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1、(10)授权公告号 CN 101683331 B (45)授权公告日 2013.01.30 CN 101683331 B *CN101683331B* (21)申请号 200810200713.7 (22)申请日 2008.09.27 A61K 31/215(2006.01) A61P 35/00(2006.01) (73)专利权人 厦门大学 地址 361005 福建省厦门市思明区厦门大学 (72)发明人 曾锦章 张晓坤 刘婕 李绍顺 周文 王光辉 (74)专利代理机构 上海德昭知识产权代理有限 公司 31204 代理人 缪利明 CN 101066919 A,2007.11.07, 全文 . 。
2、US 2005/0222258 A1,2005.10.06, 全文 . CN 1374288 A,2002.10.16, 全文 . 曾云等 .AKT 注射液抗肿瘤作用及其机制的 初步研究 .四川大学学报 (医学版) .2008, 第 39 卷 ( 第 3 期 ),500-502. 曾云等 . 乙酰紫草素注射液对人胃癌细胞 SGC_7901 的抑制作用及机制研究 .中国药理学 会化疗药理专业委员会第九届学术研讨会论文摘 要集 .2008,58-59. 马赤等 . 紫草抗肿瘤有效成分的初步研 究 .吉林医学 .1980,39-42. Ushio Sankawa,et alAntitumor aci。
3、tvity of shikonin and its derivatives. Chem.Pharm.Bull .1977, 第 25 卷 ( 第 9 期 ),2392-2395. (54) 发明名称 紫草素衍生物的应用 (57) 摘要 本发明提供了一种紫草素衍生物用于制备 治疗癌症的药物的应用, 所述药物以孤儿受体 Nur77 作为作用靶点。本发明还提供了孤儿受体 Nur77 作为作用靶点用于筛选紫草素衍生物的应 用。本发明的紫草素衍生物通过作用于孤儿受体 Nur77 诱导肿瘤细胞凋亡的这一重大发现, 阐明 了紫草素衍生物的抗肿瘤作用的机理, 为该类结 构的修饰和优化提供了有效的靶点。 (51。
4、)Int.Cl. (56)对比文件 审查员 师晓荣 权利要求书 1 页 说明书 8 页 附图 5 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 权利要求书 1 页 说明书 8 页 附图 5 页 1/1 页 2 1. 一种紫草素衍生物用于制备治疗肺癌或宫颈癌的药物的应用, 其特征在于, 所述紫 草素衍生物为 5, 8- 二乙酰氧基 -6-(1 乙酰氧基 -4 甲基 -3 戊烯基 )-1, 4- 萘醌 ; 所述药 物以孤儿受体 Nur77 作为作用靶点。 2. 如权利要求 1 所述的应用, 其特征在于, 所述药物用于诱导肿瘤细胞的凋亡。 3. 如权利要求 2 所述的应用, 其特征在于。
5、, 所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导孤儿 受体 Nur77 的表达。 4. 如权利要求 2 所述的应用, 其特征在于, 所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导孤儿 受体 Nur77 出核且定位在线粒体上。 5.如权利要求2所述的应用, 其特征在于, 所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导Bcl-2 的构象变化。 6. 如权利要求 2 所述的应用, 其特征在于, 所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过激活 Bax。 7. 如权利要求 2 所述的应用, 其特征在于, 所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过引起细胞 色素 C 从线粒体释放。 权 利 要 求 书 CN 101683331 B 2 1/8 页 3 紫草素衍生物的应用 。
6、技术领域 0001 本发明涉及中草药领域, 具体地说, 是关于紫草素衍生物的应用。 背景技术 0002 孤儿受体 Nur77( 又称为 TR3 或 NGFI-B), 是核受体超家族的重要成员, 它也是一 种立刻早期基因, 其表达可以被血清、 生长因子、 十四烷酰佛波醋酸酯 -13(TPA) 以及钙信 号迅速诱导 (Zhang XK.et.al., Expert Opin Ther Tar2007 ; 11 : 69-79 ; Moll UM, et.al., Oncogene2006 ; 25 : 4725-43.)。 0003 Nur77 最初被认为是一种细胞存活因子, 它可以介导多种存活信。
7、号通路, 包括蛋白 激酶 A、 蛋白激酶 C、 MAPK 和 NF-B 通路。Nur77 表达的促生长作用在多种肿瘤中都被证实 (Chen GQ, et.al., Int J Cancer2002 ; 99 : 171-8 ; Wu Q, et.al., Carcinogenesis2002 ; 23 : 1583-92.), 已有报道表明, Nur77 的 mRNA 在癌组织中的表达水平明显高于癌旁组织。 0004 最近, 越来越多的证据表明 Nur77 同时也是一种促凋亡分子。Nur77 对凋亡的 作用首先在未成熟的胸腺细胞和 T- 细胞杂交瘤通过 T- 细胞受体信号的凋亡中被报道。 Nu。
8、r77 对细胞凋亡的作用已在多种类型的癌细胞中被证实, 它可以对多种凋亡因子, 如钙 离子载体、 依托泊甙 (VP-16)、 佛波酯、 镉以及 1, 1-Bis(3 -indolyl)-1-(p-substituted phenyl)methanes 做出应答 (Stasik I, et.al., BBA-Mol Cell Res2007 ; 1773 : 1483-90 ; Gennari A, et.al., ToxicolAppl Pharmacol2002 ; 181 : 27-31 ; Liu S, et.al., World J Gastroenterol2002 ; 8 : 44。
9、6-50 ; Wilson AJ, et.al., Cancer Res2003 ; 63 : 5401-7 ; Chintharlapalli S, et.al., J Biol Chem2005 ; 280 : 24903-14.)。 0005 调控Nur77的增殖作用和凋亡作用的生物活性机制之一是通过Nur77的亚细胞定 位来实现的。 Nur77通过其在细胞核中的作用实现生长促进, 这一作用需要Nur77与靶基因 DNA 反应调控元件相结合, 即 Nur77 在细胞核内的转录激活作用具有诱导细胞增殖的功能。 而Nur77的凋亡作用不依赖于转录, 在其DNA结合结构域缺失时, 这种凋亡诱导。
10、作用仍可发 生。 0006 最近, 发明人通过一系列的研究发现, 在某些促凋亡因素的作用下, Nur77 可被诱 导出核, 并且定位到线粒体、 高尔基体或内质网, 诱导细胞凋亡, 这种凋亡作用可通过诱导 Nur77与Bcl-2的相互作用, 引起Bcl-2构象发生变化, 暴露出Bcl-2中蕴藏的BH3结构 域, 使 Bcl-2 从一个细胞抗凋亡蛋白转化成细胞促凋亡蛋白。已证明, 在前列腺癌、 肺癌、 结肠 癌、 卵巢癌以及胃癌等许多不同肿瘤中, 不同的凋亡因子可诱导 Nur77 的线粒体定位。由于 许多肿瘤高表达 Nur77 和 Bcl-2, 因而, 通过调控 Nur77/Bcl-2 凋亡通路成。
11、为一种非常有效 的筛选肿瘤治疗药物的方法。 0007 紫 草 为 紫 草 科 植 物 (Boraginaceae),在 我 国 有 新 疆 软 紫 草 Amebia euchroma(Royle)Johnst、 辽宁硬紫草 (Lithospermum erythrorhizon Sieb.et Zucc.) 或 内蒙紫草 (Amebia guttataBunge) 等几类。紫草性甘、 咸、 寒, 归心、 肝经, 味苦, 性寒, 有清 热凉血, 透疹解毒的功能。 说 明 书 CN 101683331 B 3 2/8 页 4 0008 紫草含多种萘醌类色素如紫草素、 乙酰紫草色素等。新疆紫草含有 。
12、, - 二 甲 基 丙 烯 酰 紫 草 素 (, -Dimethyl-acryl-shikonin)、 紫 草 素 (shikonin)、 乙 酰 紫 草 素 (Acetyl shikonin)、 异 丁 酰 紫 草 素 (Isobutyryl shikonin)、 异 戊 酰 紫 草 素 (Isovalerylshikonin)、 - 羟基异戊酰紫草素 (-Hydroxyixovalerylshikonin)、 去氧 紫草素 (Deoxyshikonin) 等, 它们具有多种生物活性。 0009 近年来, 中医临床研究证明紫草对于治疗多种癌症有较好的效果, 并证明了其主 要的活性成分是紫草素。
13、及其衍生物。目前对紫草素及其衍生物抗肿瘤作用的研究报道, 包 括抑制肿瘤细胞生长、 诱导细胞凋亡、 抑制 DNA 拓扑异构酶、 抑制蛋白酪氨酸激酶核抗血管 增生活性等 (Chen X, etal., Phytother Res.2002May ; 16 : 199-209. ; Shen CC, et al., J Nat Prod.2002Dec ; 65 : 1857-62)。但是, 紫草素及其衍生物抗肿瘤作用的机理至今尚不明 了, 并且一直没有找到一个明确的作用靶点, 因而难以对该结构进行有效的修饰和优化, 这 是制约其进一步开发成为抗癌药物的最主要原因。 发明内容 0010 本申请的发。
14、明人在研究紫草素衍生物对于肿瘤细胞的作用机理的过程中发现, 某 些紫草素衍生物可通过诱导 Nur77/Bcl-2 凋亡途径诱导多种肿瘤细胞的凋亡。 0011 因此, 本发明的第一个目的在于, 提供一种紫草素衍生物用于制备治疗癌症药物 的应用。 0012 本发明的第二个目的在于, 提供一种孤儿受体 Nur77 作为作用靶点用于筛选紫草 素衍生物的应用。 0013 根据本发明, 紫草素衍生物用于制备治疗癌症的药物的应用, 所述药物以孤儿受 体 Nur77 作为作用靶点。 0014 根据本发明, 紫草素衍生物可以诱导肿瘤细胞的凋亡, 具体的, 紫草素衍生物可以 诱导孤儿受体 Nur77 的表达、 诱。
15、导孤儿受体 Nur77 出核且定位在线粒体上、 诱导 Bc1-2 的构 象变化、 激活 Bax, 以及引起细胞色素 C 从线粒体释放和细胞凋亡。 0015 根据本发明, 所述紫草素衍生物包括乙酰紫草素、 5, 8- 二乙酰氧基 -2-(1 乙酰氧 基 -4 甲基 -3 戊烯基 )-1, 4- 萘醌和 5, 8- 二乙酰氧基 -6-(1 乙酰氧基 -4 甲基 -3 戊 烯基 )-1, 4- 萘醌。 0016 根据本发明, 所述癌症优选为肺癌、 子宫颈癌、 乳腺癌、 肝癌、 胃癌。 0017 根据本发明, 以孤儿受体 Nur77 作为作用靶点, 可以用于筛选紫草素衍生物, 以进 一步开发用于治疗各。
16、种癌症。 0018 本发明提供的作用于孤儿受体 Nur77 诱导肿瘤细胞凋亡可以用于指导筛选紫草 素衍生物, 从中获得具有抗肿瘤活性的化合物, 并可将获得的药物进而制备可作用于孤儿 受体 Nur77 诱导肿瘤细胞凋亡的活性与功能的药物。 0019 附图说明 0020 图 1A 显示紫草素衍生物对 NIH-460 细胞中 Nur77 蛋白的表达量调控结果 ; 图 1B 显示紫草素衍生物对 HeLa 细胞中 Nur77 蛋白的表达量调控结果 ; 图 1C 显示 SK07 对诱导 Nur77 的表达量增高具有良好的时效和量效关系 ; 图 1D 显示荧光染色检测紫草素衍生物导 致 Nur77 从细胞核。
17、中迁移出, 并且出核后定位于线粒体上。 说 明 书 CN 101683331 B 4 3/8 页 5 0021 图 2A 显示荧光染色检测紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡 ; 图 2B 显示凋亡的百 分比结果 ; 图 2C 显示紫草素衍生物诱导肿瘤细胞中的 PARP 蛋白降解。 0022 图 3A 为流式细胞仪分析 Annexin-V/PI 双染检测紫草素衍生物诱导 NIH-H460 肺 癌细胞的凋亡结果 ; 图 3B 为流式细胞仪分析 Annexin-V/PI 双染检测紫草素衍生物诱导小 鼠胚胎成纤维细胞 MEF 及 MEF Nur77-/- 细胞的凋亡结果。 0023 图4A、 B显示荧光染。
18、色检测紫草素衍生物诱导凋亡依赖于Nur77的表达及其出核 ; 图 4C 显示细胞凋亡率结果。 0024 图 5A 显示荧光染色检测 Nur77 和 Bcl-2 的共定位 ; 图 5B 显示荧光染色检测 SK07 激活了 Bax ; 图 5C 显示荧光染色检测 Bax 的激活伴随着细胞色素 c 的释放 ; 图 5D 显示荧光 染色检测 SK07 诱导了 Bcl-2 构象变化。 0025 具体实施方式 0026 以下结合具体实施例, 对本发明作进一步说明。 应理解, 以下实施例仅用于说明本 发明而非用于限定本发明的范围。 0027 实施例中未注明具体条件的实验方法, 通常按照常规条件如 分子克隆 。
19、: 实验室手 册 (New York : Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)中所述的条件, 或按照制造 厂商所建议的条件。 0028 本发明中使用的试剂 : 0029 脂质体 2000、 Trizol LS 购自 Invitrogen 公司 ; ECL、 山羊抗兔、 山羊抗鼠辣根过 氧化物酶二抗购自 Thermo 公司 ; Cy3 标记的山羊抗鼠二抗购自 Chenicon international ; Nur77 多抗 (sc-5569)、 Hsp60(sc-7150)、 Bcl-2(sc-509)、 Bax(sc-493)、 Bax(6A7。
20、) (sc-23959) 抗体、 PARP(sc-556494) 及 FITC 标记的山羊抗兔二抗购自 Santa Cruz ; 细胞 色素 C(556433) 抗体购自 BD 公司 ; -actin 抗体购自 Sigma 公司。Nur77 单抗购自 R&D ; Bcl2-BH3(AP1303a) 抗体购自 Abgent, PVDF 膜购自 Millipore。无特别注明外, 其它本发明 中所用的化学试剂均购自 Sigma。 0030 实施例 1、 紫草素衍生物的制备 0031 称取20kg辽宁硬紫草(市售), 磨碎后过80目筛, 收集过筛后获得的紫草粉末, 用 95乙醇进行常温渗滤提取, 至。
21、提取液为近无色为止。 0032 合并提取液, 减压浓缩至溶液变为紫红色, 得到紫褐色油状物粗产物约 250g。 0033 过滤除去不溶物后, 加入浓 HCl 酸化溶液, 至溶液由蓝色变为紫红色, 此时有大量 沉淀生成, 静置过夜。 0034 将粗产物用三氯甲烷溶解, 并每 50 毫升加 17 克 200 300 目的硅胶, 搅拌均匀上 柱。 洗脱剂分别用石油醚(6090)丙酮和石油醚(1 : 1)丙酮三氯甲烷(1 : 1), 依 次洗脱并分别收集洗脱液。 0035 将洗脱液浓缩至沉淀析出, 然后重结晶(重结晶方法参考专利号为02114973.9的 中国专利 ), 纯化紫草类化合物, 产物经 M。
22、NR、 MSUV 和元素分析数据确定为乙酰紫草素, 其结 构式如下 : 0036 说 明 书 CN 101683331 B 5 4/8 页 6 0037 乙酰紫草素 0038 (SK03) 0039 200710046917.5 和 200710041978.2 的中国专利申请的方法, 合成衍生物 5, 8- 二 乙酰氧基 -2-(1 - 乙酰氧基 -4 - 甲基 -3 - 戊烯基 )-1, 4- 萘醌 (SK06) 和 5, 8- 二乙酰氧 基 -6-(1 - 乙酰氧基 -4 - 甲基 -3 - 戊烯基 )-1, 4- 萘醌 (SK07), SK06 和 SK07 的结构式 分别如下 : 0。
23、040 0041 2 - 二乙酰紫草素 6 - 二乙酰紫草素 0042 (SK06) (SK07) 0043 实施例 2、 紫草素衍生物对于 Nur77 表达的诱导作用 0044 2.1、 细胞培养 0045 选择肺癌细胞 NIH-H460(ATCC, HTB-177) 和宫颈癌细胞 HeLa(ATCC, CCL-2), 用 RPM1640 培养基 ( 购自 Hyclone), 在 37和 5二氧化碳培养箱培养于 24 孔板组织培养 板中, 24 小时后换液, 饥饿 16 小时后进行加药 ( 不含血清 ) 处理。紫草素衍生物溶解于 DMSO(DMSO 终浓度 0.1 ) 中, 对照组用同样浓度。
24、的 DMSO 处理, 具体处理如下 : 0046 (1) 对照组 (DMSO) 0047 (2)SK03 组 0048 (3)SK06 组 0049 (4)SK07 组 0050 SK03、 SK06、 SK07 的浓度均为 5 或 10M, 处理时间为 12 或 24 小时, 以未经任 何处理的 NIH-H460 细胞和 HeLa 细胞作为对照。为了确证时效及量效关系, 用 SK07 处理 NIH-H460 细胞, 处理浓度为 1、 5 或 10M, 处理时间为 6、 12 或 24 小时, 以未经任何处理的 NIH-H460 细胞作为对照。 0051 2.2、 Western blotti。
25、ng 分析 Nur77 的表达 0052 细胞以改进的 RIPA 裂解缓冲液 (50mM Tris-Hcl, pH7.4 ; 150mM NaCl ; 5mM EDTA ; 1NP-40, 0.5脱氧胆酸钠, 0.1SDS)于冰上裂解30分钟。 以相同上样量, 8SDS-PAGE 电 泳, 转 膜, 以 5 脱 脂 奶 粉 的 TBST(50mM Tris-HCl(pH7.4), 150mM NaCl and0.1 说 明 书 CN 101683331 B 6 5/8 页 7 Tween20)室温封闭1小时, 于室温2小时或4过夜孵育一抗, 室温孵育二抗一小时, ECL显 色, 曝光, 结果如。
26、图 1A、 1B、 1C 所示。 0053 由图 1A 的结果可知, 在 NIH-H460 肺癌细胞中, 紫草素衍生物 SK03 能够有效诱导 Nur77 的表达。以 SK035-10M 的浓度处理细胞 12-24 小时, 其诱导的 Nur77 蛋白的表达 量约为对照的 3-5 倍。以 SK07 处理 NIH-H460 细胞具有类似的调控 Nur77 表达的作用, 但 SK06 对 Nur77 的表达作用被显著抑制。 0054 由图 1B 的结果可知, 在 HeLa 宫颈癌细胞中, 紫草素衍生物 SK03 能够有效诱导 Nur77 的表达。以 SK035-10M 的浓度处理细胞 12-24 小。
27、时, 其诱导的 Nur77 蛋白的表达量 显著提高。以 SK07 处理 HeLa 细胞也可导致 Nur77 表达的显著提高, 而 SK06 对 Nur77 的诱 导作用被抑制。 0055 由图 1C 的结果可知, 随着 SK07 处理浓度的增加及处理时间的延长, Nur77 的表达 量显著提高, 具有良好的时效和量效关系。 0056 2.3、 紫草素衍生物诱导 Nur77 出核 0057 选择肺癌细胞 NIH-H460(ATCC, HTB-177), 用 RPM1640 培养基 ( 购自 Hyclone), 在 37和5二氧化碳培养箱培养于覆有盖玻片的24孔板组织培养板中, 24小时后换液和进。
28、 行加药 ( 不含血清 ) 处理。紫草素衍生物溶解于 DMSO(DMSO 终浓度 0.1 ) 中, 对照组用 同样浓度的 DMSO 处理, 具体处理如下 : 0058 (1) 对照组 (DMSO) 0059 (2)TPA 组 0060 (3)SK03 组 0061 (4)SK06 组 0062 (5)SK07 组 0063 (6) 用普霉素 A(LMB)(10ng/mL) 预处理后、 加入 SK07 组。 0064 其中, 以 (1) 作为对照组、 (2) 为阳性对照组。 0065 反应板中各孔溶液的总体积均为 1ml, SK03、 SK06 和 SK07 的浓度均为 5M。 0066 细胞经。
29、处理 24 小时后, 用 0.1M 磷酸缓冲盐 PBS 洗涤 3 遍, 用 4多聚甲醛溶液 40ul固定, 再以含1Triton的0.1M PBS溶液穿孔5min ; 接着, 用含5BSA的0.1M PBS溶 液、 37封闭半小时, 然后加入兔抗Nur77多克隆抗体(1 : 200稀释)(Santa Cruz, sc-5569) 作为一抗, 4过夜。 0067 取上步过夜处理后的细胞溶液, 于室温放置 15min, 吸掉一抗后, 用 0.1M 的 PBS 洗 涤 3 遍, 每遍 5min ; 加入 cy3 耦连的羊抗鼠二抗 (1 : 500 稀释, 购自 Chemicon), 于 37放置 3。
30、0min 后, 吸掉二抗, 用 0.1M PBS 洗涤 3 遍, 每遍 5min。 0068 DAPI( 购自 Sigma) 染色用于检测细胞核。然后用荧光显微镜 (Carl Zeiss) 观察 内源性 Nur77 的亚细胞定位 (BioRad), 结果如图 1D 所示。 0069 根据图1D的结果可知, 以紫草素衍生物处理24小时后, Nur77从细胞核中迁移出, 并且出核后定位于线粒体上 ; 而对照组中的 Nur77 仍留在细胞核中 ; LMB 是已知的依赖于 CRM1 的出核转运通路和抑制剂, 用 LMB 和 SK07 共同处理细胞后, SK07 诱导的 Nur77 在细胞 质中的积累可。
31、以显著地被 LMB 所抑制, 说明 SK07 增强了 Nur77 的出核。 0070 上述结果表明 : 紫草素衍生物可以诱导 Nur77 从细胞核向细胞质的迁移且定位在 说 明 书 CN 101683331 B 7 6/8 页 8 线粒体上。 0071 实施例 3、 紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡 0072 3.1 紫草素衍生物诱导 NIH-H460 细胞凋亡 0073 选择肺癌细胞 NIH-H460(ATCC, HTB-177), 用 RPM1640 培养基 ( 购自 Hyclone), 在 37和 5二氧化碳培养箱培养于 24 孔板组织培养板中, 24 小时后换液和进行加药 ( 不 含血清。
32、 ) 处理。紫草素衍生物溶解于 DMSO(DMSO 终浓度 0.1 ) 中, 对照组用同样浓度的 DMSO 处理, 具体处理如下 : 0074 (1) 对照组 (DMSO) 0075 (2)SK03 组 0076 (3)SK06 组 0077 (4)SK07 组 0078 反应板中各孔溶液的总体积均为 1ml, SK03、 SK06 和 SK07 的浓度均为 5M。 0079 处理 24h 后, 细胞用 0.5胰酶消化, 用 0.1M PBS 洗涤后, 用 4多聚甲醛进行固 定, 以 1g/ml DAPI 进行染色, 用荧光显微镜 (Carl Zeiss) 观察细胞核的形态, 结果如图 2A 。
33、所示。随机选 5 个视野, 计算每视野 300 个细胞的凋亡数, 取 5 个视野细胞凋亡的平均 数, 计算凋亡的百分比, 结果如图 2B 所示。 0080 由图 2A 可见, 以紫草素衍生物处理 24 小时后, 细胞明显发生凋亡。凋亡的细胞 表现出典型的形态学上的特征, 如细胞质浓缩、 膜呈泡状, 核浓缩以及产生碎片等。由图 2B 的结果可知, 未用紫草素衍生物处理的细胞很少有凋亡现象发生 (7 ), 用 SK03 处理可引 起细胞明显凋亡 (22 ), SK07 的促凋亡作用显著增强 (33 ), 而 SK06 对凋亡的作用较弱 (14 )。由此可以看出, 紫草素衍生物癌细胞具有不同程度的促。
34、凋亡作用。 0081 3.2SK07 诱导 NIH-H460 细胞和 HeLa 细胞的 PARP 蛋白降解 0082 选择肺癌细胞 NIH-H460(ATCC, HTB-177) 和宫颈癌细胞 HeLa(ATCC, CCL-2), 用 RPM1640 培养基 ( 购自 Hyclone), 在 37和 5二氧化碳培养箱培养于 24 孔板组织培养板 中, 24 小时后, 分别用加有 5M SK07 的无血清的 RPMI1640 处理 3、 6、 12、 24 小时。细胞以 改进的 RIPA 裂解缓冲液 (50mM Tris-Hcl, pH7.4 ; 150mM NaCl ; 5mM EDTA ; 。
35、1 NP-40, 0.5 脱氧胆酸钠, 0.1 SDS) 于冰上裂解 30 分钟。以相同上样量, 8 SDS-PAGE 电泳, 转膜, 以 5脱脂奶粉的 TBST(50mM Tris-HCl(pH7.4), 150mM NaCl and0.1 Tween20) 室温封闭 1 小时, 于室温 2 小时或 4过夜孵育一抗 anti-PARP(1 : 1000 稀释 ), 室温孵育二抗一小时, ECL 显色, 曝光, 结果如图 2C 所示。 0083 如图 2C 所示, SK07 可以诱导 113kD 的 PARP 蛋白降解为 89kD 的特异性降解产物。 随 SK07 作用时间的延长 89kD 的。
36、降解产物量逐渐增多, 特别是 HeLa 细胞中在作用 12 小时 和 24 小时后, 113kD 的 PARP 蛋白几乎完全消失, 全部被降解。 0084 实施例 4、 利用 Annexin-V/PI 双染检测紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡 0085 在无血清 RPM1640 培养基 ( 购自 Hyclone) 中用 5M SK07 在普霉素 A(LMB) 存 在和缺少的情况下处理 NIH-H460 肺癌细胞 24 小时, 以不加 SK07 的细胞作为对照。细 胞根据 Vybrant Apoptosis Assay Kit#2 操作手册染色 PI 和 AnnexinV, 用流式细胞仪 (Bec。
37、kmanCoulter EPICS ALTRA)分析。 用EXPO32ADC软件(Beckman Coulter EPICS ALTRA) 分析, 结果如图 3A 所示。 说 明 书 CN 101683331 B 8 7/8 页 9 0086 由图3A可以看出, 5M的SK07在缺少LMB的情况下导致37.9的NIH-H460细胞 早期凋亡, 而在存在 LMB 的情况下基本不会诱导 NIH-H460 细胞发生凋亡。表明 SK07 处理 可以诱导 NIH-H460 细胞的早期凋亡, 而并不引起细胞坏死 ( 图中右下象限表示早期凋亡, 右上象限表示坏死 ) ; 且这种早期凋亡的诱导可被 LMB 抑。
38、制。 0087 同 样 地, 将 小 鼠 胚 胎 成 纤 维 细 胞 MEF(ATCC、 SCRC-1046) 和 Nur77 敲 除 的 MEFNur77-/- 细胞 (Carcinogenesis, vol28, pp1653-1658, 2007) 用 1M 和 10M SK07 或 10MSK03 处理 24 小时, 用流式细胞仪分析凋亡, 结果如图 3B 所示。 0088 由图 3B 可以看出, Nur77 敲除的 MEF Nur77-/-细胞, SK07 的促凋亡作用被显著 抑制。用 1M SK07 处理 24 小时, MEF 细胞的凋亡率为 14.6, 而同样的处理不能引起 ME。
39、FNur77-/-细胞的凋亡。 高浓度的SK07(10M)虽然可以引起MEF Nur77-/-细胞23.7的 凋亡率, 但明显小于MEF细胞57的凋亡率。 这一结果表明, SK07诱导的细胞凋亡极大程度 地依赖于 Nur77 的表达。当用 SK03(10M) 处理细胞时, 发现它可以引起 MEF 细胞 54.6 以及 MEF Nur77-/-细胞 66.8的坏死率, 这说明 SK03 的作用不依赖于 Nur77 的表达, 并对 于细胞具有非特异的毒性。 0089 实施例5、 紫草素衍生物诱导凋亡依赖于Nur77的表达水平以及Nur77的出核转运 0090 为了研究 Nur77 的易位在紫草素衍。
40、生物诱导的细胞凋亡中所起的作用, 用 Nur77 的抗体和DAPI共同染色SK07处理后的NIH-H460细胞(细胞培养同实施例2.3), 荧光显微 镜观察结果如图 4A 所示。根据图 4A 的结果可以看出, 胞质 Nur77 分布的细胞中, 细胞核多 呈现凋亡的典型形态, 而细胞核完好的细胞中 Nur77 不表达或分布于核中。 0091 为了进一步证明 Nur77 的易位同细胞凋亡诱导之间的关系, 将转染 GFP-Nur77 的 NIH-H460细胞用10M的SK07处理24小时, 然后DAPI染色检测凋亡, 用荧光显微镜观察, 结果如图 4B 所示。 0092 从图 4B 的结果可以看出,。
41、 在对照组细胞中, GFP-Nur77 定位于细胞核中, 细胞核形 态正常。而 SK07 处理后的细胞 GFP-Nur77 则定位于细胞质中, 细胞核凝缩, 破碎。 0093 如果 Nur77 的出核转运在 SK07 诱导的细胞凋亡中起作用, 抑制 Nur77 的出核将可 以减少细胞凋亡。 因此, 转染GFP-Nur77的NIH-H460细胞在LMB存在或是缺乏的情况下, 以 SK07 处理。然后 DAPI 染色检测细胞凋亡, 将显微镜观察的结果绘制柱形图, 结果见图 4C。 0094 从图 4C 的结果可以看出, 在无 GFP-Nur77 转染的条件下, 以 SK07 处理 H460 细胞,。
42、 凋亡率近 35, 而对照组为 7。在 GFP-Nur77 转染的细胞中, SK07 处理后, 凋亡率达到 88。而当细胞经 LMB 同时处理, SK07 诱导的凋亡率显著降低, 未转染细胞为 10, 转染细 胞为 16。 0095 以上的结果说明 SK07 诱导的细胞凋亡不仅依赖于 Nur77 的表达水平也依赖于其 细胞质定位。 0096 实施例 6、 SK07 诱导 Bcl-2 构象变化、 激活 Bax 0097 NIH-H460 细胞在用 SK07 处理 24 小时后, 利用免疫染色对抑凋亡蛋白 Nur77、 Bcl-2 的定位, Bax 的激活, 细胞色素 C 的释放和 Bcl-2 的。
43、构象变化进行分析, 以下抗体的稀 释比例均为 1 : 500。 0098 6.1、 Nur77 和 Bcl-2 的共定位 0099 SK07(5M) 在 LMB 存在和缺少的情况下作用于细胞 24 小时后, 用 Nur77 的抗体 说 明 书 CN 101683331 B 9 8/8 页 10 和 Bcl-2 的抗体共同染色处理后的细胞。荧光显微镜分析 Nur77 和 Bcl-2 的分布, 结果如 图 5A 所示。图 5A 显示了 Nur77 和 Bcl-2 的共定位。 0100 6.2、 SK07 激活了 Bax 0101 细胞用 5M SK07 处理 24 小时后, 共染 Bax(6A7)。
44、 的抗体和 Hsp60 的抗体。荧光 显微镜分析结果如图 5B 所示。根据图 5B 的结果可知, 在对照细胞中, 并没有观察到激活 的 Bax, 但是在 SK07 处理的细胞中, 却表现得很明显, Nur77 与线粒体特异蛋白 Hsp60 共同 定位。激活 Bax 细胞的染色通常表现核固缩, 表明了 SK07 诱导的凋亡与 Bax 的激活有关, SK07 激活了 Bax, Bax(6A7) 和 Hsp60 的共定位与细胞凋亡相关联。 0102 6.3Bax 的激活伴随着细胞色素 C 的释放 0103 SK07(5M) 在 LMB 存在和缺少的情况下作用于细胞 24 小时, Bax(6A7) 的。
45、抗体和 细胞色素 C 的抗体及 DAPI 共染细胞, 荧光显微镜分析结果如图 5C 所示。根据图 5C 的结果 可知, 细胞色素 C 与它的线粒体定位一样, 表现出小染色斑点。但是, 细胞色素 C 在用激活 的 Bax 免疫染色处理的细胞中呈弥散分布。这种现象表明 SK07 诱导了 Bax 的激活与细胞 色素 C 的释放有关。LMB 共同处理细胞, 阻止了 Nur77 的出核和 Bcl-2 构象变化, 几乎完全 抑制 SK07 诱导的 Bax 激活和细胞色素 C 的释放。 0104 6.4SK07 诱导了 Bcl-2 构象变化 0105 SK07(5M) 处理 NIH-H460 细胞 24 小。
46、时后, 以 Bcl2(BH3) 和 BAX(6a7) 的抗体及 DAPI 染色, 荧光显微镜分析结果如图 5D 所示。根据图 5D 的结果可知, Bcl-2(BH3) 的抗体 不能染色对照细胞, 但可以在SK07处理后的细胞中强染色, 且大多和Bax(6A7)的染色相一 致。共聚焦分析表明, SK07 处理后的大多数细胞这两种蛋白呈共定位。从而说明, SK07 诱 导的 Bcl-2 构象变化和 Bax 的激活以及细胞凋亡密切相关。 0106 由以上的结果可知, SK03 在 MEF 和 MEF Nur77-/- 细胞中均诱导了明显的早期凋 亡和坏死细胞(图3B), 因此说明SK03的生物活性很。
47、大程度地依赖于Nur-77-非依赖途径 ; 而 SK07 的凋亡效应与诱导 Nur77 表达及出核有关, 通过诱导 Nur77 表达及出核转运, 线粒 体定位, Bcl-2 构象变化和激活 Bax 来有效的激活 Nur77 途径, 导致细胞色素 C 从线粒体释 放, 诱导凋亡 ; 而 SK06 却没有上述作用。 0107 综上所述, 本发明的紫草素衍生物通过诱导 Nur77 表达及从细胞核定位到细胞 质, 从而诱导肿瘤细胞的凋亡。因此本发明的紫草素衍生物可以用于制备治疗癌症的以孤 儿受体 Nur77 作为作用靶点的药物。另外, 孤儿受体 Nur77 可以作为作用靶点用于筛选紫 草素衍生物。 说 明 书 CN 101683331 B 10 1/5 页 11 图 1A 图 1B 图 1C 说 明 书 附 图 CN 101683331 B 11 2/5 页 12 图 1D 图 2A 图 2B 图 2C 说 明 书 附 图 CN 101683331 B 12 3/5 页 13 图 3A 图 3B 说 明 书 附 图 CN 101683331 B 13 4/5 页 14 图 4 说 明 书 附 图 CN 101683331 B 14 5/5 页 15 图 5 说 明 书 附 图 CN 101683331 B 15 。