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1、(10)申请公布号 CN 102433313 A (43)申请公布日 2012.05.02 CN 102433313 A *CN102433313A* (21)申请号 201110365111.9 (22)申请日 2011.11.17 CGMCC No.5315 2011.10.10 C12N 9/14(2006.01) C12N 15/55(2006.01) C12N 15/63(2006.01) C12N 1/15(2006.01) C12N 1/19(2006.01) C12N 1/21(2006.01) C12P 13/12(2006.01) (71)申请人 天津启仁医药科技有限公司 。
2、地址 300457 天津市滨海新区海通街与洞 庭路交口国际生物医药联合研究院 S1006 室 (72)发明人 高智慧 刘磊 姚瑞娟 王文芳 (74)专利代理机构 天津佳盟知识产权代理有限 公司 12002 代理人 侯力 (54) 发明名称 一种 L-ATC 水解酶和编码基因及其重组表达 蛋白质的应用 (57) 摘要 本发明公开了一种 L-ATC 水解酶和编码 基因序列及其重组表达蛋白质的制备及应 用。本发明所提供的来源于假单胞菌 (保藏 号 CGMCCNo.5315)的 L-ATC 水解酶是序列表中 SEQIDNo.1 的氨基酸残基序列或将 SEQIDNo.1 的 氨基酸残基序列经过一个或几个。
3、氨基酸残基的 替代、 缺失或添加具有与 SEQIDNo.1 相同活性的 由 SEQIDNo.1 衍生的蛋白质。编码基因序列是序 列表中 SEQIDNo.2 的核苷酸序列。本发明将来源 于假单胞菌的 L-ATC 水解酶基因克隆并表达制备 重组酶, 可用于生物法水解 L-ATC 生产 N- 氨甲 酰 -L- 半胱氨酸 (L-NCC), 进一步用于酶法生产 L- 半胱氨酸。 (83)生物保藏信息 (51)Int.Cl. (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书 1 页 说明书 5 页 序列表 3 页 附图 3 页 CN 102433317 A1/1 页 2 1. 一种 。
4、L-ATC 水解酶, 其特征在于, 它具有序列表中 SEQ ID No.1 氨基酸残基序列或 将SEQID No.1的氨基酸残基序列经过一个或几个氨基酸残基的缺失、 替代或添加且具有与 SEQNo.1 相同活性的由 SEQ ID No.1 衍生的蛋白质。 2. 一种权利要求 1 所述的 L-ATC 水解酶的编码基因, 它是下列核苷酸序列之一 : 1) 是序列表 SEQ ID No.2 的核苷酸序列 ; 2) 编码序列表中的 SEQ ID No.1 蛋白质序列的多核苷酸序列。 3. 一种含有权利要求 2 所述基因的表达载体。 4. 一种含有权利要求 2 所述基因的细胞体系。 5. 根据权利要求 。
5、4 所述的基因的细胞体系, 其特征在于, 所述的细胞体系为原核细胞 系统。 6. 权利要求 1 所述的 L-ATC 水解酶在微生物酶法生产 L- 半胱氨酸中的应用。 权 利 要 求 书 CN 102433313 A CN 102433317 A1/5 页 3 一种 L-ATC 水解酶和编码基因及其重组表达蛋白质的应用 技术领域 0001 本发明属于生物技术领域, 涉及来源于假单胞菌的一种 L-ATC 水解酶的编码基 因, 以及重组蛋白质的表达与应用。 背景技术 0002 L-ATC水解酶(L-ATC hydrolyse)是一种催化L-ATC(L-2-氨基2-噻唑啉-4-羧 酸, L-2-ami。
6、no-2-thiazoline-4-carboxylic acid) 水解产生 N- 氨甲酰 -L- 半胱氨酸 (N-carbamyl-L-cysteine, L-NCC) 的酶。因为 L-NCC 可作为中间产物, 经 N- 氨甲酰 -L- 半 胱氨酸酰胺水解酶 (L-NCC 酰胺水解酶 ) 催化生成终产物 L- 半胱氨酸, 所以 L-ATC 水解酶 是参与酶法转化生产 L- 半胱氨酸的重要成员之一。具体过程参见附图 1。 0003 L- 半胱氨酸 (L-cysteine) 是组成蛋白质的 20 种氨基酸之一, 是一种 氨基酸, 它的存在可以保持蛋白质的稳定性, 同一条或不同多肽链两个 L- 。
7、半胱氨酸残基间以二硫 键 (-S-S-) 连接, 使蛋白质具有稳定的空间立体结构。L- 半胱氨酸在医药、 食品、 饲料、 化 妆品等行业具有广泛的用途, 日益受到重视。目前 L- 半胱氨酸的生产方法主要有毛发水解 后还原法、 化学合成法、 发酵法和酶法合成法等。 近年来, 以微生物为酶源, 采用酶法制备氨 基酸的技术有了快速的发展。 微生物酶法具有特异性强、 生产工艺简单、 副反应和副产物少 等优点。特别是近年来, 以酶法合成替代难于用发酵法生产的氨基酸, 有了显著的进步。目 前, 有 3 种微生物酶法转化合成 L- 半胱氨酸的工艺路线 : (1) 以 3- 氯 L- 丙氨酸为前体物 的 L-。
8、 半胱氨酸酶法合成 ; (2) 以 O- 乙酰丝氨酸为前体物的酶法合成 L- 半胱氨酸 ; (3) 以 DL-ATC 为前体物的酶法生产 L- 半胱氨酸。 0004 DL-ATC是以丙烯酸甲酯为前体物合成的化工产品。 日本学者Sano等于1977年以 添加甘油和DL-ATC的极限培养基进行筛选, 从388个土样中筛选到一株嗜硫氮杂环戊烯假 单胞菌 AJ3854, 该菌株可以以 DL-ATC 为底物合成 L- 半胱氨酸。以培养 18h 的 AJ3854 细胞 为酶源, 添加 1 DL-ATC 3H2O、 1 KH2PO4和 0.14盐酸羟胺的缓冲液为底物溶液, 二者按 一定比例混合后在 30反应。
9、 24h 后, 在反应液中可产生 6.1g/L 的 L- 半胱氨酸 ( 反应过程 中有部分 L- 半胱氨酸氧化为 L- 胱氨酸, 均以 L- 半胱氨酸计 )。Sano 又以其实验室中 37 个属的 463 株菌株为实验对象, 研究了这些菌株以 DL-ATC 为底物的 L- 半胱氨酸合成能力, 研究发现, 除了假单胞菌之外, 其余 22 株菌 ( 分属 13 个属 ) 也可以以 DL-ATC 为底物合成 L- 半胱氨酸, 这些属的代表菌株及其转化能力如表 1 所列。 0005 表 1 不同细菌转化 DL-ATC 合成 L- 半胱氨酸的产量 0006 说 明 书 CN 102433313 A CN。
10、 102433317 A2/5 页 4 0007 对 DL-ATC 酶法合成 L- 半胱氨酸转化途径的研究最早开始于 1979 年, 日 本学者 Sano 提出了完成该转化过程的两种假设 : 一种是以 S- 氨甲酰 -L- 半胱氨酸 (S-carbamyl-L-cysteine, L-SCC) 为中间产物的 S- 代途径 ; 另一种是以 L-NCC 为中间产物 的 N- 代途径, 反应过程和酶系如附图 1 所示。其中以 N- 氨甲酰 -L- 半胱氨酸为中间产物 的转化途径最初于 1998 年由 Tamura 报道。该学者对 L- 半胱氨酸合成菌株假单胞菌 ON-4a 和 AJ3865 进行研究。
11、, 诱导实验发现, 如果分别以 DL-ATC、 L-NCC 和 L-SCC 为诱导物进行细胞 培养, 诱导后的细胞加入不同的底物进行酶活测定, 仅 DL-ATC 诱导后的细胞具有 L-ATC 水 解酶活性 ; 而且各种细胞均有L-NCC酰胺水解酶活性而无L-SCC酰胺水解酶活性, 而且各种 细胞均不能够利用 N- 氨甲酰 -D- 半胱氨酸、 S- 氨甲酰 -L- 半胱氨酸和 S- 氨甲酰 -D- 半胱 氨酸为底物进行酶促反应生成L-半胱氨酸。 Tamura还对中间产物进行了纯化, 纯化后的产 物经过红外光谱扫描、 质谱分析、 核磁共振分析和元素分析, 结果与标准的N-氨甲酰-L-半 胱氨酸完全。
12、相同, 因此证明了这两株菌进行以L-NCC为中间产物的L-半胱氨酸合成代谢途 径。 0008 目前, 有关酶法合成 L- 半胱氨酸相关酶系的报道不多。 发明内容 0009 本发明的目的是提供一种新的 L-ATC 水解酶及其编码基因, 获得活力较高的重组 酶, 并且这种 L-ATC 水解酶可在制备 L-NCC 及进一步酶法生产 L- 半胱氨酸中应用。 0010 本发明申请人从污泥中分离得到了一株新的假单胞菌 Pseudomonas sp.QR-101, 于 2011 年 10 月 10 日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心, 地址 : 北京 市朝阳区北辰西路1号院3号, 保藏号CG。
13、MCC No.5315, 它进行以L-NCC为中间产物的 L-半 胱氨酸合成代谢途径, 涉及 ATC 消旋酶、 L-ATC 水解酶和 L-NCC 酰胺水解酶等 3 个酶的协同 催化作用。 说 明 书 CN 102433313 A CN 102433317 A3/5 页 5 0011 本发明提供的 L-ATC 水解酶, 来源于假单胞菌 Pseudomonas sp.QR-101, 是序列表 中 SEQ IDNo.1 的氨基酸残基序列或将 SEQ ID No.1 的氨基酸残基序列经过一个或几个氨 基酸残基的缺失、 替代或添加且具有与 SEQ ID No.1 相同活性的由 SEQ ID No.1 衍。
14、生的蛋 白质。 0012 序列表中SEQ ID No.1的氨基酸残基序列是由173个氨基酸残基组成的蛋白质。 0013 本发明所提供的 L-ATC 水解酶的编码基因, 是下列核苷酸序列之一 : 0014 (1) 序列表中 SEQ ID No.2 的 DNA 序列, 由 519 个碱基组成 ; 0015 (2) 编码序列表中 SEQ ID No.1 蛋白质序列的多核苷酸序列。 0016 含本发明基因的表达载体及细胞体系均属于本发明的保护范围。 所述的细胞体系 为原核细胞体系。 0017 本发明重组 L-ATC 水解酶蛋白可以通过以下方法获得 : 培养含有 L-ATC 水解酶表 达载体的宿主菌 E。
15、.coli BL21/pET-21a(+)-atcB, 该细胞体系为原核细胞体系, 在所规定的 蛋白质表达条件下, 获得表达产物 L-ATC 水解酶。 0018 本发明的 L-ATC 水解酶及其变法基因可在制备 L-NCC 及进一步微生物酶法生产 L- 半胱氨酸中应用。 0019 本发明的有益效果 : 0020 本发明从一株假单胞菌中成功地克隆到一个新的 L-ATC 水解酶基因并进行了表 达 / 重组酶的制备和转化等研究, 本发明涉及的 L-ATC 水解酶的氨基酸序列通过 GenBank Blast 发现, 与来自 Pseudomonas sp.StrainBS 的 atcB(GenBank 。
16、: BAD15359.1) 的同源性为 90, 它们的核苷酸序列同源性为 88。利用高效表达 L-ATC 水解酶的大肠杆菌 E.coli BL21/pET-21a(+)-atcB, 水解 L-ATC 生产 L-NCC, 催化效率高, 发酵成本低, 且反应液中成分 单一, 后续分离纯化方便, 生成的 L-NCC 可作为 L- 半胱氨酸的中间体, 因此本发明在 L- 半 胱氨酸和 L- 胱氨酸的工业化生产领域具有良好的产业化价值。 附图说明 0021 图 1 : 是酶法转化 DL-ATC 合成 L- 半胱氨酸的 S- 代和 N- 代途径示意图 ; 0022 图 2 : 是 Pseudomonas 。
17、sp.QR-101 的 L-ATC 水解酶与数据库中已知序列 L-ATC 水 解酶 (GenBank : BAD15359.1) 的核苷酸序列比对。 0023 图 3 : 是重组质粒 pET-21a(+)/atcB 的图谱。 0024 图 4 : 是基因工程菌 E.coliBL21/pET-21a(+)-atcB 的酶切鉴定图。其中 : 泳道 M : DNAMarker15000 ; 泳道 1 : Bam HI 单酶切质粒 ; 泳道 2 : Bam HI 和 Hind III 双酶切质 粒 pET-21a(+)-atcB(+) ; 泳道 3 : Bam HI 和 Hind III 双酶切质粒 。
18、pET-21a(+) ; 泳道 4 : 以 Pseudomonas sp.QR-101 的基因组 DNA 为模板的 PCR 产物 ; 以质粒 pET-21a(+)-atcB 为模 板的 PCR 产物。 0025 图 5 : 是基因工程菌 E.coliBL21/pET-21a(+)-atcB 表达蛋白的 SDS-PAGE 电泳图。 其中, 泳道1 : Pseudomonas sp.QR-101 ; 泳道2 : 基因工程菌E.coliBL21/pET-21a(+)-atcB ; 泳道 3 : E.coli BL21/pET-21a(+)。 0026 图 6 : 是酶催化 L-ATC 生成 L-NC。
19、C 的薄层层析图谱。其中, 第 1 道 : L-ATC 标准品 ; 第 2 道 : L-NCC 标准品 ; 第 3 道 : 酶催化反应液。 说 明 书 CN 102433313 A CN 102433317 A4/5 页 6 具体实施方式 0027 实施例 1 0028 L-ATC 水解酶的克隆及一级结构特征 0029 本发明人从假单胞菌 Pseudomonas sp.QR-101 中提取基因组 DNA, 然后用 Hind III 酶切基因组 DNA, 用胶回收试剂盒从 1.2的琼脂糖凝胶上分别回收 2-9kb 的 HindIII 酶切片段, 将回收的酶切片段连接在经相同酶切处理的 pUC18。
20、 载体上, 转入 E.coli JM109 中, 在涂有 X-gal 和 IPTG 的平板上进行蓝白初筛。 0030 将含有插入片段的重组白色单菌落, 分别挑入每孔含50uL LB培养基, 37过夜培 养后, 加入100L 0.6L-ATC作为底物, 同时加入L-NCC酰胺水解酶(其基因序列见序列 表SEQ IDNo.3)0.5U, 于35振荡30min, 分别加入150uL酸性茚三酮进行显色反应, 以不加 培养液的空白作为对照。 0031 通过微孔板复筛较高活性的重组子, 并抽提质粒, 然后进行 DNA 序列测定, 结果 显示阳性重组子 PU113 中含有插入片段为 2630bp, 在其中位。
21、于 230-748bp 间有一个完 整的读码框, 为 519bp(SEQ ID No.2), G+C 含量为 61.46, 编码 173aa, 其计算分子量为 19.25kD。将该 DNA 序列通过 GenBankBlast 发现, 与来自 Pseudomonas sp.StrainBS 的 atcB(GenBank : BAD15359.1) 的同源性为 92, 它们的核苷酸序列同源性为 88。因此, 本 发明的 L-ATC 水解酶基因序列不同于现有文献报道的类似酶的序列, 它是一个新基因。 0032 实施例 2 0033 大肠杆菌基因工程菌的构建及重组 L-ATC 水解酶的表达 0034 。
22、根据测序结果, 按照该蛋白质编码基因的两末端序列设计引物 P1 和 P2, 其中上游 P1 : 5 -CCCGGA TCC ATG AGT GAT AAG CCA GTC CAC AG-3 含有 Bam HI 酶切位点 ; 下游引 物 P2 : 5 -CCC AAGCTT TCATTT CTGGCC ACC CTGTTGTT-3 含有 HindIII 酶切位点。 0035 以假单胞菌 Pseudomonas sp.QR-101 的基因组为模板, 按如下 PCR 程序进行 DNA 扩增 : 0036 94变性 1min, 66复性 1min, 72延伸 1min, 扩增反应进行 30 个循环。 。
23、0037 PCR 扩增产物经 Bom HI 和 HindIH 双酶切后, 连接到经相同酶切后的载体 pET-21a(+), 构建重组子 pET-21a(+)/atcB。 0038 获得的重组子pET-21a(+)/atcB采用CaCl2法转化宿主菌大肠杆菌BL21(DE3), 经 鉴定后获得 BL21(pET-21a(+)/atcB) 工程菌。 0039 将 BL21(pET-21a(+)/atcB) 工程菌于 37活化过夜, 按 1 100 转接到 100mL 含 100g/mL氨苄青霉素的LB培养基中, 37培养至对数生长期 ; 加入终浓度为1mM的IPTG, 37继续培养3h ; 4, 。
24、6,000r/min离心10min, 收集菌体, 加入0.1mol/L磷酸钾缓冲液(pH 8.0) 悬浮洗涤后, 6,000r/min 离心 10min, 收集菌体, 重复洗涤一次, 加入磷酸钾缓冲液制 成酶源细胞悬液。 0040 实施例 3 0041 L-ATC 水解酶活力的测定方法 0042 (1) 原理 : 采用酸性茚三酮法。L-ATC 水解酶水解 L-ATC 生成 L-NCC, L-NCC 能被 L-NCC酰胺水解酶分解生成L-半胱氨酸, L-半胱氨酸在煮沸的条件下与酸性茚三酮试剂生 说 明 书 CN 102433313 A CN 102433317 A5/5 页 7 成红色物质, 在。
25、 560nm 下有最大吸收, 其颜色深浅与 L- 半胱氨酸的量成正比。 0043 (2) 方法 : 在 1的 L-ATC 的溶液中加入 6的 K2HPO4至 pH 值 7.5 配成底物终浓 度为 0.75的溶液, 然后取 1mL 的底物溶液, 加入 0.5mL 实施例 2 制备的酶源细胞悬液, 同 时加入 50UL-NCC 酰胺水解酶, 于 37水浴中反应 10min。 0044 反应液中L-半胱氨酸含量测定采用酸性茚三酮法, 取反应液0.2mL, 加入0.2mL冰 醋酸, 再加入 0.2mL 酸性茚三酮试剂 ( 称取 250mg 茚三酮, 溶于 6mL 乙酸和 4mL 浓盐酸的混 合液中 )。
26、, 于沸水浴中反应 10min, 然后立即在冷水中冷却, 最后加入 2.4mL 工业酒精, 总体 积 3mL, 放置 10min 后于 560nm 下比色, 以不加酶源细胞悬液的反应液作空白对照。 0045 L- 半胱氨酸测定标准曲线的建立 : 精确配制 1mmol/L L- 半胱氨酸标准溶液, 分别 用蒸馏水稀释至以下浓度 : 0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1mmol/L。分别取 0.2mL 不同稀释度的溶液加入 0.2mL 冰醋酸, 再加入 0.2mL 酸性茚三酮试剂, 于沸水浴中反 应 10min, 然后立即在冷水中冷却,。
27、 最后加入 2.4mL 工业酒精, 总体积 3mL, 放置 10min 后于 560nm 下比色, 以 L- 半胱氨酸的浓度为横坐标、 以 A560nm为纵坐标绘制标准曲线。 0046 酶活力定义 : 在上述反应条件下, 每分钟生成 1 微摩尔 L- 半胱氨酸产物所需的酶 量定为一个酶活力单位。 0047 测定相应的 L-ATC 水解酶活力, 大肠杆菌基因工程菌酶源细胞的酶活可达 1045U/ g。 0048 取 150g/L 的酶源细胞悬液 20mL, 加入 6.25g/L 的 L-ATC 底物溶液 80mL 混合, 在 35下进行催化反应 2h, 反应完毕后的反应液经三氯乙酸去除蛋白后进行。
28、薄层层析 ( 展层 液配比为 : 异丙醇浓氨水 1 1), 与标准品进行对照, 结果见图 6。从图中可以看出, 在 第 3 展层道, 酶催化 L-ATC 后的产物为 L-NCC( 图中所示还有少部分底物 L-ATC 未转化成产 物 L-NCC)。 0049 实施例 4 0050 以重组大肠杆菌的发酵菌体为酶源细胞, 转化 L-ATC 生产 L- 半胱氨酸 0051 L-NCC是酶法转化DL-ATC(或L-ATC)合成L-半胱氨酸过程的中间产物。 L-ATC水 解酶能够催化水解 L-ATC 生成 L-NCC, L-NCC 再经 L-NCC 酰胺水解酶催化生成终产物 L- 半 胱氨酸, L- 半胱。
29、氨酸是一种重要的含硫氨基酸, 广泛应用于医药、 食品、 化妆品以及饲料工 业。 0052 反应体系组成 : 0053 底物 : 5g/L 的 L-ATC 0054 反应温度 : 35 0055 PH : 8.0 0056 酶源细胞悬液 : 8g/L 0057 L-NCC 酰胺水解酶 : 500U/L 0058 转化率 : 0059 酶源细胞悬液为8g/L, 底物L-ATC的浓度为5g/L, 反应体系为3L, 35反应2h后, 在上述条件下, 底物转化率约为 85。 说 明 书 CN 102433313 A CN 102433317 A1/3 页 8 0001 0002 序 列 表 CN 102433313 A CN 102433317 A2/3 页 9 0003 序 列 表 CN 102433313 A CN 102433317 A3/3 页 10 序 列 表 CN 102433313 A CN 102433317 A1/3 页 11 图 1 说 明 书 附 图 CN 102433313 A CN 102433317 A2/3 页 12 图 2 说 明 书 附 图 CN 102433313 A CN 102433317 A3/3 页 13 图 3 图 4 图 5 图 6 说 明 书 附 图 CN 102433313 A 。