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紫草素衍生物的应用.pdf

  • 上传人:狗**
  • 文档编号:8466166
  • 上传时间:2020-07-06
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN200810200713.7

    申请日:

    20080927

    公开号:

    CN101683331B

    公开日:

    20130130

    当前法律状态:

    有效性:

    有效

    法律详情:

    IPC分类号:

    A61K31/215,A61P35/00

    主分类号:

    A61K31/215,A61P35/00

    申请人:

    厦门大学

    发明人:

    曾锦章,张晓坤,刘婕,李绍顺,周文,王光辉

    地址:

    361005 福建省厦门市思明区厦门大学

    优先权:

    CN200810200713A

    专利代理机构:

    上海德昭知识产权代理有限公司

    代理人:

    缪利明

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    内容摘要

    本发明提供了一种紫草素衍生物用于制备治疗癌症的药物的应用,所述药物以孤儿受体Nur77作为作用靶点。本发明还提供了孤儿受体Nur77作为作用靶点用于筛选紫草素衍生物的应用。本发明的紫草素衍生物通过作用于孤儿受体Nur77诱导肿瘤细胞凋亡的这一重大发现,阐明了紫草素衍生物的抗肿瘤作用的机理,为该类结构的修饰和优化提供了有效的靶点。

    权利要求书

    1.一种紫草素衍生物用于制备治疗肺癌或宫颈癌的药物的应用,其特征在于,所述紫草素衍生物为5,8-二乙酰氧基-6-(1’乙酰氧基-4’甲基-3’戊烯基)-1,4-萘醌;所述药物以孤儿受体Nur77作为作用靶点。 2.如权利要求1所述的应用,其特征在于,所述药物用于诱导肿瘤细胞的凋亡。 3.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导孤儿受体Nur77的表达。 4.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导孤儿受体Nur77出核且定位在线粒体上。 5.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过诱导Bcl-2的构象变化。 6.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过激活Bax。 7.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述诱导肿瘤细胞的凋亡是通过引起细胞色素C从线粒体释放。

    说明书

    技术领域

    本发明涉及中草药领域,具体地说,是关于紫草素衍生物的应用。 

    背景技术

    孤儿受体Nur77(又称为TR3或NGFI-B),是核受体超家族的重要成员,它也是一种立刻早期基因,其表达可以被血清、生长因子、十四烷酰佛波醋酸酯-13(TPA)以及钙信号迅速诱导(Zhang XK.et.al.,Expert Opin Ther Tar2007;11:69-79;Moll UM,et.al.,Oncogene2006;25:4725-43.)。 

    Nur77最初被认为是一种细胞存活因子,它可以介导多种存活信号通路,包括蛋白激酶A、蛋白激酶C、MAPK和NF-κB通路。Nur77表达的促生长作用在多种肿瘤中都被证实(Chen GQ,et.al.,Int J Cancer2002;99:171-8;Wu Q,et.al.,Carcinogenesis2002;23:1583-92.),已有报道表明,Nur77的mRNA在癌组织中的表达水平明显高于癌旁组织。 

    最近,越来越多的证据表明Nur77同时也是一种促凋亡分子。Nur77对凋亡的作用首先在未成熟的胸腺细胞和T-细胞杂交瘤通过T-细胞受体信号的凋亡中被报道。Nur77对细胞凋亡的作用已在多种类型的癌细胞中被证实,它可以对多种凋亡因子,如钙离子载体、依托泊甙(VP-16)、佛波酯、镉以及1,1-Bis(3’-indolyl)-1-(p-substituted phenyl)methanes做出应答(Stasik I,et.al.,BBA-Mol Cell Res2007;1773:1483-90;Gennari A,et.al.,ToxicolAppl Pharmacol2002;181:27-31;Liu S,et.al.,World J Gastroenterol2002;8:446-50;Wilson AJ,et.al.,Cancer Res2003;63:5401-7;Chintharlapalli S,et.al.,J Biol Chem2005;280:24903-14.)。 

    调控Nur77的增殖作用和凋亡作用的生物活性机制之一是通过Nur77的亚细胞定位来实现的。Nur77通过其在细胞核中的作用实现生长促进,这一作用需要Nur77与靶基因DNA反应调控元件相结合,即Nur77在细胞核内的转录激活作用具有诱导细胞增殖的功能。而Nur77的凋亡作用不依赖于转录,在其DNA结合结构域缺失时,这种凋亡诱导作用仍可发生。 

    最近,发明人通过一系列的研究发现,在某些促凋亡因素的作用下,Nur77可被诱导出核,并且定位到线粒体、高尔基体或内质网,诱导细胞凋亡,这种凋亡作用可通过诱导Nur77与Bcl-2的相互作用,引起Bcl-2构象发生变化,暴露出Bcl-2中蕴藏的BH3结构 域,使Bcl-2从一个细胞抗凋亡蛋白转化成细胞促凋亡蛋白。已证明,在前列腺癌、肺癌、结肠癌、卵巢癌以及胃癌等许多不同肿瘤中,不同的凋亡因子可诱导Nur77的线粒体定位。由于许多肿瘤高表达Nur77和Bcl-2,因而,通过调控Nur77/Bcl-2凋亡通路成为一种非常有效的筛选肿瘤治疗药物的方法。 

    紫草为紫草科植物(Boraginaceae),在我国有新疆软紫草Amebia euchroma(Royle)Johnst、辽宁硬紫草(Lithospermum erythrorhizon Sieb.et Zucc.)或内蒙紫草(Amebia guttataBunge)等几类。紫草性甘、咸、寒,归心、肝经,味苦,性寒,有清热凉血,透疹解毒的功能。 

    紫草含多种萘醌类色素如紫草素、乙酰紫草色素等。新疆紫草含有β,β-二甲基丙烯酰紫草素(β,β-Dimethyl-acryl-shikonin)、紫草素(shikonin)、乙酰紫草素(Acetyl shikonin)、异丁酰紫草素(Isobutyryl shikonin)、异戊酰紫草素(Isovalerylshikonin)、β-羟基异戊酰紫草素(β-Hydroxyixovalerylshikonin)、去氧紫草素(Deoxyshikonin)等,它们具有多种生物活性。 

    近年来,中医临床研究证明紫草对于治疗多种癌症有较好的效果,并证明了其主要的活性成分是紫草素及其衍生物。目前对紫草素及其衍生物抗肿瘤作用的研究报道,包括抑制肿瘤细胞生长、诱导细胞凋亡、抑制DNA拓扑异构酶、抑制蛋白酪氨酸激酶核抗血管增生活性等(Chen X,etal.,Phytother Res.2002May;16:199-209.;Shen CC,et al.,J Nat Prod.2002Dec;65:1857-62)。但是,紫草素及其衍生物抗肿瘤作用的机理至今尚不明了,并且一直没有找到一个明确的作用靶点,因而难以对该结构进行有效的修饰和优化,这是制约其进一步开发成为抗癌药物的最主要原因。 

    发明内容

    本申请的发明人在研究紫草素衍生物对于肿瘤细胞的作用机理的过程中发现,某些紫草素衍生物可通过诱导Nur77/Bcl-2凋亡途径诱导多种肿瘤细胞的凋亡。 

    因此,本发明的第一个目的在于,提供一种紫草素衍生物用于制备治疗癌症药物的应用。 

    本发明的第二个目的在于,提供一种孤儿受体Nur77作为作用靶点用于筛选紫草素衍生物的应用。 

    根据本发明,紫草素衍生物用于制备治疗癌症的药物的应用,所述药物以孤儿受体Nur77作为作用靶点。

    根据本发明,紫草素衍生物可以诱导肿瘤细胞的凋亡,具体的,紫草素衍生物可以诱导孤儿受体Nur77的表达、诱导孤儿受体Nur77出核且定位在线粒体上、诱导Bc1-2的构象变化、激活Bax,以及引起细胞色素C从线粒体释放和细胞凋亡。 

    根据本发明,所述紫草素衍生物包括乙酰紫草素、5,8-二乙酰氧基-2-(1’乙酰氧基-4’甲基-3’戊烯基)-1,4-萘醌和5,8-二乙酰氧基-6-(1’乙酰氧基-4’甲基-3’戊烯基)-1,4-萘醌。 

    根据本发明,所述癌症优选为肺癌、子宫颈癌、乳腺癌、肝癌、胃癌。 

    根据本发明,以孤儿受体Nur77作为作用靶点,可以用于筛选紫草素衍生物,以进一步开发用于治疗各种癌症。 

    本发明提供的作用于孤儿受体Nur77诱导肿瘤细胞凋亡可以用于指导筛选紫草素衍生物,从中获得具有抗肿瘤活性的化合物,并可将获得的药物进而制备可作用于孤儿受体Nur77诱导肿瘤细胞凋亡的活性与功能的药物。 

    附图说明

    图1A显示紫草素衍生物对NIH-460细胞中Nur77蛋白的表达量调控结果;图1B显示紫草素衍生物对HeLa细胞中Nur77蛋白的表达量调控结果;图1C显示SK07对诱导Nur77的表达量增高具有良好的时效和量效关系;图1D显示荧光染色检测紫草素衍生物导致Nur77从细胞核中迁移出,并且出核后定位于线粒体上。 

    图2A显示荧光染色检测紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡;图2B显示凋亡的百分比结果;图2C显示紫草素衍生物诱导肿瘤细胞中的PARP蛋白降解。 

    图3A为流式细胞仪分析Annexin-V/PI双染检测紫草素衍生物诱导NIH-H460肺癌细胞的凋亡结果;图3B为流式细胞仪分析Annexin-V/PI双染检测紫草素衍生物诱导小鼠胚胎成纤维细胞MEF及MEF Nur77-/-细胞的凋亡结果。 

    图4A、B显示荧光染色检测紫草素衍生物诱导凋亡依赖于Nur77的表达及其出核;图4C显示细胞凋亡率结果。 

    图5A显示荧光染色检测Nur77和Bcl-2的共定位;图5B显示荧光染色检测SK07激活了Bax;图5C显示荧光染色检测Bax的激活伴随着细胞色素c的释放;图5D显示荧光染色检测SK07诱导了Bcl-2构象变化。 

    具体实施方式

    以下结合具体实施例,对本发明作进一步说明。应理解,以下实施例仅用于说明本发明而非用于限定本发明的范围。 

    实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如《分子克隆:实验室手册》(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。 

    本发明中使用的试剂: 

    脂质体2000、Trizol LS购自Invitrogen公司;ECL、山羊抗兔、山羊抗鼠辣根过氧化物酶二抗购自Thermo公司;Cy3标记的山羊抗鼠二抗购自Chenicon international;Nur77多抗(sc-5569)、Hsp60(sc-7150)、Bcl-2(sc-509)、Bax(sc-493)、Bax(6A7)(sc-23959)抗体、PARP(sc-556494)及FITC标记的山羊抗兔二抗购自Santa Cruz;细胞色素C(556433)抗体购自BD公司;β-actin抗体购自Sigma公司。Nur77单抗购自R&D;Bcl2-BH3(AP1303a)抗体购自Abgent,PVDF膜购自Millipore。无特别注明外,其它本发明中所用的化学试剂均购自Sigma。 

    实施例1、紫草素衍生物的制备 

    称取20kg辽宁硬紫草(市售),磨碎后过80目筛,收集过筛后获得的紫草粉末,用95%乙醇进行常温渗滤提取,至提取液为近无色为止。 

    合并提取液,减压浓缩至溶液变为紫红色,得到紫褐色油状物粗产物约250g。 

    过滤除去不溶物后,加入浓HCl酸化溶液,至溶液由蓝色变为紫红色,此时有大量沉淀生成,静置过夜。 

    将粗产物用三氯甲烷溶解,并每50毫升加17克200~300目的硅胶,搅拌均匀上柱。洗脱剂分别用石油醚(60~90℃)—丙酮和石油醚(1:1)—丙酮—三氯甲烷(1:1),依次洗脱并分别收集洗脱液。 

    将洗脱液浓缩至沉淀析出,然后重结晶(重结晶方法参考专利号为02114973.9的中国专利),纯化紫草类化合物,产物经MNR、MSUV和元素分析数据确定为乙酰紫草素,其结构式如下:

    乙酰紫草素 

    (SK03) 

    200710046917.5和200710041978.2的中国专利申请的方法,合成衍生物5,8-二乙酰氧基-2-(1’-乙酰氧基-4’-甲基-3’-戊烯基)-1,4-萘醌(SK06)和5,8-二乙酰氧基-6-(1’-乙酰氧基-4’-甲基-3’-戊烯基)-1,4-萘醌(SK07),SK06和SK07的结构式分别如下: 

    2′-二乙酰紫草素            6′-二乙酰紫草素 

    (SK06)                          (SK07) 

    实施例2、紫草素衍生物对于Nur77表达的诱导作用 

    2.1、细胞培养 

    选择肺癌细胞NIH-H460(ATCC,HTB-177)和宫颈癌细胞HeLa(ATCC,CCL-2),用RPM1640培养基(购自Hyclone),在37℃和5%二氧化碳培养箱培养于24孔板组织培养板中,24小时后换液,饥饿16小时后进行加药(不含血清)处理。紫草素衍生物溶解于DMSO(DMSO终浓度<0.1%)中,对照组用同样浓度的DMSO处理,具体处理如下: 

    (1)对照组(DMSO) 

    (2)SK03组 

    (3)SK06组 

    (4)SK07组 

    SK03、SK06、SK07的浓度均为5或10μM,处理时间为12或24小时,以未经任何处理的NIH-H460细胞和HeLa细胞作为对照。为了确证时效及量效关系,用SK07处理NIH-H460细胞,处理浓度为1、5或10μM,处理时间为6、12或24小时,以未经任何处理的NIH-H460细胞作为对照。 

    2.2、Western blotting分析Nur77的表达 

    细胞以改进的RIPA裂解缓冲液(50mM Tris-Hcl,pH7.4;150mM NaCl;5mM EDTA;1%NP-40,0.5%脱氧胆酸钠,0.1%SDS)于冰上裂解30分钟。以相同上样量,8%SDS-PAGE电泳,转膜,以5%脱脂奶粉的TBST(50mM Tris-HCl(pH7.4),150mM NaCl and0.1%Tween20)室温封闭1小时,于室温2小时或4℃过夜孵育一抗,室温孵育二抗一小时,ECL显色,曝光,结果如图1A、1B、1C所示。 

    由图1A的结果可知,在NIH-H460肺癌细胞中,紫草素衍生物SK03能够有效诱导Nur77的表达。以SK035-10μM的浓度处理细胞12-24小时,其诱导的Nur77蛋白的表达量约为对照的3-5倍。以SK07处理NIH-H460细胞具有类似的调控Nur77表达的作用,但SK06对Nur77的表达作用被显著抑制。 

    由图1B的结果可知,在HeLa宫颈癌细胞中,紫草素衍生物SK03能够有效诱导Nur77的表达。以SK035-10μM的浓度处理细胞12-24小时,其诱导的Nur77蛋白的表达量显著提高。以SK07处理HeLa细胞也可导致Nur77表达的显著提高,而SK06对Nur77的诱导作用被抑制。 

    由图1C的结果可知,随着SK07处理浓度的增加及处理时间的延长,Nur77的表达量显著提高,具有良好的时效和量效关系。 

    2.3、紫草素衍生物诱导Nur77出核 

    选择肺癌细胞NIH-H460(ATCC,HTB-177),用RPM1640培养基(购自Hyclone),在37℃和5%二氧化碳培养箱培养于覆有盖玻片的24孔板组织培养板中,24小时后换液和进行加药(不含血清)处理。紫草素衍生物溶解于DMSO(DMSO终浓度<0.1%)中,对照组用同样浓度的DMSO处理,具体处理如下: 

    (1)对照组(DMSO) 

    (2)TPA组 

    (3)SK03组 

    (4)SK06组 

    (5)SK07组 

    (6)用普霉素A(LMB)(10ng/mL)预处理后、加入SK07组。 

    其中,以(1)作为对照组、(2)为阳性对照组。 

    反应板中各孔溶液的总体积均为1ml,SK03、SK06和SK07的浓度均为5μM。

    细胞经处理24小时后,用0.1M磷酸缓冲盐PBS洗涤3遍,用4%多聚甲醛溶液40ul固定,再以含1%Triton的0.1M PBS溶液穿孔5min;接着,用含5%BSA的0.1M PBS溶液、37℃封闭半小时,然后加入兔抗Nur77多克隆抗体(1:200稀释)(Santa Cruz,sc-5569)作为一抗,4℃过夜。 

    取上步过夜处理后的细胞溶液,于室温放置15min,吸掉一抗后,用0.1M的PBS洗涤3遍,每遍5min;加入cy3耦连的羊抗鼠二抗(1:500稀释,购自Chemicon),于37℃放置30min后,吸掉二抗,用0.1M PBS洗涤3遍,每遍5min。 

    DAPI(购自Sigma)染色用于检测细胞核。然后用荧光显微镜(Carl Zeiss)观察内源性Nur77的亚细胞定位(BioRad),结果如图1D所示。 

    根据图1D的结果可知,以紫草素衍生物处理24小时后,Nur77从细胞核中迁移出,并且出核后定位于线粒体上;而对照组中的Nur77仍留在细胞核中;LMB是已知的依赖于CRM1的出核转运通路和抑制剂,用LMB和SK07共同处理细胞后,SK07诱导的Nur77在细胞质中的积累可以显著地被LMB所抑制,说明SK07增强了Nur77的出核。 

    上述结果表明:紫草素衍生物可以诱导Nur77从细胞核向细胞质的迁移且定位在线粒体上。 

    实施例3、紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡 

    3.1紫草素衍生物诱导NIH-H460细胞凋亡 

    选择肺癌细胞NIH-H460(ATCC,HTB-177),用RPM1640培养基(购自Hyclone),在37℃和5%二氧化碳培养箱培养于24孔板组织培养板中,24小时后换液和进行加药(不含血清)处理。紫草素衍生物溶解于DMSO(DMSO终浓度<0.1%)中,对照组用同样浓度的DMSO处理,具体处理如下: 

    (1)对照组(DMSO) 

    (2)SK03组 

    (3)SK06组 

    (4)SK07组 

    反应板中各孔溶液的总体积均为1ml,SK03、SK06和SK07的浓度均为5μM。 

    处理24h后,细胞用0.5%胰酶消化,用0.1M PBS洗涤后,用4%多聚甲醛进行固定,以1μg/ml DAPI进行染色,用荧光显微镜(Carl Zeiss)观察细胞核的形态,结果如图2A所示。随机选5个视野,计算每视野300个细胞的凋亡数,取5个视野细胞凋亡的平均数,计算凋亡的百分比,结果如图2B所示。

    由图2A可见,以紫草素衍生物处理24小时后,细胞明显发生凋亡。凋亡的细胞表现出典型的形态学上的特征,如细胞质浓缩、膜呈泡状,核浓缩以及产生碎片等。由图2B的结果可知,未用紫草素衍生物处理的细胞很少有凋亡现象发生(7%),用SK03处理可引起细胞明显凋亡(22%),SK07的促凋亡作用显著增强(33%),而SK06对凋亡的作用较弱(14%)。由此可以看出,紫草素衍生物癌细胞具有不同程度的促凋亡作用。 

    3.2SK07诱导NIH-H460细胞和HeLa细胞的PARP蛋白降解 

    选择肺癌细胞NIH-H460(ATCC,HTB-177)和宫颈癌细胞HeLa(ATCC,CCL-2),用RPM1640培养基(购自Hyclone),在37℃和5%二氧化碳培养箱培养于24孔板组织培养板中,24小时后,分别用加有5μM SK07的无血清的RPMI1640处理3、6、12、24小时。细胞以改进的RIPA裂解缓冲液(50mM Tris-Hcl,pH7.4;150mM NaCl;5mM EDTA;1%NP-40,0.5%脱氧胆酸钠,0.1%SDS)于冰上裂解30分钟。以相同上样量,8%SDS-PAGE电泳,转膜,以5%脱脂奶粉的TBST(50mM Tris-HCl(pH7.4),150mM NaCl and0.1%Tween20)室温封闭1小时,于室温2小时或4℃过夜孵育一抗anti-PARP(1:1000稀释),室温孵育二抗一小时,ECL显色,曝光,结果如图2C所示。 

    如图2C所示,SK07可以诱导113kD的PARP蛋白降解为89kD的特异性降解产物。随SK07作用时间的延长89kD的降解产物量逐渐增多,特别是HeLa细胞中在作用12小时和24小时后,113kD的PARP蛋白几乎完全消失,全部被降解。 

    实施例4、利用Annexin-V/PI双染检测紫草素衍生物诱导肿瘤细胞的凋亡 

    在无血清RPM1640培养基(购自Hyclone)中用5μM SK07在普霉素A(LMB)存在和缺少的情况下处理NIH-H460肺癌细胞24小时,以不加SK07的细胞作为对照。细胞根据Vybrant Apoptosis Assay Kit#2操作手册染色PI和AnnexinV,用流式细胞仪(BeckmanCoulter EPICS ALTRA)分析。用EXPO32ADC软件(Beckman Coulter EPICS ALTRA)分析,结果如图3A所示。 

    由图3A可以看出,5μM的SK07在缺少LMB的情况下导致37.9%的NIH-H460细胞早期凋亡,而在存在LMB的情况下基本不会诱导NIH-H460细胞发生凋亡。表明SK07处理可以诱导NIH-H460细胞的早期凋亡,而并不引起细胞坏死(图中右下象限表示早期凋亡,右上象限表示坏死);且这种早期凋亡的诱导可被LMB抑制。

    同样地,将小鼠胚胎成纤维细胞MEF(ATCC、SCRC-1046)和Nur77敲除的MEFNur77-/-细胞(Carcinogenesis,vol28,pp1653-1658,2007)用1μM和10μM SK07或10μMSK03处理24小时,用流式细胞仪分析凋亡,结果如图3B所示。 

    由图3B可以看出,Nur77敲除的MEF Nur77-/-细胞,SK07的促凋亡作用被显著抑制。用1μM SK07处理24小时,MEF细胞的凋亡率为14.6%,而同样的处理不能引起MEFNur77-/-细胞的凋亡。高浓度的SK07(10μM)虽然可以引起MEF Nur77-/-细胞23.7%的凋亡率,但明显小于MEF细胞57%的凋亡率。这一结果表明,SK07诱导的细胞凋亡极大程度地依赖于Nur77的表达。当用SK03(10μM)处理细胞时,发现它可以引起MEF细胞54.6%以及MEF Nur77-/-细胞66.8%的坏死率,这说明SK03的作用不依赖于Nur77的表达,并对于细胞具有非特异的毒性。 

    实施例5、紫草素衍生物诱导凋亡依赖于Nur77的表达水平以及Nur77的出核转运 

    为了研究Nur77的易位在紫草素衍生物诱导的细胞凋亡中所起的作用,用Nur77的抗体和DAPI共同染色SK07处理后的NIH-H460细胞(细胞培养同实施例2.3),荧光显微镜观察结果如图4A所示。根据图4A的结果可以看出,胞质Nur77分布的细胞中,细胞核多呈现凋亡的典型形态,而细胞核完好的细胞中Nur77不表达或分布于核中。 

    为了进一步证明Nur77的易位同细胞凋亡诱导之间的关系,将转染GFP-Nur77的NIH-H460细胞用10μM的SK07处理24小时,然后DAPI染色检测凋亡,用荧光显微镜观察,结果如图4B所示。 

    从图4B的结果可以看出,在对照组细胞中,GFP-Nur77定位于细胞核中,细胞核形态正常。而SK07处理后的细胞GFP-Nur77则定位于细胞质中,细胞核凝缩,破碎。 

    如果Nur77的出核转运在SK07诱导的细胞凋亡中起作用,抑制Nur77的出核将可以减少细胞凋亡。因此,转染GFP-Nur77的NIH-H460细胞在LMB存在或是缺乏的情况下,以SK07处理。然后DAPI染色检测细胞凋亡,将显微镜观察的结果绘制柱形图,结果见图4C。 

    从图4C的结果可以看出,在无GFP-Nur77转染的条件下,以SK07处理H460细胞,凋亡率近35%,而对照组为7%。在GFP-Nur77转染的细胞中,SK07处理后,凋亡率达到88%。而当细胞经LMB同时处理,SK07诱导的凋亡率显著降低,未转染细胞为10%,转染细胞为16%。 

    以上的结果说明SK07诱导的细胞凋亡不仅依赖于Nur77的表达水平也依赖于其细胞质定位。

    实施例6、SK07诱导Bcl-2构象变化、激活Bax 

    NIH-H460细胞在用SK07处理24小时后,利用免疫染色对抑凋亡蛋白Nur77、Bcl-2的定位,Bax的激活,细胞色素C的释放和Bcl-2的构象变化进行分析,以下抗体的稀释比例均为1:500。 

    6.1、Nur77和Bcl-2的共定位 

    SK07(5μM)在LMB存在和缺少的情况下作用于细胞24小时后,用Nur77的抗体和Bcl-2的抗体共同染色处理后的细胞。荧光显微镜分析Nur77和Bcl-2的分布,结果如图5A所示。图5A显示了Nur77和Bcl-2的共定位。 

    6.2、SK07激活了Bax 

    细胞用5μM SK07处理24小时后,共染Bax(6A7)的抗体和Hsp60的抗体。荧光显微镜分析结果如图5B所示。根据图5B的结果可知,在对照细胞中,并没有观察到激活的Bax,但是在SK07处理的细胞中,却表现得很明显,Nur77与线粒体特异蛋白Hsp60共同定位。激活Bax细胞的染色通常表现核固缩,表明了SK07诱导的凋亡与Bax的激活有关,SK07激活了Bax,Bax(6A7)和Hsp60的共定位与细胞凋亡相关联。 

    6.3Bax的激活伴随着细胞色素C的释放 

    SK07(5μM)在LMB存在和缺少的情况下作用于细胞24小时,Bax(6A7)的抗体和细胞色素C的抗体及DAPI共染细胞,荧光显微镜分析结果如图5C所示。根据图5C的结果可知,细胞色素C与它的线粒体定位一样,表现出小染色斑点。但是,细胞色素C在用激活的Bax免疫染色处理的细胞中呈弥散分布。这种现象表明SK07诱导了Bax的激活与细胞色素C的释放有关。LMB共同处理细胞,阻止了Nur77的出核和Bcl-2构象变化,几乎完全抑制SK07诱导的Bax激活和细胞色素C的释放。 

    6.4SK07诱导了Bcl-2构象变化 

    SK07(5μM)处理NIH-H460细胞24小时后,以Bcl2(BH3)和BAX(6a7)的抗体及DAPI染色,荧光显微镜分析结果如图5D所示。根据图5D的结果可知,Bcl-2(BH3)的抗体不能染色对照细胞,但可以在SK07处理后的细胞中强染色,且大多和Bax(6A7)的染色相一致。共聚焦分析表明,SK07处理后的大多数细胞这两种蛋白呈共定位。从而说明,SK07诱导的Bcl-2构象变化和Bax的激活以及细胞凋亡密切相关。

    由以上的结果可知,SK03在MEF和MEF Nur77-/-细胞中均诱导了明显的早期凋亡和坏死细胞(图3B),因此说明SK03的生物活性很大程度地依赖于Nur-77-非依赖途径;而SK07的凋亡效应与诱导Nur77表达及出核有关,通过诱导Nur77表达及出核转运,线粒体定位,Bcl-2构象变化和激活Bax来有效的激活Nur77途径,导致细胞色素C从线粒体释放,诱导凋亡;而SK06却没有上述作用。 

    综上所述,本发明的紫草素衍生物通过诱导Nur77表达及从细胞核定位到细胞质,从而诱导肿瘤细胞的凋亡。因此本发明的紫草素衍生物可以用于制备治疗癌症的以孤儿受体Nur77作为作用靶点的药物。另外,孤儿受体Nur77可以作为作用靶点用于筛选紫草素衍生物。

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    紫草 衍生物 应用
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