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一种检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒及专用引物和靶序列.pdf

  • 上传人:C***
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  • 上传时间:2020-10-06
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN200910087632.5

    申请日:

    20090701

    公开号:

    CN101591715B

    公开日:

    20110810

    当前法律状态:

    有效性:

    有效

    法律详情:

    IPC分类号:

    C12Q1/70,C12Q1/68,C12N15/11,C12R1/93

    主分类号:

    C12Q1/70,C12Q1/68,C12N15/11,C12R1/93

    申请人:

    中国人民解放军军事医学科学院基础医学研究所

    发明人:

    徐东刚,李伍举,蔡欣,付文亮,曹源,邹民吉

    地址:

    100094 北京市海淀区太平路27号

    优先权:

    CN200910087632A

    专利代理机构:

    北京众合诚成知识产权代理有限公司

    代理人:

    史双元

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    内容摘要

    本发明公开了一种属于病原体基因快速诊断领域的检测甲型H1N1流感病毒的专用引物和包括该引物的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒以及该引物所对应的靶序列。本发明的专用引物所对应的靶序列,其碱基序列如SEQ?ID?No.1所示,该试剂盒利用基因反转录和等温扩增技术原理,对甲型H1N1病毒核酸进行快速检测,检测结果可肉眼判定,也可利用电泳进行分析。该试剂盒具有快速、敏感、特异和操作方便的特点。

    权利要求书

    1.一种检测甲型H1N1流感病毒的专用引物,由4条特异性引物组成,其特征在于,所述4条特异性引物的序列分别为:引物F1核苷酸序列如序列表中SEQ ID No.2所示,引物B1核苷酸序列如序列表中SEQ ID No.3所示,引物F2核苷酸序列如序列表中SEQ ID No.4所示,引物B2核苷酸序列如序列表中SEQ ID No.5所示。 2.一种检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,其特征在于,包括含有权利要求1所述专用引物的反应预混液。 3.根据权利要求2所述的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,其特征在于,所述反应预混液为下述成分的混合液且各成分的终浓度为:引物F1 1.76μM;引物B 1 1.76μM;引物F2 0.29μM;引物B2 0.29μM;dNTP 2.05mM;1.47×Bst DNA聚合酶缓冲液;MgSO11.76mM;甜菜碱1.47M。 4.根据权利要求3所述的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括Bst DNA聚合酶、RNA酶抑制剂、AMV反转录酶和无RNA酶的ddHO。 5.根据权利要求4所述的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括SYBR Green I。 6.根据权利要求5所述的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括阳性模板和阴性模板。 7.一种非诊断目的的检测甲型H1N1流感病毒的方法,其特征在于,以被检测样品的总RNA为模板,利用权利要求2-6任一项所述的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒进行环介导反转录等温扩增反应,然后鉴定被检测样品是否为甲型H1N1流感病毒阳性。  8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述环介导反转录等温扩增反应的程序为62℃反应60min;然后80℃加热2min终止反应。 9.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述鉴定被检测样品是否为甲型H1N1流感病毒阳性的方法为下述方法中的一种或多种:(1)利用反应沉淀浊度来判定,见白色沉淀为阳性;(2)反应产物中加入荧光染料SYBR Green I来判定,呈绿色为阳性;(3)通过电泳分析判定,见梯状条带为阳性。 

    说明书

    

    技术领域

    本发明涉及一种检测流感病毒的试剂盒,具体涉及一种检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒、专用引物和该引物所针对的靶序列。

    背景技术

    自2009年4月中下旬起,源自北美的甲型H1N1流感疫情开始在全球多个国家蔓延,截至北京时间六月九日十四时,世界卫生组织确认全球七十四个国家和地区共有25288例甲型H1N1流感确诊病例,其中包括死亡病例139例。至此,中国内地共报告101例甲型H1N1流感确诊病例。甲型H1N1流感已对人类健康产生严重威胁,严重危害了人们健康,并造成重大的经济损失。快速、准确地进行流感病毒的检测是防控甲型H1N1流感的关键,一方面为防治提供依据和争取时间,另外可以减轻或消除社会恐慌心理。因此快速、敏感和特意的检测试剂盒的研制具有重大应用价值和社会意义。

    2000年,日本学者Notomi等发明了一种新的恒温核酸扩增方法(Notomi T.等,Nucleic Acids Res,2000,28,E63),即环介导等温扩增法(Loop-mediatedisothermal amplification),其特点是针对靶基因的多个区域设计特异引物,利用一种链置换DNA聚合酶在等温条件65℃下进行反应,通过引物独特的反转设计,对自身进行链置换扩增,通常60分钟内即可完成反应。不需要模板的热变性、退火、长时间温度循环等过程。其扩增效率较高,可在60分钟内将靶序列扩增109~1010倍,一般能检测到10拷贝以下的样品。由于其引物分别针对多个不同的区域,任何一个不匹配反应就无法进行,因此出现非特异性扩增的情况极少。相关方法已用于早期SARA疾病的诊断和肺炎结核杆菌等检测(PoonL.L.等,Clin Chem,2004,50(6):1050-1052;Boehme,C.C.等,Clin.Microbiol.,2007,45,1936-1940)。通过逆转录酶环介导等温扩增法(reverse transcriptionloop-mediated isothermal amplification)已运用于HIV-1病毒(Kelly A.等,Journalof Virological Methods,2008,151,264-270),禽流感病毒H5、H5N 1和H9等的快速诊断(Imai M.等,Vaccine,2006,24(44-46):6679-6682;Imai M.等,J VirolMethods,2007,141(2):173-80;Chen HT等,J Virol Methods,2008,151(2):200-3)。该方法对于低浓度的病毒数量或无症状的病毒携带者的检测比RT-PCR好,目前尚未见到利用反转录和等温扩增一体化检测甲型H1N1流感病毒核酸试剂盒的报道。

    目前,检测甲型H1N1流感病毒使用的试剂盒主要利用PCR方法和实时定量RT-PCR方法。PCR方法灵敏度和特异性均要低于环介导等温扩增法,且操作步骤繁琐,反应时间长;而实时定量RT-PCR方法检测需要昂贵的实时定量PCR仪,且结果需要计算机分析。

    发明内容

    本发明的目的在于提供一种检测甲型H1N1流感病毒的专用引物。

    本发明的目的也在于提供一种含有上述专用引物的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒。

    本发明的目的还在于提供上述专用引物的靶序列。

    一种检测甲型H1N1流感病毒的专用引物,由4条特异性引物组成,所述4条特异性引物的序列分别为:引物F1具有序列表中SEQ ID No.2的核苷酸序列,引物B1具有序列表中SEQ ID No.3的核苷酸序列,引物F2具有序列表中SEQ IDNo.4的核苷酸序列,引物B2具有序列表中SEQ ID No.5的核苷酸序列。

    一种检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒,包括含有上述专用引物的反应预混液。

    所述反应预混液为下述成分的混合液且各成分的终浓度分别为:引物F11.76μM;引物B1 1.76μM;引物F2 0.29μM;引物B2 0.29μM;dNTP 2.05mM;1.47×Bst DNA聚合酶缓冲液;MgSO4 11.76mM;甜菜碱1.47M。

    所述试剂盒还包括Bacillus stearothermophilus(Bst)DNA聚合酶、RNA酶抑制剂、AMV反转录酶和无RNA酶的ddH2O。

    所述试剂盒还包括SYBR Green I。

    所述试剂盒还包括阳性模板和阴性模板。

    以检测20份样品的试剂盒为例,试剂盒组份包括:40U/μL RNase抑制剂,8U/μL Bst DNA聚合酶和5U/μL AMV反转录酶,各1管,每管21μL;无RNA酶ddH2O 1管100μL;500×SYBR Green I 1管42μL;阳性模板、阴性模板各1管25μL,浓度分别为1.41×10-21M和1.3×10-20M;反应预混液20管,各17μL。其中,反应预混液中各成分的终浓度为:引物F1 1.76μM;引物B1 1.76μM;引物F2 0.29μM;引物B2 0.29μM;dNTP 2.05mM;1.47×Bst DNA聚合酶缓冲液;MgSO4 11.76mM;甜菜碱1.47M。其中,阳性模板为HA1 RNA,阴性模板为大肠杆菌RNA。

    一种检测甲型H1N1流感病毒的方法,以被检测样品的总RNA为模板,利用本发明的检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒进行环介导反转录等温扩增反应,然后鉴定被检测样品是否为甲型H1N1流感病毒阳性。

    所述被检测样品为疑似甲型H1N1流感病毒感染者的呼吸道样本或血清,如呼吸道分泌物、痰液、鼻拭子、咽拭子、鼻腔吸取物、鼻腔冲洗液等。采用常规方法或RNA提取试剂盒从样本中提取病毒总RNA。

    所述环介导反转录等温扩增反应的25μL体系中包括:17μL反应预混液,2μL样品总RNA,1μL Bst DNA聚合酶,1μL AMV反转录酶,1μL RNase抑制剂,3μL无RNA酶ddH2O。

    所述环介导反转录等温扩增反应的程序为62℃反应60min;然后80℃加热2min终止反应。

    所述鉴定被检测样品是否为甲型H1N1流感病毒阳性的方法为下述方法中的一种或多种:

    (1)利用反应沉淀浊度来判定,见白色沉淀为阳性;

    (2)反应产物中加入荧光染料SYBR Green I来判定,呈绿色为阳性;

    (3)通过电泳分析判定,见梯状条带为阳性。

    一种上述专用引物的靶序列,所述靶序列的碱基序列如SEQ ID No.1所示。上述的专用引物是通过甲型H1N1流感病毒核酸HA区的保守序列,即上述的靶序列设计出来的。

    本发明的有益效果:不需要其他昂贵的器材,只需要一个恒温水浴锅就能进行;结果鉴定方法简单;检测时间短,特异性强,灵敏度高,可用于临床和科研。

    附图说明

    图1是PCR扩增甲型H1N1病毒HA1片段的电泳结果;

    M:DL2000;1:HA1基因

    图2是反转录等温扩增一体化方法灵敏度检测结果;

    M:DL2000;1~9:模板浓度2.2×108~2拷贝,浓度依次相差10倍;

    10,11:阴性对照,ddH2O质控对照

    图3是RT-PCR灵敏度检测结果;

    M:DL2000;1:阴性对照;2~9:模板浓度2.2×108~2拷贝,浓度依次相差10倍

    图4是反转录等温扩增一体化检测试剂盒特异性结果;

    M:DL2000;1-3:3株不同亚型的春季H1N1流感病毒RNA;4-6:3株不同亚型的春季H3N2流感病毒RNA;7:以人全血提总RNA为模板检测;8:质控阳性对照;9:系统以ddH2O为模板阴性对照;10:大肠杆菌总RNA为模板阴性对照。

    具体实施方式

    以下实施例未说明的实验步骤参照《分子克隆实验指南》第二版,或参照相应试剂盒的说明书。

    实施例1设计用于检测甲型H1N1病毒的靶序列和专用引物

    (1)设计用于检测甲型H1N1病毒的靶序列

    根据Genebank报道的甲型H1N1基因的序列,序列号GI:227977103,运用生物信息学分析整个流感病毒库,并筛选出特异的针对甲型H1N1核酸HA区靶序列HA1,位于HA全基因的第301位碱基至第580位碱基。其碱基序列如SEQ ID No.1所示。

    (2)设计用于检测甲型H1N1病毒靶序列的特异引物

    方法如下:根据Genebank中序列号为GI:227977103的甲型H1N1流感病毒核酸HA区段基因序列和上述筛选出的特异针对H1N1基因的HA区靶序列HA1,应用引物设计与特异性分析为一体的软件工具BioSun设计检测甲型H1N1病毒的4条特异性的专用引物:

    F1:GCCATGAACTTGTCTTGGGGAGAGAGCAATTGAGCTCAGT(SEQID No.2);

    B1:CAAAGGTGTAACGGCAGCATGAATTTCCTTTTTTAACTAGCCA(SEQ ID No.3);

    F2:ACCCAGGAGATTTCATCG(SEQ ID No.4);

    B2:CTTTCCCTTTATCATTAATGTAGGA(SEQ ID No.5)。

    实施例2本发明试剂盒阳性对照HA1RNA片段的制备

    (1)pMD-20T-HA1质粒的构建

    将购自上海生工生物工程技术服务有限公司的重组表达质粒pBluescript IISK(+)-HA1取1ul,采用CaCl2方法转化感受态细胞DH5α,利用含有氨苄青霉素抗性的LB固体培养基筛选出重组克隆,提取质粒。以提取的含有HA1的pBluescript II SK(+)-HA1的质粒为模板,以F2即碱基序列为SEQ ID No.4和B2即碱基序列为SEQ ID No.5为引物,PCR扩增HA1片段,反应体系为20μL:

    pBluescript II SK(+)-HA1质粒(0.5μg):1μL

    F2(5μM):0.5μL

    B2(5μM):0.5μL

    dNTP(2.5mM):1.6RNA

    10×PCR buffer:2μL

    Taq酶(5U/μL):0.2μL

    ddH2O:加到20μL

    94℃,2min;然后94℃,30sec;55℃,30sec;72℃,30sec反应30个循环;72℃延伸7min。

    扩增产物经1.5%的琼脂糖凝胶电泳鉴定,扩增片段长度为243bp,结果见图1,经纯化后的HA1片段与购自Takara生物技术有限公司的pMD-20T载体进行连接,采用CaCl2方法转化感受态细胞DH5α,利用蓝白斑筛选重组克隆,提取质粒,并用pMD-20T载体上游引物:5′-GAGCGGATAACAATTTCACACAGG-3′(SEQ ID No.6)与HA1片段的下游引物5′-CTTTCCCTTTATCATTAATGTAGGA-3′(SEQ ID No.5),进行PCR扩增,以筛选和鉴定HA1片段正向插入的重组载体pMD-20T-HA1,正向插入时扩增的片段长度为317bp,并对PCR鉴定为正向插入的重组载体进行测序鉴定。该PCR的扩增条件和反应体系与上述的以pBluescript II SK(+)-HA1质粒为模板扩增HA1片段相同,仅模板和引物不同。PCR产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳鉴定。

    其中质粒DNA的提取、酶切反应、感受态细胞DH5α的制备及转化等操作均参照《分子克隆实验指南》第二版(J.萨姆布鲁克E.F.弗里奇等,科学出版社,1996)。

    (2)HA1基因的转录

    将鉴定正向插入的重组pMD-20T-HA1质粒用BamH I酶切后回收做为模板,用SP6RNA聚合酶进行转录反应,以下反应试剂购自Takara,反应体系如下:

    pMD-20T-HA1线性化回收产物:   1ul

    二硫苏糖醇(DTT)(100mM):      2ul

    0.1%BSA:                    2ul

    10×SP6RNA聚合酶缓冲液:      2ul

    NTP混合物(10mM):             4ul

    RNA酶抑制剂(40U/μL):        0.5ul

    SP6RNA聚合酶(10-50U/μL):    1ul

    ddH2O:                       5.5ul

    反应条件37℃,1h,得到相应的HA1 RNA。然后加入1uL的DNAase I(5U/μL)消化DNA,37℃,30min,之后按照RNA提取试剂盒(购自博迈德生物技术有限公司)中纯化RNA步骤进行RNA纯化。

    实施例3利用本发明试剂盒检测甲型H1N1病毒的方法

    (1)、检测甲型H1N1病毒的专用试剂盒

    检测20份样品的试剂盒的各组分及其组分来源或配制方法:

    40U/μL RNase抑制剂,购自宝生物工程(大连)有限公司,1管,共21μL;

    8U/μL Bst DNA聚合酶,购自百灵克生物技术公司,1管,共21μL;

    5U/μL AMV逆转录酶,购自宝生物工程(大连)有限公司,1管,共21μL;

    无RNA酶ddH2O,1管,共100μL;

    500×SYBR Green I,购自得比林科技有限公司,1管,共42μL;

    1.41×10-21M的阳性模板和1.3×10-20M的阴性模板,各1管,均为25μL;其中,阳性模板HA1 RNA的制备方法如实施例2,阴性模板大肠杆菌RNA采用博迈德生物技术有限公司的RNA提取试剂盒提取总RNA。

    反应预混液20管,各17μL,配制如下:每17μL所述反应预混液中含有10×Bst DNA聚合酶缓冲液,2.5μL;10mM dNTP,3.5μL;5M甜菜碱,5μL;100mMMgSO4,2μL;浓度为30μM的引物F1和引物B1各1μL,浓度为5μM的引物F2和引物B2各1μL。

    (2)、检测方法

    A、病毒RNA的提取

    取疑为甲型H1N1流感病患者的咽拭子,使用Qiagen公司的viralRNA Mini kit提取试剂盒提取病毒总RNA。

    B、环介导反转录等温扩增反应

    样品总RNA:      2μL

    反应预混液:     17μL

    Bst DNA聚合酶:  1μL

    AMV反转录酶:    1μL

    RNA酶抑制剂:    1μL

    ddH2O:          3μL

    混匀,做好标记,在水浴锅中62℃反应60min,然后80℃,2min终止反应。

    阳性对照反应产物见白色沉淀,阴性对照透明。被检测样品见白色沉淀,表明样品中含有甲型H1N1流感病毒。

    为了进一步确定结果的可靠性,又采用了另外两种方法进行鉴定。如下:

    电泳鉴定

    配制1%的琼脂糖凝胶,将反应产物上样、电泳,结果判定时,阳性对照见梯状条带,阴性对照无条带出现。被检测样品中出现梯状条带,表明样品中含有甲型H1N1流感病毒。

    SYBR Green I染色鉴定

    向反应产物中加入2μL的500×SYBR Green I混匀,阳性对照反应液呈绿色,阴性对照无色,被检测样品呈绿色,表明样品中含有甲型H1N1流感病毒。

    实施例4反转录等温扩增一体化方法的灵敏度检测试验

    以得到的HA1 RNA片段为阳性模板,紫外定量HA1 RNA浓度为40ng/ul,计算拷贝数按如下公式:n=mMV×NA×10-6,(NA=6.02×1023),]]>为2.2×1011个拷贝数/ul。并进行梯度稀释从2.2×1011-2.2个拷贝,以10倍梯度稀释样品,浓度从高到低依次为1-12号管,以稀释好的不同梯度拷贝的样本为模板分别用反转录等温扩增一体化检测方法和RT-PCR方法进行检测,反转录等温扩增一体化检测方法扩增产物为梯状条带,RT-PCR方法扩增243bp的片段,反应体系如下:

    反转录等温扩增一体化方法,使用实施例3所述的试剂盒:模板分别取按梯度稀释的样品4~12号,模板分别为2.2×108~2.2拷贝,62℃,60min,80℃,2min,反应体系(25μL)如下:

    模板:          2μL

    反应预混液:    17μL

    Bst DNA聚合酶: 1μL

    AMV反转录酶:   1μL

    RNA酶抑制剂:   1μL

    ddH2O:         3μL

    RT-PCR方法:模板分别取按梯度稀释的样品4~12号,模板浓度分别为2.2×108~2.2拷贝,反应如下:

    模板:                    2μL

    Oligo dT primer(50μM):  1μL

    dNTP(10mM):              1μL

    ddH2O:               加到10μL

    65℃保温5min后,迅速在冰上冷却2min。离心数秒,在管中加下列反转录反应液:

    5×AMV反转录酶缓冲液:2μL

    AMV反转录酶(5U):     1μL

    RNA酶抑制剂(40U):    1μL

    ddH2O:加到20μL

    42℃,30min,75℃,15min,4℃,冷却。取2μL反转录产物进行PCR反应,反应体系(20μL)如下:

    模板:            2μL

    引物F2(5μM):    0.5μL

    引物B2(5μM):    0.5μL

    2.5mMdNTP:       1.6μL

    10×PCR buffer:  2μL

    Taq酶:           0.2μL

    ddH2O:      加到 20μL

    94℃,2min;然后反应30个循环94℃,30sec;55℃,30sec;72℃,30sec;72℃延伸7min。

    两种方法的扩增产物均使用1%的琼脂糖凝胶电泳进行鉴定,结果如图2和3所示,反转录等温扩增一体化方法检测HA1 RNA阳性模板灵敏度可达到2个拷贝,比常规PCR方法检测高100倍。

    实施例5反转录等温扩增一体化方法检测试剂盒特异性检测试验

    模板病毒RNA的来源:3株不同亚型的春季H1N1流感病毒RNA,3株不同亚型的春季H3N2流感病毒RNA,均来自河北疾病预防控制中心;人全血总RNA是以来自北京儿研所采集的正常人全血为材料,采用博迈德生物技术有限公司的RNA提取试剂盒提取总RNA;

    大肠杆菌DH5α购自Takara,也采用博迈德生物技术有限公司的RNA提取试剂盒提取总RNA。

    以实施例2制备的甲型H1N1流感病毒的HA1RNA为阳性对照、系统以ddH2O为阴性对照检测该试剂盒非特异性。反应体系(25μL)如下:

    模板:              2μL

    反应预混液:        17μL

    Bst DNA聚合酶:     1μL

    AMV反转录酶:       1μL

    RNA酶抑制剂(40U):  1μL

    ddH2O:       加到  25.0μL

    反应在62℃进行,反应时间60分钟,结束后80℃加热2分钟,各取2μL样品电泳鉴定。结果如图4所示,除HA1 RNA阳性对照有梯度条带外,其余均为阴性。

    参考文献

    1.Notomi,T.,Okayama,H.,Masubuchi,H.,Yonekawa,T.,Watanabe,K.,Amino,N.,Hase,T.,Loop-mediated isothermal amplification of DNA,Nucleic Acids Res.,2000,28,E63.

    2.Poon L L,Leung C S,Tashiro M,et al.Rapid detection of the severe acute respiratory syndrome(SARS)coronavirus by a loop-mediated isothermal amplification assay[J].Clin Chem,2004,50(6):1050-1052.

    3.Boehme C.C.,Nabeta P.,Henostroza G.,Raqib R.,Rahim Z.,Gerhardt M.,Sanga E.,HoelscherM.,Notomi T.,Hase T.,Perkins M.D.,Operational feasibility of using loop-mediated isothermalamplification for diagnosis of pulmonarytuberculosis in microscopy centers of developingcountries,J.Clin.Microbiol.,2007,45,1936-1940.

    4.Kelly A.Curtis*,Donna L.Rudolph,S.Michele Owen,Rapid detection of HIV-1 byreverse-transcription,loop-mediated isothermal amplification(RT-LAMP),Journal of VirologicalMethods,2008,151,264-270.

    5.Imai M,Ninomiya A,Minekawa H,Notomi T,Ishizaki T,Tashiro M,Odagiri T.,LinksDevelopment of H5-RT-LAMP(loop-mediated isothermal amplification)system for rapiddiagnosis of H5 avian influenza virus infection,Vaccine,2006,24(44-46):6679-82.

    6.Imai M,Ninomiya A,Minekawa H,Notomi T,Ishizaki T,Van Tu P,Tien NT,Tashiro M,Odagiri T.,Links Rapid diagnosis of H5N1 avian influenza virus infection by newly developedinfluenza H5 hemagglutinin gene-specific loop-mediated isothermal amplification method,J VirolMethods,2007,141(2):173-80.

    7.Chen HT,Zhang J,Sun DH,Ma LN,Liu XT,Cai XP,Liu YS,Links Development of reversetranscription loop-mediated isothermal amplification for rapid detection of H9 avian influenzavirus,J Virol Methods,2008,151(2):200-3.

    8.J.萨姆布鲁克E.F.弗里奇等,《分子克隆实验指南》第二版,科学出版社,1996。

    SEQUENCE LISTING

    <110>中国人民解放军军事医学科学院基础医学研究所

    <120>一种检测甲型H1N1流感病毒的试剂盒及专用引物和靶序列

    <130>34

    <160>6

    <170>PatentIn version 3.5

    <210>1

    <211>280

    <212>DNA

    <213>Influenza A virus

    <400>1

    agttcagaca atggaacgtg ttacccagga gatttcatcg attatgagga gctaagagag    60

    caattgagct cagtgtcatc atttgaaagg tttgagatat tccccaagac aagttcatgg    120

    cccaatcatg actcgaacaa aggtgtaacg gcagcatgtc ctcatgctgg agcaaaaagc    180

    ttctacaaaa atttaatatg gctagttaaa aaaggaaatt catacccaaa gctcagcaaa    240

    tcctacatta atgataaagg gaaagaagtc ctcgtgctat                          280

    <210>2

    <211>40

    <212>DNA

    <213>Artificial Sequence

    <220>

    <223>反转录等温扩增专用引物1

    <400>2

    gccatgaact tgtcttgggg agagagcaat tgagctcagt                          40

    <210>3

    <211>43

    <212>DNA

    <213>Artificial Sequence

    <220>

    <223>反转录等温扩增专用引物2

    <400>3

    caaaggtgta acggcagcat gaatttcctt ttttaactag cca                      43

    <210>4

    <211>18

    <212>DNA

    <213>Artificial Sequence

    <220>

    <223>反转录等温扩增专用引物3

    <400>4

    acccaggaga tttcatcg                                                  18

    <210>5

    <211>25

    <212>DNA

    <213>Artificial Sequence

    <220>

    <223>反转录等温扩增专用引物4

    <400>5

    ctttcccttt atcattaatg tagga                              25

    <210>6

    <211>24

    <212>DNA

    <213>Artificial Sequence

    <220>

    <223>用于鉴定pMD-20T-HA1的下游引物

    <400>6

    gagcggataa caatttcaca cagg                               24

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    一种 检测 H1N1 流感病毒 试剂盒 专用 引物 序列
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