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大黄酸或大黄酸类化合物在制备治疗以FTO为靶点的疾病的药物中的用途.pdf

  • 上传人:n****g
  • 文档编号:8455780
  • 上传时间:2020-07-06
  • 格式:PDF
  • 页数:13
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN201210197108.5

    申请日:

    20120614

    公开号:

    CN102697762A

    公开日:

    20121003

    当前法律状态:

    有效性:

    失效

    法律详情:

    IPC分类号:

    A61K31/192,A61K31/185,A61P3/04,A61P25/28,A61P3/00

    主分类号:

    A61K31/192,A61K31/185,A61P3/04,A61P25/28,A61P3/00

    申请人:

    中国科学院上海药物研究所

    发明人:

    杨财广,罗成,叶飞,陈报恩,俞璐,蒋华良

    地址:

    201203 上海市浦东新区张江祖冲之路555号

    优先权:

    CN201210197108A

    专利代理机构:

    北京金信立方知识产权代理有限公司

    代理人:

    朱梅;陈国军

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    内容摘要

    本发明涉及如下通式I所示的大黄酸或大黄酸类化合物在制备治疗以FTO为靶点的疾病的药物中的用途,实验结果表明,通式I所示的化合物能够特异性地与FTO结合,通过竞争底物结合位点表现抑制活性。细胞内试验也表明通式I化合物可以明显升高体内信使RNA中N-6位甲基化腺嘌呤(6meA)的水平。

    权利要求书

    1.如下通式I所示大黄酸或大黄酸类化合物在制备治疗以FTO为靶点的疾病的药物中的用途:其中,R~R、R~R中至少有一个为-COOH、-COONa、-COOK、-SOH、-SONa、-SOK;R~R其余位置为以下取代基:-H、-OH、-NH、卤素。 2.根据权利要求1所述的用途,其中,在通式I所示的化合物中,R~R为选自下表中的取代基: 3.根据权利要求2所述的用途,其中,所述通式I化合物为大黄酸或其钠盐或钾盐。

    说明书

    技术领域

    本发明涉及药物学领域,尤其涉及大黄酸或大黄酸类化合物在制备治疗 以FTO为靶点的疾病的药物中的用途。

    背景技术

    肥胖相关的FTO(Fat mass and obesity-associated)基因定位于人类16号染 色体,其蛋白产物在人体内广泛表达。FTO基因变异和肥胖症表现出较大的 关联性,因此该基因又被人们称为“肥胖基因”(Frayling TM,et al.,Science, 2007316(5826):889-94;Gerken T,et al.,Science,2007,318,(5855):469-72)。 FTO和阿尔法-酮戊二酸依赖的核酸氧化去甲基化酶AlkB家族蛋白具有较高 的序列同源性。FTO能催化单链脱氧核糖核酸(DNA)中N-3位甲基化胸腺 嘧啶(3meT)和核糖核酸(RNA)中N-3位甲基化尿嘧啶(3meU)氧化去 甲基化。最近研究显示,在体外实验中,单链DNA和RNA中N-6位甲基化 腺嘌呤(6meA)是FTO的一个主要作用底物(Jia G,et al.,Nat.Chem.Biol., 20117(12):885-7),在体内,含有(6meA)的信使RNA是FTO的作用底物。

    至今人们对FTO的功能与疾病的关系还不清楚。已有研究表明,FTO 会对人类摄食产生直接影响,还可能与阿尔茨海默症、代谢综合征等有关 (Speakman JR,et al.,Obesity 2008 16(8):1961-5;Keller L,et al.,J Alzheimers  Dis.2011 23(3):461-9;Freathy RM,et al.,Diabetes 200857(5):1419)。FTO与 人类健康关系密切,因而FTO的功能与调控也一直是国内外研究的热点。然 而,目前未见有关于FTO抑制剂的报道。FTO抑制剂的发现将对FTO功能 的研究以及针对FTO靶点的新药研发产生重大影响。

    发明内容

    技术问题

    设计并验证针对FTO的小分子化合物抑制剂,其具有抑制FTO去除N-6 位甲基化腺嘌呤(6meA)中的甲基化的生物活性。

    技术方案

    为了加速设计筛选FTO抑制剂,发明人首先运用高通量虚拟筛选(In  silico HTS)技术,即通过分析蛋白质三维结构,借助计算机程序和分析软件, 过滤掉化合物库中大部分不满足要求的化合物,从28万个化合物中筛选得到 了141个候选化合物。

    通过体外FTO生物活性验证实验得到具有抑制活性的小分子化合物。为 了排除化合物由于破坏蛋白质二级结构而表现抑制活性,发明人运用了圆二 色谱(CD)技术。远紫外CD是研究蛋白质在溶液中二级结构的主要手段之一。 阿尔法-螺旋结构在222纳米和208纳米处表现出两个负的特征肩峰谱带,可 以利用这两处的摩尔椭圆度[θ]208或[θ]222来估计蛋白质中阿尔法-螺旋的含 量,判断二级结构是否发生了剧烈变化。

    为了研究活性化合物是否能与FTO蛋白质结合,发明人通过差异扫描荧 光(DSF)实验进行了验证。蛋白质的稳定性与去折叠过程中的吉布斯自由 能变化(△Gu)具有一定的相关性,而且是温度依赖的。大部分蛋白的稳定 性随温度而变化,温度升高时,△Gu降低,在折叠与去折叠的蛋白达到平衡 时,△Gu=0,此时的温度被定义为蛋白质的融解温度(Tm)。如果蛋白质的 去折叠以可逆的双态方式进行,那么平衡态热动力学模型将适用于这一过程。 如果化合物能够与蛋白质结合,化合物结合的自由能变化多数情况下会导致 △Gu增加,相应的Tm值升高。荧光染料Sypro Orange的荧光信号在水环境 中被萃灭,随着温度的升高,蛋白质去折叠暴露出疏水区,Sypro Orange结 合至蛋白质疏水区,发射荧光。荧光值对温度做曲线,蛋白质去折叠的过渡 态位置的温度定义为Tm。研究表明,化合物结合引起的蛋白稳定性提高与 化合物的浓度以及亲和性成正比。

    接着,发明人通过生物分子相互作用分析(BIA)技术评价了化合物与 FTO结合的特异性及强度。BIA是基于表面等离子共振(SPR)这一物理光 学现象的生物传感分析技术。当入射光以临界角入射到两种不同透明介质的 界面时将产生全反射,且反射光强度在各个角度上都应相同,但若在介质表 面镀上一层金属薄膜后,由于入射光可以引起金属中自由电子的共振,从而 导致反射光在一定的角度内大大减弱,其中使反射光完全消失的角度称为共 振角。共振角会随金属薄膜表面通过的液相的折射率的改变而改变,折射率 的变化又和结合在金属表面的大分子质量成正比。BIA就是利用金属薄膜表 面的折射率的改变,引起共振角的变化,来推断金属薄膜表面的变化。实验 时先将一种生物分子固定在传感器芯片表面,将与之相互作用的分子溶于溶 液流过芯片表面。由于不必使用荧光标记和同位素标记,从而保持了生物分 子的天然活性。检测器能跟踪检测溶液中的分子(如化合物)与芯片表面分 子(如蛋白质)的结合、解离整个过程的变化。通过它能观察两种分子结合 的特异性,能知道两种分子的结合有多强。

    为了进一步研究化合物与FTO的作用方式,发明人运用了等温滴定量热 (ITC)技术。ITC技术是近年来发展起来的一种研究生物热力学与动力学的 重要方法,它通过高灵敏度、高自动化的微量量热仪连续、准确地监测和记 录一个变化过程的量热曲线,原位、在线和无损伤地同时提供热力学和动力 学信息。在单次实验中即可提供一整套有关分子相互作用的完整信息。ITC 是表征生物分子相互作用的经典方法之一,被广泛应用于研究小分子化合物 与生物大分子(蛋白质、核酸等)的相互作用。

    为了阐明化合物表现抑制活性的方式,发明人运用了荧光偏振(FP)技术。 FP的基本原理是荧光物质经单一平面的偏振光照射后,吸收光能跃入激发 态,随后回复至基态,并发出单一平面的偏振荧光。偏振荧光的强弱程度与 荧光分子的大小呈正相关,与其受激发时转动的速度呈反相关。用荧光标记 FTO底物DNA,当DNA与蛋白结合后,有效荧光分子变大,偏振荧光增强。 若化合物能够影响DNA与FTO的相互作用,荧光强度会相应发生变化。

    发明人基于FTO晶体结构开展小分子抑制剂的虚拟筛选和作用方式研 究,首次发现了大黄酸或大黄酸类化合物能够抑制FTO活性,该类化合物的 结构如以下通式I所示:

    其中,R2~R3、R6~R7中至少有一个为-COOH、-COONa、-COOK、-SO3H、 -SO3Na、-SO3K;R1~R8其余位置为以下取代基:-H、-OH、-NH2、卤素。

    上述通式I所示的大黄酸或大黄酸类化合物还包括其与碱金属形成的 盐,例如钠盐、钾盐等。

    由于通式I所示的大黄酸或大黄酸类化合物能够抑制FTO活性,其可以 用于制备治疗以FTO为靶点的疾病的药物。

    本发明的大黄酸或大黄酸类化合物可以根据常规的方法制备。例如,通 式I中大黄酸及其钠盐和钾盐可以通过如下方法制备:

    取大黄酚6g,加入150ml醋酸酐和吡啶(1:1体积比)的混合液,室 温过夜,反应物倒入冷水中结晶,过滤,烘干,加到300ml醋酸酐和冰醋酸 (1:1体积比)的混合液中,45℃滴加三氧化铬溶液,65℃搅拌8小时,反 应物倒入水中,结晶,过滤,加入1升25%碳酸钠溶液,氯仿萃取3次, 将碳酸钠溶液煮沸,冷却,加入盐酸酸化,待气体排完后,加热煮沸1小时, 冷却,结晶,抽滤,水洗,冰醋酸重结晶,得2g大黄酸,纯度98%以上。 大黄酸钠盐、钾盐分别用NaOH和KOH调pH至8.0制备。

    本发明的大黄酸或大黄酸类化合物还可以根据常规的方法提取制备。例 如,通式I中大黄酸及其钠盐和钾盐可以通过如下方法获得:

    取大黄粉500g,加入5倍量60%乙醇加热回流2次,每次1小时,合并 提取液,浓缩至约1000ml,加入100ml浓盐酸,50℃水解1小时,冷却,过 滤,在沉淀中加入1000ml 5%NaHCO3溶液,加热溶解,过滤,滤液中加乙 醇至50~90%,过滤,滤液用浓盐酸调pH至3以下,过滤得黄色沉淀,水 洗至中性,冰醋酸重结晶得大黄酸,含量98%以上。大黄酸钠盐、钾盐分别 用NaOH和KOH调pH至8.0制备。

    有益效果

    发明人运用生物化学和生物物理的研究手段,揭示了通式I化合物与 FTO的作用方式,实验结果表明,通式I所示的化合物能够特异性地与FTO 结合,通过竞争底物结合位点表现抑制活性。细胞内试验也表明通式I化合 物可以明显升高体内信使RNA中N-6位甲基化腺嘌呤(6meA)的水平。

    附图说明

    图1为基于结构的化合物高通量虚拟筛选图;

    图2为CD技术证明化合物不引起蛋白质二级结构显著变化图;

    图3为DSF技术证明化合物能够与FTO结合图;

    图4为BIA技术分析化合物与FTO结合的特异性及强度图;

    图5为ITC技术表征化合物与FTO结合的热力学和动力学图;

    图6为FP技术证明化合物能够与核酸底物竞争结合位点图;

    图7为化合物能够使BE(2)-C细胞mRNA中6meA浓度升高图。

    具体实施方式

    下面将参考附图描述本发明示范性的实施方式,以帮助理解本发明。

    实施例

    实验实施例1:基于结构的化合物高通量虚拟筛选。

    虚拟筛选所采用的结构是结合了底物3meT的人源FTO(PDB号: 3LFM),结构下载自Protein Data Bank(http://www.rcsb.org/pdb),得到晶体结 构后去掉分子内部的水分子和缓冲液以及其他离子。发明人筛选了28万个化 合物,购买了114个候选化合物,具体筛选流程如图1所示。

    实验实施例2:生化实验检测化合物的抑制活性。

    pET-28a-FTO原核表达质粒转化至BL21(DE3)-RIL表达菌株,16℃条件 下0.5mM IPTG诱导表达17小时,收集菌体超声破碎,15000rpm离心20分 钟后,取上清液经Ni-NTA、MonoQ和Superdex200纯化后得到FTO蛋白的 纯度大于95%。在100μl的筛药体系中,加入底物6meA-RNA浓度为10μM, FTO蛋白浓度为1μM,加入不同浓度的待测化合物,25℃孵育1小时,100℃ 10分钟灭活蛋白。然后用P1酶和碱性磷酸酶酶切反应后的RNA,HPLC分 析腺嘌呤(A)与N-6位甲基化腺嘌呤(6meA)的比例。将酶活性抑制率(%) 达到50%时抑制剂的浓度定为IC50值。抑制率(%)可以根据下式计算: 抑制率(%)={[实验组6meA/实验组(A+6meA)]/[对照组6meA/对照组 (A+6meA)]}×100%

    在114个候选化合物中,经过生物学活性检测显示,大黄酸或大黄酸类 化合物具有较好的对FTO的抑制活性。为了进一步测试大黄酸或大黄酸类化 合物对FTO的抑制活性,本申请测试了一系列如下通式I所示的化合物:

    其中,R2~R3、R6~R7中至少有一个为-COOH、-COONa、-COOK、-SO3H、 -SO3Na、-SO3K;R1~R8其余位置为以下取代基:-H、-OH、-NH2、卤素。

    通式I所示结构的具体化合物如表1所示。这类化合物对FTO表现出不 同程度的抑制活性。表2给出了表1中部分化合物对FTO的抑制活性测试结 果,其中,化合物1对FTO的抑制活性最好,IC50值为21μM。实验中所用 化合物均为钠盐形式。

    表1:通式I结构的具体化合物

    表2:化合物对FTO抑制活性

    a为三组平行数据,其SD<10%

    实验实施例3:FTO为2OG/Fe(II)依赖的氧化酶,目前针对2OG/Fe(II) 依赖的氧化酶主要为2OG的类似物或者Fe(II)的螯合剂。针对FTO的小分子 抑制剂尚未见报道。为了排除化合物通过络合Fe(II)才表现出对FTO的抑制 活性,本论文首先设计了如下实验。在保持FTO活性不受影响的条件下,在 对照组中加入较化合物过量的Fe(II),相应地,在平行实验组中加入100μM 化合物1。结果表明,化合物1的抑制活性不依赖于Fe(II)浓度的变化而变化, 结果示于表3。

    表3:不同Fe(II)浓度下化合物1对FTO的抑制活性

    a为三组平行数据,其SD<10%

    实验实施例4:CD技术证明化合物不引起蛋白质二级结构显著变化。

    将化合物和蛋白质按照摩尔比50:1和100:1混匀,孵育20分钟后,在 200-250nm进行远紫外光谱数据收集,实验设三组重复。谱图数据分析表明, 化合物未引起蛋白质二级结构的显著变化,如图2所示。

    实验实施例5:DSF技术证明化合物能够与FTO结合。

    将化合物1与FTO按照摩尔比10:1、20:1、40:1混匀后,加入荧光试剂 SYPRO orange,在AB 7500Fast RT-PCR仪运行程序:25℃~95℃,升温速 率为1%,每隔20秒读一次荧光。荧光值对温度做曲线,经Boltzmann拟合, 蛋白质去折叠的过渡态位置的温度定义为Tm值,实验设三组重复。结果表 明,随着化合物1浓度升高,△Tm值增大。如图3所示。

    实验实施例6:BIA技术分析化合物与FTO结合的特异性及强度。

    将纯化得到的纯度大于95%的FTO蛋白透析至HBS-EP缓冲液(0.01M HEPES pH 7.4,150mM NaCl,3mM EDTA,0.005%v/v Surfactant P20),蛋 白浓度为5mg/ml。化合物1和5分别用透析蛋白后的缓冲液溶解为一系列 浓度梯度。蛋白用乙酸钠缓冲液(pH 4.2)稀释至0.1mg/ml后固定于CM5 芯片。将准备好的样品放入BIAcore 3000收集数据,结果表明,化合物1、4、 5的Kd分别为49.4μM、11.5μM和8.3μM,如图4所示。

    实验实施例7:ITC技术表征化合物与FTO结合的热力学和动力学。

    将纯化得到的纯度大于95%的FTO蛋白透析至实验用缓冲液(50mM Tris-HCl,pH 8.0,500mM NaCl,10mM β-Me),浓度为65μM,体积为2mL。 化合物1溶解在透析蛋白后的缓冲液中,浓度为650μM,体积为500μL。 将化合物滴入蛋白样品,每隔3min滴一次,共25次。对照采用同样的方法, 将化合物滴入缓冲液。结果表明,化合物与FTO的结合为吸热反应,Kd为 11μΜ,如图5所示。

    实验实施例8:FP技术证明化合物能够与底物竞争结合位点。

    荧光标记FTO底物DNA(5′-ATTGTCA(6meA)CAGCAGA-3′-FAM),当 荧光标记的DNA与蛋白结合后,有效分子变大,偏振荧光增强。实验结果 显示,随着化合物浓度增加,偏振荧光强度逐渐减弱,实验设三组重复,如 图8所示。化合物很可能与DNA竞争结合位点,导致DNA与FTO解离, 荧光值逐渐减小。化合物1相对其它化合物具有较强的竞争能力,这与抑制 活性结果相一致。如图6所示。

    实验实施例9:化合物1在神经母细胞瘤细胞BE(2)-C上对FTO的抑制 作用。

    研究表明,FTO siRNA处理的HeLa细胞RNA中6meA浓度显著升高, FTO过表达则显著降低6meA浓度。这里分别用150μM和300μM化合物 1处理BE(2)-C细胞,HPLC检测RNA中6meA/U、6meA/C、6meA/G的比 率,细胞内6meA浓度显著升高,如图7。

    结果表明,化合物1可以通过抑制FTO活性提高细胞内6meA浓度。

    关 键  词:
    大黄 化合物 制备 治疗 FTO 疾病 药物 中的 用途
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