,于伤口处分别将以上四种浓度的EnterobactercowaniiB-6-1悬浮液接 种50μL,2h后再分别接种1X106孢子/mL的灰葡萄孢悬液30μL,将上述经处理的果实于25℃ 下保湿,7d后统计发病率。每次处理10个果实,该试验重复三次。

    发病率统计结果如附图3所示,随着浓度的升高,番茄灰霉病的发病率下降。CK灰 霉病的发生率为100%;在1×107cfu/mL时,其发生率75.33%,1×108cfu/mL为57.11%,1× 109cfu/mL时仅为9.11%,在最高浓度1×1010cfu/mL时,可完全抑制番茄灰霉的发生。

    实施例4.添加Na2SiO3对Enterobactercowanii生防效果的影响

    方法:番茄果实经2%的NaClO表面消毒后,每果刺5mm×5mm伤口两个,于伤口处分 别将接种下表所示9种不同的悬浮液50μL,2h后再分别接种1X106孢子/mL的灰葡萄孢悬液 30μL,将处理后的果实于25℃下保湿,7d后统计发病率。每次处理10个果实,该试验重复三 次。

    编号 处理 发病率(%) 1 CK 100.00 2 1×107Enterobacter cowanii 75.33 3 1×107Enterobacter cowanii+25mMNa2SiO3 66.58 4 1×107Enterobacter cowanii+50mMNa2SiO3 34.89 5 1×107Enterobacter cowanii+100mMNa2SiO3 40.40 6 1×108Enterobacter cowanii 57.11 7 1×108Enterobacter cowanii+25mMNa2SiO3 50.18 8 1×108Enterobacter cowanii+50mMNa2SiO3 17.97 9 1×108Enterobacter cowanii+100mMNa2SiO3 25.80

    结果参看附图4,显示在Enterobactercowanii菌液中,适当添加Na2SiO3可以增强 Enterobactercowanii的生防效力,不同浓度的Na2SiO3对肠杆菌的生防效力的影响不同, 50mmol/L对效力的提高效果最好。

    上述描述仅作为本发明可实施的技术方案提出,不作为对其技术方案本身的单一 限制条件。

    关 键  词:
    防治 果蔬采后 病害 生物 拮抗 菌株 制备 方法 及其 应用
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