含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物 【发明领域】
本发明属于天然药物和保健品领域。
【发明背景】
文献Walter Karrerr，Birkhauser Verlag，Bassel undstuttgart(1958)，P.652，NO：1640公开了二氢杨梅素的结构式，但是没有对二氢杨梅素的活性进行研究。杨梅素是一种已知的化合物，其结构式是：。迄今为止没有人公开过含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物及其用途。
本发明的详细描述
本发明的目的是提供一种新的组合物，其含有二氢杨梅素和杨梅素，其中二氢杨梅素含量是20％至98％重量比，杨梅素含量是2％至80％重量比。本发明组合物中还可以含有一种或几种选自下面的成分：杨梅甙，没食子酸和/或茶多酚。杨梅甙的含量优选占二氢杨梅素和杨梅素总重量的0-50wt％，没食子酸的含量优选是占二氢杨梅素和杨梅素总重量的0-50wt％，茶多酚的含量优选是占二氢杨梅素和杨梅素总重量的0-50wt％。
本申请人令人惊奇地发现含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物在制药领域和保健品领域具有广泛的用途。
本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物具有降血糖作用，可以制备成降血糖药。本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物本身可以直接药用，也可以通过药物领域常规配制技术和载体，配制成药物组合物。本发明组合物可以制备成片剂，颗粒剂，胶囊，外用药。但是本领域技术人员也可以根据需要用本领域公知的技术和载体配制成其它剂型。优选活性成分对人施用的剂量是0.01-5克/千克体重/天，但是也可以根据具体情况而定，不局限于此范围。
本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物还具有预防和/或恢复酒精性肝损伤的功能，可以作为添加剂加到各种类型地酒中，其与酒相匹配，能够不改变酒的原来的色度和清澈度和味觉。酒包括酒精酒和果汁酒。酒中含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物的含量可以是0.5-53％w/v(重量体积百分比(克/升)，下文相同)，优选是2％w/v至含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物在各种酒中的溶解饱和度的量。可以直接将所述量的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物加到酒中搅拌均匀，制得含有含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物作为添加剂的酒。
本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物还可以用作食品添加剂，做为一种配料制作各种馒头、元宵、饼、油条、面条、面点、糕点、饼干、面包、米饭、火腿肠等各类主食、做为一种配料制作具有各种不同口味的饮料、雪糕、冰淇淋等各种液成食品，制备各种保健食品和饮料。含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物的添加量优选是食品总重量的0.5％-45wt％。
本发明的另一个目的是提供制备本发明含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物的方法。本发明的组合物可以通过将所述组分单体按比例混合制备，也可以从蛇葡萄属植物中提取。所述蛇葡萄属植物包括粤蛇葡萄，栋叶玉葡萄，显齿蛇葡萄，大叶蛇葡萄，白蔹，东北蛇葡萄和山葡萄。所述提取方法可以是：通过各种溶剂(水和/或有机溶剂)煎煮葡萄科植物，煎煮一次或多次，煎煮液经浓缩冷却，静置过夜，检测沉淀与上清的药效成分，取具有活性的沉淀和/或经进一步硅胶吸附后得到本发明组合物。煎煮所用的溶剂优选水，醇类，酯类，酮类，醚类和强极性有机溶剂，更优选低级链烷醇，低级脂肪酸酯，具有3-12个碳原子的酮和醚和/或水，最优选甲醇，乙醇，丙醇，异丙醇，正丁醇，异丁醇，仲丁醇，叔丁醇，乙酸乙酯，乙酸甲酯，甲酸乙酯，丙酮，甲基乙基酮，乙醚，甲基乙基醚，甲基叔丁基醚，二氯甲烷，氯仿，四氯化碳，二甲亚砜，N，N-二甲基甲酰胺和/或水等等。分离使用的吸附剂可以是硅胶。
本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物可以用来制备降血糖药物，还可以作为添加剂加到各种类型的酒中，制成保健酒和保健食品和非酒精饮料。
通过下面的实施例详细说明本发明。但是应该理解这些实施例只是说明本发明，而不是在任何方面限制本发明的范围。实施例1：从二氢杨梅素和杨梅素晶体制备本发明组合物
取二氢杨梅素80g，杨梅素20g，上述组分在混合机中混合后得混合物。或者取二氢杨梅素98g，杨梅素2g，上述组分在混合机中混合后得混合物。或者取二氢杨梅素20g，杨梅素80g，上述组分在混合机中混合后得混合物。实施例2：从二氢杨梅素和杨梅素晶体制备本发明组合物
取二氢杨梅素20g，杨梅素80g，杨梅甙2.5g，没食子酸2.5g，茶多酚2.5g，上述组分在混合机中混合得混合物。或者取二氢杨梅素98g，杨梅素2g，杨梅甙2.5g，没食子酸2.5g，茶多酚2.5g，上述组分在混合机中混合得混合物。或者取二氢杨梅素85g，杨梅素15g，杨梅甙25g，没食子酸2g，上述组分在混合机中混合得混合物。或者取二氢杨梅素50g，杨梅素50g，杨梅甙25g，茶多酚2.5g，上述组分在混合机中混合得混合物。或者取二氢杨梅素70g，杨梅素30g，杨梅甙5g，上述组分在混合机中混合得混合物。实施例3：从二氢杨梅素和杨梅素晶体制备本发明组合物
分别取实施例1的第一种组合物(或实施例2的第三种组合物)30g，乳糖53g，羧甲基纤维素钠1.5g，硬脂酸镁0.5g，50％乙醇5ml，上述组分在混合机中混合后压制成片。实施例4：从二氢杨梅素和杨梅素晶体制备本发明组合物
取二氢杨梅素115g，杨梅素15g，糖粉345g，糊精145g，乙醇5ml，上述组分混合后干燥，得到冲剂。实施例5：从显齿蛇葡萄植物制备本发明组合物
取显齿蛇葡萄干燥嫩茎叶2kg，用95％乙醇(医用乙醇)回流提取两次，每次2小时，过滤，合并滤液，蒸发至干，加入1200毫升85℃热水，使浸膏充分溶解，滤去黑色不溶物，滤液中加入硅胶(100目)200g，将滤液加热至60℃，乘热过滤，将滤液冷却至室温，沉淀，静置过夜，得到黄色沉淀，产率：11.2％。其中二氢杨梅素含量74.8％重量比，杨梅素含量21.1％重量比，杨梅甙的含量是2.8％重量比，没食子酸的含量是1.3％重量比。薄层色谱分析用聚酰胺薄层层析，规格8×8cm，展开剂：甲醇，显色剂：4％三氯化铁-乙醇溶液，Rf没食子酸＝0.72，Rf杨梅甙＝0.54，Rf二氢杨梅素＝0.50，Rf杨梅素＝0.21。
或者取显齿蛇葡萄干燥嫩茎叶2kg，用95％乙醇(医用乙醇)回流提取两次，每次2小时，过滤，合并滤液，蒸发至干，加入1200毫升85℃热水，使浸膏充分溶解，滤去黑色不溶物，滤液用等体积乙酸乙酯萃取两次，合并乙酸乙酯溶液，蒸发至干，得到黄色沉淀，产率：10.25％。其中二氢杨梅素含量76％重量比，杨梅素含量18％重量比，杨梅甙的含量是3.0％重量比，没食子酸的含量是2％重量比，其余为显齿蛇葡萄植物中Rf5＝0.41的成分。薄层色谱分析用聚酰胺薄层层析，规格8×8cm，展开剂：甲醇，显色剂：4％三氯化铁-乙醇溶液，Rf没食子酸＝0.72，Rf杨梅甙＝0.54，Rf二氢杨梅素＝0.50，Rf杨梅素＝0.21，Rf5＝0.41。实施例6：从东北蛇葡萄植物制备本发明组合物
室温下，将收集来的东北蛇葡萄1000克洗去尘土，加入4000毫升水，超声提取0.5小时，过滤，残渣再加入1000毫升丙醇，再超声提取0.5小时，再过滤，滤液合并，浓缩至2毫升，加入500毫升100℃热水，冷却到60℃，静置，过滤，。滤液用硅胶(100目)100g吸附，将滤液加热至70℃，乘热过滤，将滤液冷却至室温，沉淀，静置过夜，得到黄色沉淀，产率：10.3％。其中二氢杨梅素含量58％重量比，杨梅素含量14％重量比，杨梅甙的含量是1.4％重量比，没食子酸的含量是1.7％重量比，其余为东北蛇葡萄植物中Rf5＝0.43的成分。薄层色谱分析用聚酰胺薄层层析，规格8×8cm，展开剂：甲醇，显色剂：4％三氯化铁-乙醇溶液，Rf没食子酸＝0.76，Rf杨梅甙＝0.55，Rf二氢杨梅素＝0.54，Rf杨梅素＝0.22，Rf5＝0.43。实施例7：本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物降血糖的试验1.材料与方法1.1.受试物：实施例5获得的第一种组合物1.2.试验动物和检测条件
选用健康清洁级雌性昆明种小鼠，体重24±2g，动物饲料执行标准GB14924-94。检测环境条件，温度范围20-25℃，相对湿度范围40-70％。1.3.剂量选择
试验分正常动物和高血糖模型动物两批进行，各设1个对照组(蒸馏水)和受试物0.25、0.50、1.50g/kg剂量组，分别相当于人推荐摄入量的5、10和30倍，灌胃量均为0.1ml/10g。1.4.主要仪器与试剂
四氧嘧啶(Alloxan)：Sigma公司；50％葡萄糖注射液：盐城新曹制药厂。
SUPER GLUCOCARD II GT-1640型超级血糖测定仪：日本京者第一科学株式会社生产：GLUCOCARD血糖试纸：日本京者第一科学株式会社生产。1.5.实验方法1.5.1.正常动物：禁食5小时后，取小鼠测血糖。筛检空腹血糖在正常范围内的小鼠40只，按血糖水平随机分为四组，每组10只，分别为正常对照组和样品各剂量组(组间差不大于1.1mmol/L)》1.5.2.高血糖模型动物：严格禁食24小时后，小鼠尾静脉注射四氧嘧啶50mg/kgBW，6天后禁食5小时，测血糖。筛检空腹血糖值＞10mmol/L的小鼠40办，按血糖水平随机分为四组，每组10只，分别为模型对照组和样品各剂量组(组间差不大于1.1mmol/L)。1.5.3.空腹血糖和糖耐量的测定：按设计剂量对小鼠连续灌胃给受试物30天，然后禁食5小时，给予葡萄糖1.5g/kgBW灌胃，于0、0.5、2.0小时三时相分别测定血糖值。1.6.统计方法
全部实验数据采用SPSS/PC软件包(单因素方差分析)在微机上处理。2.结果2.1.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠体重的影响
表1 各组正常小鼠的初始体重、中期体重、结束体重组别 初始体重 中期体重 结束体重
动物数 体重(g) 动物数 体重(g) 动物数 体重(g)正常对照 10 23.4±1.0 10 30.5±1.5 10 32.4±1.6受0.25g/kg 10 23.7±1.0 10 31.3±1.3 10 33.0±1.7试0.50g/kg 10 23.6±1.1 10 30.8±1.7 10 32.2±1.8物1.50g/kg 10 23.6±1.3 10 31.0±1.4 10 33.7±17F值 0.115 0.475 0.353P值 0.951 0.701 0.787注：受试物各剂量组小鼠体重在各试验期和正常对照组比较，差异均无显著意义(方差分析，P＞0.05)2.2.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠空腹血糖的影响
表2 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠空腹血糖的影响 组别 动物数 (只) 空腹血糖值(mmol/L) 差值 试验前 试验后受试物 正常对照 0.25g/kg 0.50g/kg 1.50g/kg 10 10 10 10 4.7±0.5 4.6±0.7 4.4±0.7 4.3±0.8 4.6±0.9 4.4±0.9 4.5±0.8 4.5±0.8 0.1±06 0.1±1.2 0.2±1.0 0.0±0.5
F值 0.388 0.302 0.099
P值 0.762 0.82 0.960注：受试物各剂量组空腹血糖值和正常对照组比较，差异均无显著性意义(方差分析，P＞0.05)。2.3.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠餐后血糖的影响
表3 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠餐后血糖的影响组别 动物数 葡萄糖 0h 血糖值(mmol/L)
(只) (g/kgBW) 0.5h 2h正常对照 10 1.5 4.6±0.7 10.4±1.2 5.5±0.7受0.25g/kg 10 1.5 4.3±0.8 10.8±1.0 5.2±1.0试0.50g/kg 10 1.5 4.4±0.9 10.5±1.6 5.0±1.2物1.50g/kg 10 1.5 4.5±0.8 10.5±1.4 5.2±1.9F值 0.302 0.230 0.529P值 0.824 0.875 0.665注：受试物各剂量组餐后血糖值和正常对照组比较，差异均无显著性意义(方差分析，P＞0.05)。2.4.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠糖耐量的影响
表4 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对正常小鼠糖耐量的影响组别 动物数 血糖升高及降低幅度(mmol/L)
(只) 0.5h-0h 0.5h-2h正常对照 10 5.8±0.9 4.8±0.9受试0.25g/kg 10 6.5±0.6 5.6±1.2物 0.50g/kg 10 6.1±1.0 5.5±1.0
1.50g/kg 10 6.0±1.4 5.3±1.3F值 0.998 1.018P值 0.405 0.396注：受试物各剂量组糖耐量值和正常对照组比较，差异均无显著性意义(方差分析，P＞0.05)。2.5.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对引起的高血糖小鼠体重的影响
表5 各组高血糖模型小鼠的初始体重、中期体重、结束体重组别 初始体重 中期体重 结束体重
动物数 体重(g) 动物数 体重(g) 动物数 体重(g)正常对照 10 24.3±1.3 10 30.7±2.0 10 31.2±1.9受0.25g/kg 10 24.5±2.7 10 31.8±2.2 10 32.4±2.8试0.50g/kg 10 24.0±1.4 10 31.7±2.9 10 32.6±2.9物1.50g/kg 10 23.8±1.5 10 30.9±1.9 10 30.8±1.7F值 0.271 0.576 1.418P值 0.846 0.634 0.253注：受试物各剂量组各阶段体重和模型对照组比较，差异均无显著性意义(方差分析，P＞0.05)。2.6.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对引起的高血糖小鼠空腹血糖的影响
表6 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对高血糖模型小鼠空腹血糖的影
响 组别动物数(只) 空腹血糖值(mmol/L) 差值 试验前 试验后受试 正常对照 0.25g/kg 0.50g/kg101010 22.9±3.3 20.4±5.1 22.9±3.0 13.2±4.1* 22.4±2.5 15.3±6.4 2.5±4.2 9.7±3.7* 7.2±4.7
1.50g/kg 10 22.5±3.5 17.1±6.3 5.4±6.1
F值 0.068 3.058 4.137
P值 0.977 0.041 0.0123注：与模型对照组比较，*P＞0.05(q检验)
受试物低剂量组试验后空腹血糖值及前后空腹血糖差值与模型对照组比较，差异均有显著(方差分析，P＞0.05)。2.7.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对引起的高血糖小鼠餐后血糖的影响
表7 含有二氧杨梅素和杨梅素的组合物对高血糖型小鼠餐后血糖的影响组别 动物数 葡萄糖 0h 血糖值(mmol/L)
(只) (g/kgBW) 0.5h 2h正常对 10 1.5 20.4±5.1 31.2±2.7 24.7±3.7受0.25g/kg 10 1.5 13.2±4.1* 26.4±4.2 16.5±6.6*试0.50g/kg 10 1.5 15.3±6.4 27.1 ±5.7 16.9±7.2*物1.50g/kg 10 1.5 17.1±6.3 28.4±4.3 20.2±7.2F值 3.058 2.393 3.536P值 0.041 0.085 0.024注：受试物低剂组餐后0h血糖值和低中剂量组餐后2h血糖值与模型对照组比较，差异均有显著(方差分析，P＞0.05)。2.8.含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对引起的高血糖小鼠糖耐量的影响
表8 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物对高血糖模型小鼠糖耐量的影响组别 动物数 血糖升高及降低幅度(mmol/L)
(只)
0.5h-0h 0.5h-2h正常对照 10 10.8±3.2 6.5±2.9受试0.25g/kg 10 13.3±1.7 9.9±3.0物 0.50g/kg 10 11.8±3.6 10.1±3.7
1.50g/kg 10 11.3±2.9 8.3±4F值 1.301 2.255P值 0.289 0.099注：受试物各剂量组糖耐量值和模型对照组比较，差异均有显著(方差分析，P＞0.05)。
实验结果表明，含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物具有调节血糖作用。
用实施例1的第一种组合物、实施例2的第三种组合物、实施例5的第二种组合物或实施例6的组合物进行相同的试验，得到了大致相同的结果。实施例8：本发明的含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物降血脂的试验
将动物随机分为4组，正常对照组、阳性对照组、模型对照组、提取液组。每组10只小鼠，一日一次，连续给药10天，正常对照组不给任何药。其余各组小鼠均给高脂乳剂0.5ml/只，形成实验性高血脂，于10天用药后禁食过夜，次日从小鼠眼眶取静脉血，按酶法检测血清总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)含量。 结果表明，模型对照组血清TC、TG值明显升高，HDL-C值下降，与模型对照比较，实施例5的第一种组合物组能明显降低血清TC、TG值，还使HDL-C略有升高，说明此提取物能抑制高脂乳剂引起的小鼠血脂升高，具有降脂作用。用实施例1的第一种组合物、实施例2的第三种组合物、实施例5的第二种组合物或实施例6的组合物进行相同的试验，得到相同的结果。1.材料和方法1.1.受试物：实施例5获得的第一种组合物，将受试物用蒸馏水配制成所需浓度的浑浊液供试验用。1.2.实验动物：SPF级Wistar大鼠，体重170-190g，雌性，共55只(5只备用)。实验温度：23-25℃，相对湿度：65-70％。1.3.饲料：1.3.1.普通基础饲料：配方略。(湖北省预防医学科学院实验动物中心配制的Wistar纯鼠料)。1.4.剂量分组：实验分为五个组，即正常对照组、高脂模型对照组和受试物低、中、高三个剂量组，剂量分别为0.5、1.0、1.5g/kg.bw，相当于生产厂家推荐人体日摄入量3g/60kg.bw的10、20、30倍。1.5.实验方法：
大鼠适应性饲养3天后开始实验。取大鼠尾血，测定血清总胆固醇(TC0)、甘油三脂(TG0)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-c0)基础值。根据TC0水平，将大鼠随机分成五组，每组10只动物，即低、中、高剂量组，正常对照组和高脂模型对照组。除正常对照组给予基础饲料外，其余各组均给予高脂饲料。三个受试物剂量组按1.0ml/100g.bw的容量经口灌胃给予，正常对照组和高脂模型对照组自由饮水进食。连续给予30天，于灌胃第30天检测TC，TG，HDL-C值。1.6.主要仪器与试剂：SABA-18型全自动生化分析仪(意大利产)，标准质控血清及相应试剂盒均由上海复星长征医学科学有限公司生产。1.7.数据处理：采用STATA统计软件进行统计分析2.结果2.1.第一种组合物对高脂模型动物体重的影响：从表9可见，与模型对照组比较，低、中、高剂量组在第四周时大鼠体重均低于模型对照组，低、中、高剂量组与模型对照组比较差异有显著性(P＜0.01，P＜0.01，P＜0.01)。与正常对照组比较，低、中、高剂量组第四周体重均高于正常对照组，但经统计学分析，差异无显著性。
表9 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物
对高血脂模型大鼠体重的影响(g， x±s)
剂量 动物数 体重
g/kg.bw (只) 始重 第一周 第二周 第三周 终重
正常对照 10 181.4±2.8 202.2±6.2 219.6±4.7 226.2±3.7 230.7±4.0**
模型对照 10 181.7±3.5 208.7±2.6 224.5±4.4 231.4±3.5 237.6±3.7
0.5 10 182.4±4.1 208.1±2.6 221.7±3.4 227.9±3.4 233.6±3.0**
1.0 10 183.1±2.8 207.0±2.5 221.5±2.4 227.7±2.0 233.2±2.1**
1.5 10 182.3±2.5 208.3±2.8 220.3±3.2 226.2±3.8 232.7±3.1**
**与模型对照组比较P＜0.012.2.第一种组合物对大鼠总胆固醇含量的影响：从表10可见，与模型对照组比较，实验结束时中、高剂量组总胆固醇含量在实验期间下降明显，经统计学分析，差异有显著性(p＜0.05、P＜0.01)。
表10 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物
对大鼠总胆固醇含量的影响(mmol/L， x±s)
剂量 动物数 总胆固醇
g/kg.bw (只) 试验前 P值 试验后 P值
正常对照 10 1.80±0.07 0.786 1.81±0.16 0.000
模型对照 10 1.81±0.11 - 3.72±0.34 -
0.5 10 1.83±0.10 0.803 3.35±0.55 0.269
1.0 10 1.82±0.10 0.928 3.10±0.54* 0.010
1.5 10 1.84±0.11 0.634 2.86±0.57** 0.001
*与模型对照组比较P＜0.05，**与模型对照组比较P＜0.012.3.第一种组合物对大鼠甘油三酯含量的影响：从表11可见，与模型对照组比较，试验结束时低、中、高剂量组甘油三酯含量下降明显，经统计学分析，差异有显著性(P＜0.05、P＜0.01、P＜0.01)。
表11 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物
对大鼠甘油三酯含量的影响(mmol/L， x±s)
剂量 动物数 总胆固醇
g/kg.bw (只) 试验前 P值 试验后 P值
正常对照 10 1.24±0.25 0.828 1.29±0.11 0.000
模型对照 10 1.26±0.27 - 2.30±0.47 -
0.5 10 1.23±0.19 0.788 1.90±0.29* 0.011
1.0 10 1.24±0.18 0.820 1.89±0.24** 0.009
1.5 10 1.21±0.15 0.584 1.86±0.12** 0.008
*与模型对照组比较P＜0.05，**与模型对照组比较P＜0.012.4.一种组合物对大鼠高密度脂蛋白胆固醇含量的影响：从表12可见，与模型对照组比较，低、中、高剂量组对高密度脂蛋白胆固醇有升高作用，经统计学分析，差异有显著性(P＜0.05)。
表12 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物
对大鼠高密度脂蛋白胆固醇含量的影响(mmol/L， x±s)
剂量 动物数 高密度脂蛋白胆固醇
g/kg.bw (只) 试验前 P值 试验后 P值
正常对照 10 1.13±0.12 0.872 1.06±0.11 0.000
模型对照 10 1.12±0.18 - 0.84±0.11 -
0.5 10 1.10±0.08 0.644 0.94±0.10* 0.027
1.0 10 1.13±0.09 0.841 0.93±0.07* 0.042
1.5 10 1.14±0.05 0.733 0.95±0.08* 0.015
*与模型对照组比较P＜0.052.5.第一种组合物对大鼠血脂水平的影响：本实验方法为高脂饲料与受试物同时给予，属预防性，故TG、TC下降及HDL-c上升值均与高脂模型对照组比较。由表13可见，中、高剂量组总胆固醇含量下降幅度分别为16.7％、23.1％，低、中、高剂量组甘油三酯含量下降幅度分别为17.4％、17.8％、19.1％，低、中、高剂量组高密度脂蛋白胆固醇含量升高值为4.64、5.03、4.26mg/dl。
表13 含有二氧杨梅素和杨梅素的组合物对大鼠血脂水平的影响
剂量 动物数 TC TG HDL-C
g/kg.bw (只) (％) (％) (mg/dl)
0.5 10 10.3 17.4 4.64
1.0 10 16.7 17.8 5.03
1.5 10 23.1 19.1 4.26
判断标准： 下降＞10％ 下降＞15％ 升高4mg/dl
注：HDL-c升高值(mg/dl)是mmol/L×38.7＝mg/dl换算结果用实施例1的第一种组合物、实施例2的第三种组合物、实施例5的第二种组合物或实施例6的组合物进行相同的试验，得到了大致相同的结果。实施例9：本发明含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物预防和/或恢复酒精性肝损伤的功能1、材料与方法1.1试品：本发明含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物，见实施例5的第一种组合物。1.2实验动物：成年雄性小鼠(18-22克)，每组10只。1.3实验方法和步骤1.3.1剂量分组及受试样品给予时间
实验设空白对照组、模型对照组和受试品三个剂量组(分别为10mg/kg、20mg/kg、40mg/kg，分别用无水乙醇配制，浓度分别为0.5mg/ml、1.0mg/ml、2.0mg/ml)，用无水乙醇(分析纯)造成肝损伤模型，无水乙醇浓度为50％(以蒸馏水稀释)，小鼠灌胃12-14ml/kgBW(折合乙醇的剂量为6000-7000mg/kg BW)。受试样品给予时间为30天。1.3.2给予受试样品的途径
经口灌胃给予受试样品，并记录每只动物的饲料摄入量或饮水量。1.3.3实验步骤
受试品三个剂量组每日经口灌胃给予受试样品的乙醇溶液0.2ml，空白对照组和模型对照组给予蒸馏水。动物每周称重两次。给予受试样品结束时将模型对照组及各样品组一次灌胃给予50％乙醇12ml/kg BW，空白对照组给蒸馏水，禁食15小时处死动物，进行各项指标的检测及病理组织学检查。1.3.4检测指标
肝组织中丙二醛(MDA)还原型谷胱甘肽(GSH)
甘油三酯(TG)的含量1.4肝匀浆中过氧化脂质降解产物丙二醛(MDA)测定方法1.4.1原理
MDA(malondiadehycle)是细胞膜脂质过氧化的终产物之一，检测其含量可间接估计脂质过氧化的程度，MDA与硫代巴比妥酸在酸性条件下共热，形成粉红色复合物，吸收峰在535nm，具此可测得MDA的含量。1.4.2仪器与试剂
仪品721分光光度计、微量加样品、恒温水浴锅、普通离心机、混旋器、具塞离心管、组织匀浆器
试剂0.2M乙酸盐缓冲液PH3.5
0.2M乙酸溶液185ml
0.2M乙酸钠溶液15ml
1mmol/L四乙氧基丙烷(贮备液，4℃保存3个月)，临用前用水稀释成40nmol/ml
8.1％十二烷基硫酸钠SDS
0.8％硫代巴比妥酸TBA
0.2M磷酸盐缓冲液PH7.4
0.2M磷酸氢二钠1920ml
0.2M磷酸二氢钾480ml1.4.3实验步骤1.4.3.1样品制备
组织匀浆样品：取一定量的所需脏器，生理盐水冲洗、拭干、称重、剪碎，置匀浆器中，加入0.2M磷酸盐缓冲液，以2000r/min匀将10s，间歇30s，反复进行3次，制成5％组织匀将(W/V)，3000r/min离心5~10min，取上清液待测。1.4.3.2样品测定
表14试剂 空白管 样品管 标准管5％组织匀浆 0.1ml40nmol/ml四乙氧基丙烷 0.1ml8.1％SDS 0.2ml 0.2ml 0.2ml0.2M乙酸盐缓冲液 1.5ml 1.5ml 1.5ml0.8％TBA 1.5ml 1.5ml 1.5mlH2O 0.8ml 0.7ml 0.7ml混匀，避光沸水浴60min，流水冷却，于532nm比色1.4.3.3计算A：空白管吸光度B：样品荧吸光度F：四乙氧基丙烷吸光度C：四乙氧基丙烷浓度K：稀释倍数1.4.3.4数据处理及结果判定
数据采用方差分析，但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验，方差齐，计算F值，F值/F0.05，结论：各组均数间差异无显著性；F值≥F0.05，P≤0.05，用多个实验组和一个对照组均数的两两比较方法进行统计；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。结果判定
在模型成立的前提下，受试样品组的MDA含量与模型对照组比较，差异有显著性，判定该指标结果阳性。1.5.肝匀浆还原型谷胱甘肽(GSH)测定方法1.5.1原理
GSH和5，5′-二硫对硝基甲酸(DTNB)反应在GSH-Px催化下可生成黄色的5-硫代2-硝基甲酸阳离子，于423nm波长有最大吸收峰，测定该离子浓度，即可计算GSH的含量。1.5.2试剂
0.9％生理盐水
4％磺基水杨酸溶液
0.1mol/L PBS溶液(pH＝8.0)
Na2HPO4 13.452g
KH2PO4 0.722g
加蒸馏水至1000ml
0.004％DTNB溶液：称取DTNB 40mg溶于1000ml的0.1mol/L PBS溶液(pH＝8.0)中。
叠氮纳缓冲液
NaN3 16.25mg
EDTA-Na2 7.44mg
Na2HPO4 1.732g
NaH2PO4 1.076g
加蒸馏水至1000ml，用少量HCl、NaOH调pH7.0，4℃保存。
标准溶液：称取还原型GSH15.4mg，加叠氮纳缓冲液至50ml，终浓度为1mmol/L1.5.3方法1.5.3.1样品测定：取肝脏0.5g加生理盐水5ml充分研磨成细浆(10％肝匀浆)，混匀后取浆液0.5ml加4％磺基水杨酸0.5ml混匀，室温下3000rpm离心10分钟，取上清液即为样品。
表15
测定管 空白管
样品 0.5ml -
4％磺基水杨酸 - 0.5ml
DTNB 4.5ml 4.5ml混匀，室温放置10分钟后，412nm处测定吸光度。1.5.3.2标准曲线
表16
1 2 3 4 5 6Immol/L(ml) 0 0.05 0.10 0.15 0.20 0.25生理盐水(ml) 0.50 0.45 0.40 0.35 0.20 0.25DTNB(ml) 4.50 4.50 4.50 4.50 4.50 4.50GSH量(μmol/L) 0 100 200 300 400 5001.5.3.3计算
样品GSH含量(μmol/g肝组织)＝对应曲线浓度值((μmol/L)÷50g/L1.5.4数据处理和结果判定
数据采用方差分析，但需方差分析的程序先进行方差齐性检验，方差齐，计算F值，F值＜F0.05，结论：各组均数间差异无显著性；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。
结果判定
在模型成立的前提下，受试样品组的还原型GSH含量与模型对照组比较，差异有显著性，判定该指标结果阳性。1.6肝匀浆中甘油三脂(TG)测定方法1.6.1测定方法：采用甘油三脂测定试剂盒(甘油磷酸氧化酶过氧化物酶法)测定10％肝匀浆中的甘油三脂含量。与血清甘油三脂测定方法相同，以等量10％肝匀浆替代血清按操作说明进行操作，测定结果以mmol/g肝重表示。1.6.2数据处理和结果判定
数据采用方差分析，但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验，方差齐，计算F值，F值＜F0.05，结论：各组均数间差异无显著性；F值≥F0.05，P≥0.05，用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计，对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。
结果判定
在模型成立的前提下，受试样品组的TG与模型对照组比较，差异有显著性，判定该指标结果阳性。1.7肝脏病理组织学变化，诊断标准和结果判定1.7.1实验材料：从肝左叶中部做横切面取材，冰冻切片，苏丹III染色。1.7.2镜检：从肝脏的一端视野开始记录细胞的病理变化，用40倍物镜连续观察整个组织切片。主要观察脂滴在肝脏的分布、范围和面积。1.7.3评分标准
肝细胞内脂滴散在，稀少 0分
含脂滴的肝细胞不超过1/4 1分
含脂滴的肝细胞不超过1/2 2分
含脂滴的肝细胞不超过3/4 3分
肝组织几乎被脂滴代替 4分1.7.4数据处理和结果判定
采用方差分析，但需按方差分析的程序先进行方差剂性检验，方差齐，计算F值，F值＜F0.05，结论：各组均数间差异无显著性：F值≥F0.05，P≤0.05，用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变是转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。结果判定
在模型成立的前提下，模型对照组与受试样品任何一个剂量组之间，脂肪变性减轻，有统计学上的差异，可判断为阳性结果。1.8结果判定：满足任一条件，可判定受试样品具有对酒精性肝扣内务有辅助保护作用1.8.1肝脏MDA、还原型GSH和TG三项检测指标结果阳性。1.8.2.肝脏MDA、还原型GSH和TG三项指标中任两项指标阳性和病理组织学检查结果阳性。2.结果2.1肝匀浆中过氧化脂质降解产物丙二醛(MDA)
由表17可知，损伤对照组与阴性对照组相比，肝组织中MDA含量明显升高，差异有极显著性(P＜0.01)；受试物各剂量组MDA含量比损伤对照组降低，且有极显著性差异(P＜0.01)。说明受试物可降低肝组织中MDA含量。2.2肝匀浆还原型谷胱甘肽(GSH)
由表17可知，损伤对照组与阴性组相比GSH含量明显降低，差异有极显著性(P＜0.01)。受试物各剂量组GSH含量高于损伤对照组，差异有显著性(P＜0.01)。说明受试物可有效阻止GSH的耗竭。2.3肝匀浆中甘油三脂(TG)
由表17可知，损伤对照组与阴性对照比较，肝脏TG含量明显升高，差异有极显著性(P＜0.01)。受试物各剂量组TG含量明显低于损伤对照组，差异有显著性(P＜0.05)。说明受试物可降低肝脏中TG的含量。
表17 含有二氢杨梅素和杨梅素的组合物
对丙二醛、还原型谷胱甘肽和甘油三脂的影响 组别 动物数 MDA(μmol/g肝重) GSH(μmol/g肝重) TG(mmol/g肝重) 平均值 P值 平均值 P值 平均值 P值 对照组 10 7.59±0.59 0.000 15.34±1.26 0.000 10.08±1.20 0.000 模型组 10 17.08±2.30 8.89±0.96 50.94±1.22 低剂量组 10 11.25±1.34 0.000 11.95±0.99 0.000 38.32±2.75 0.000 中剂量组 10 11.65±1.46 0.000 11.89±1.01 0.000 32.32±2.15 0.000 高剂量组 10 12.32±1.39 0.001 10.93±1.05 0.000 36.48±2.19 0.0002.4肝脏病理组织学检查：取肝脏(左大叶)10％福尔马林固定，冰冻切片苏丹III脂肪染色，苏木精复染，封片，镜检，结果见表18。1)阴性对照组动物：有3例见肝细胞出现轻度脂肪变性。2)损伤对照组动物：肝细胞均出现弥漫性脂肪变性，脂滴分级为+++~++++级。3)中、高剂量组肝细胞脂肪变性程度明显低于阳性对照组，且差异有显著性(P＜0.05)。低剂量组肝细胞脂肪变性程度与阳性对照组比较无显著性差异。
表18对肝脏脂滴分布的影响 组别 (mg/kg) 动物数 (只) 总积分 P值 阴性对照(0) 损伤对照(0) 低剂量(10) 中剂量(20) 高剂量(40) 10 10 10 10 10 3 39## 28 28* 26* ＜0.01 ＜0.05 ＜0.05
与阴性对照组比较：##P＜0.01；与损伤对照组比较：*P＜0.053..结论：试验结果表明，实施例5得到的第一种组合物可有效地阻止乙醇导致肝脏肝脏GSH耗竭和MDA升高，减轻肝细胞脂肪变性，具有预防乙醇性肝损伤功能。利用实施例6、实施例5的第二种组合物、实施例1的第一种组合物和实施例2的第三种组合物进行上述相同的试验，得到了大致相同的结果。实施例10：含有实施例5的第一种组合物作为添加剂的白酒的制备茅台酒200毫升，实施例5的第一种组合物6.2g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5的第一种组合物的茅台酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例11：含有实施例5的第一种组合物作为添加剂得白酒的制备二锅头酒1000毫升，实施例5的第一种组合物53g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5的第一种组合物的二锅头酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例12：含有实施例2的组合物作为添加剂的果酒的制备小枣酒1000毫升，实施例5得到的第一种组合物0.5g，
上述组分搅拌均匀，得到原小枣酒原色的液体，饮用味觉和未加实施例5得到的第一种组合物的小枣酒一样。分别用实施例1和5的组合物得到相同的结果。实施例13：含有实施例5得到的第一种组合物作为添加剂的白酒的制备茅台酒1000毫升，实施例5得到的第一种组合物10g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5得到的第一种组合物的茅台酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例14：含有实施例5得到的第一种组合物作为添加剂的白酒1的制备用医用酒精和水配制成56度白酒1000ml，加入实施例5得到的第一种组合物0.5g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5得到的第一种组合物的二锅头酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例15：含有实施例5得到的第一种组合物作为添加剂的白酒2的制备用医用酒精和水配制成38度白酒1000ml，加入实施例5得到的第一种组合物1g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5得到的第一种组合物的二锅头酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例16：含有实施例5得到的第一种组合物作为添加剂的白酒3的制备用医用酒精和水配制成56度白酒1000ml，加入实施例5得到的第一种组合物2g，
上述组分搅拌均匀，得到澄清透明的液体，饮用味觉和未加实施例5得到的第一种组合物的二锅头酒一样。分别用实施例1和2的组合物得到相同的结果。实施例17：含有本发明的组合物的面条的制备取莜面200g、荞面100g、莞豆面50g和实施例5的第一种组合物(或实施例1或2的各种组合物)20g，水适量，混合，压制成面条。实施例18：含有本发明的组合物的面包的制备小麦粉300g，干酵母3.5g，砂糖10g，盐2g，温水200ml，紫苏油12g，实施例5的第一种组合物(或实施例1或2的各种组合物)25g，上述成分混合并烘制成面包。实施例19：含有本发明的组合物的饮料的制备将酸梅原汁20ml，用水200ml调兑成酸梅饮料，加入50g实施例5的第一种组合物(或实施例1或2的各种组合物)，搅拌均匀，得到保健饮料。该饮料中还可以通入二氧化碳气体适量。