序列表
本发明包括纸质和计算机可读的序列表，在此以提述方式并入其教导 和内容。
发明背景
发明领域
本发明一方面涉及回收由2型猪圆环病毒(PCV2)之可读框2(ORF2)表 达的蛋白质。更具体地说，该蛋白质为由转染病毒表达的重组蛋白质，该 转染病毒含有2型猪圆环病毒可读框2的重组编码序列。更具体地说，容 许该转染病毒感染将长培养基中的细胞，并在上清液中，而非从细胞内部 回收由可读框2表达的蛋白质。再更具体地说，该方法涉及下列步骤：自2 型猪圆环病毒扩增可读框2基因，将该经扩增的部分克隆到第一载体内， 从该第一载体中切下可读框2，并将其克隆到转移载体内，将转移载体和病 毒载体共同转染到生长培养基中的细胞内，使细胞被病毒载体感染并藉此 表达可读框2，然后在上清液中回收表达的由可读框2编码的重组蛋白质。
另一方面，本发明涉及可有效引起对抗PCV2之免疫反应的免疫组合 物，以及产生这些免疫组合物的方法。更具体地说，本发明涉及一种免疫 学组合物，它可有效提供免疫反应，该免疫反应保护接受该组合物的动物， 并减少与PCV2感染有关的临床症状或降低其严重性。更具体地说，本发明 涉及一种基于蛋白质的免疫学组合物，其赋予对抗PCV2感染的有效保护。 再更具体地说，本发明涉及一种包含PCV2的ORF2的免疫学组合物，其中 PCV2-ORF2的施用导致对抗PCV2感染的保护。最具体的是，本发明涉及 可有效地对接受该免疫组合物的猪赋予有效免疫力的免疫组合物，且其中 该组合物包含由PCV2的ORF2表达的蛋白质。
在另一方面，本发明亦提供组合疫苗或多价疫苗。更具体地说，本发 明提供可有效引起对抗PCV2及至少一种其它猪致病生物所致感染的免疫 反应的免疫组合物。
现有技术描述
2型猪圆环病毒(PCV2)是小型(直径17-22纳米)、二十面体无包膜的 DNA病毒，其含有单链的环状基因组。PCV2与1型猪圆环病毒(PCV1)共 享大约80％的序列同一性。然而，与通常无毒力的PCV1相反，被PCV2 感染的猪显示出一种通常称为小猪断奶后多系统消耗综合征(PMWS)的症 状。PMWS的临床特征在于消瘦、皮肤苍白、生长不振(unthriftiness)、呼吸 窘迫、腹泻、黄疸(icterus)和黄疸(jaundice)。在一些受累的猪中，出现所有 症状的组合，而在其它的猪则仅有这些症状中一者或二者。在尸体剖检中， 微观和宏观损害亦出现在多种组织和器官上，淋巴器官是最常见的损害位 置。已观测到PCV2核酸或抗原的量与微观淋巴损害严重性之间的强相关 性。感染有PCV2的猪的死亡率可达80％。PCV2还与包括下列各项的若干 其它感染相关：伪狂犬病、猪生殖及呼吸综合征(PRRS)、格拉塞氏病 (Glasser′s disease)、链球菌性脑膜炎、沙门氏菌病、断乳后大肠杆菌病、饮 食性肝功能障碍(dietetic hepatosis)及化脓性支气管肺炎。
PCV2的可读框2(ORF2)蛋白质，当在SDS-PAGE凝胶上电泳时，具有 大约30kDa的分子量，从前已经利用它作为PCV2疫苗的抗原性组分。获 得用于这类疫苗中的ORF2的典型方法通常由下列步骤组成：扩增编码 ORF2的PCV2 DNA，以ORF2 DNA转染病毒载体，用含有ORF2 DNA的 病毒载体感染细胞，容许病毒在细胞内表达ORF2蛋白质，并通过细胞溶解， 从细胞中提取ORF2蛋白质。这些程序通常在以病毒载体感染细胞之后，需 花费多达4天。然而，这些程序的缺点在于提取程序昂贵且耗时。此外， 从细胞中回收的ORF2量并不是很高；结果，需要以大量的病毒载体感染大 量的细胞，以便获得足量的重组表达的蛋白质供用于疫苗等。
近来PCV2免疫的手段包括基于DNA的疫苗，如在美国专利第 6,703,023号中描述的那些。然而，这类疫苗不能有效地赋予对抗PCV2感 染及其相关临床症状的保护性免疫力。
猪生殖与呼吸综合征(PRRS)是由一种病毒引起的，到1991年才首先分 离并将其分类为动脉炎病毒(arterivirus)。该疾病症状首先在1980年代中期 在美国被发现，并被称为＂神秘猪病＂。它也曾被称为蓝耳病(blue ear disease)。 最近提议的名称为猪动脉炎病毒。PRRS的病毒对巨噬细胞，特别是在肺中 找到的那些巨噬细胞有特殊的亲和力。巨噬细胞是身体防御系统的一部分。 出现在肺中的那些巨噬细胞又叫做肺泡巨噬细胞(alveolar macrophages)。它 们摄取并消除入侵的细菌和病毒，但对PRRS病毒则不然。这种病毒反而在 那些巨噬细胞内繁殖，产生更多的病毒，并杀死巨噬细胞。一旦这种病毒 进入猪群，便往往无限期地维持存在并保持活性。高达40％的巨噬细胞被 破坏，导致身体防御机制丧失了一个重要部分，使得细菌和其它病毒得以 增殖并进行破坏。最常见的例子是当生长/肥育猪被PRRS病毒感染时，地 方性肺炎的严重性有显著的增加。首次使整个生育畜群(breeding stock)(特别 是在大的畜群中)感染可能花费一年时间，而且虽然该病毒在畜群中似乎散 播很快，但可能在4-5个月时才会有至少90％的母猪变成血清-阳性。有一 些母猪仍保持无经历(naive)。此外，母猪群在感染1-2年之后包含少于20％ 的血清学阳性动物也是屡见不鲜的。然而，这不一定意味着它们不再具有 免疫力，也不意味着它们已经不再传递免疫力给它们的后代。与正在生长 的猪(其排泄病毒持续1-2个月)相比较，成年动物排出病毒的时间短很多(14 天)。临床情况可随着猪群不同而发生巨大的改变。作为指标，每三个头一 次接触PRRS的猪群，就有一个不显示可辨认的疾病，第二个将显示轻微的 疾病，而第三个则有中等到严重的疾病。其原因尚未清楚了解。然而，猪 群的健康状况越好，疾病的影响就越轻。可能是病毒随着增殖而发生突变， 产生一些具有高毒力的株系和一些无毒力的株系。PRRS感染所有类型的猪 群，包括良好或普通健康状况的，以及室内和室外的猪群，不论大小。
猪肺炎枝原体(Mycoplasma hyopneumoniae)(Mhyo)是一被分类在枝原 体科(mycoplasmataceae)中的小型细菌(400-1200nm)。M hyo与地方性肺炎 (Enzootic Pneumonia)有关，这是一种在生长和肥育猪中常见的猪呼吸道疾 病。M hyo攻击气管和肺上皮细胞的纤毛，引起纤毛停止振动(纤毛静止)， 且最终引起肺区域的塌陷。依据疾病的程度，被感染猪的每日活增重可能 减少多达17％。地方性肺炎在猪群中是广泛流传的，且几乎出现在每个猪 群中。Mhyo被认为是帮助PRRSV和其它呼吸道病原体进入肺内的主要病 原体。已经确定了三种不同株系——232、J和7448的基因组序列(Minion 等人，J.Bacteriol.186：7123-33，2004；Vasconcelos等人，J.Bacteriol.187： 5568-77，2005)。
猪增殖性肠炎(procine proliferative enteritis)是生长-肥育和年轻种猪常 见的腹泻性疾病，其特征在于回肠和结肠的增生和炎症。其通常是轻微且 自限的，但有时却引起持续腹泻、严重的坏死性肠炎或出血性肠炎，死亡 率很高。病因是一种新近被分类的胞内细菌——细胞内劳索尼亚氏菌 (Lawsonia intracellularis)。该生物仅在细胞培养中培养，而在无细胞培养基 中繁殖它的尝试都没有成功。通过将细胞内劳索尼亚氏菌的纯培养物接种 在以传统方式饲养的猪内；产生该疾病的典型损害，并再度从损害中分离 出了细胞内劳索尼亚氏菌，从而满足了科赫法则。这种疾病的更常见的、 非出血形式经常侵袭18-至36-公斤的猪，其特征为突然发作的腹泻。粪便 是水状至糊状的，淡褐色或稍带血丝的。在大约2天后，猪可能排出已经 在回肠中形成的黄色纤维坏死性(fibrinonecrotic)成形物(casts)。大多数受累 的猪会自然恢复，但相当多发展成慢性坏死性肠炎，伴有进行性消瘦。出 血形式的特征为皮肤苍白、虚弱并排出血便或黑色、焦油状粪便。怀孕的 母猪可能会流产。损害可能出现在小肠下半段、盲肠或结肠中的任何地方， 但最常见和明显的是在回肠。小肠壁变厚，且肠系膜可能水肿。肠系膜淋 巴结变大。小肠黏膜呈现变厚且多皱纹，可能被淡褐色或黄色的纤维坏死 性膜覆盖，而有时有淤斑出血。黄色的坏死性成形物可在回肠中找到，或 通过结肠排出。在慢性病例中的弥漫性、完全的黏膜坏死，导致小肠变硬， 很像园艺用的软管(garden hose)。增殖性黏膜损害经常发生在结肠中，但仅 在尸体剖检时小心检查才能发现。在大量出血的类型中，在结肠中有红或 黑色、焦油状的粪便，且在回肠中有凝固的血液。
牛病毒性腹泻病毒(BVD)和边境病(Border’s Disease)是两种病毒，它们 与猪瘟(猪霍乱)的病毒同属瘟病病毒(pestivirus)类群，但它们主要分别感染 牛和绵羊。它们可进入猪生育畜群中，并引起生殖方面的问题。该疾病并 非母猪不孕的常见原因，且从诊断的观点来看，在诸多可能原因中排名也 是靠后的。
钩端螺旋体病是一种动物(包括人类)的接触传染疾病，由各种免疫学上 不同的钩端螺旋体血清型引起，这些血清型中的大多数被视为问号钩端螺 旋体(Leptospira interrogans)的亚群。在猪中有五种重要的血清型和群：波摩 那钩端螺旋体(pomona)、澳大利亚钩端螺旋体(australis)、塔拉索夫钩端螺 旋体(tarassovi)、犬钩端螺旋体(canicola)、出血黄疸钩端螺旋体 (icterohaemorrhagicae)和流感伤寒钩端螺旋体(grippotyphosa)。感染可能是 无症状的，或引起各种征象，包括食欲不振、发热、倦怠、黄疸、流产、 死产和其它不明确的生殖问题，以及死亡。在急性感染之后，钩端螺旋体 经常局限于肾脏或生殖器官，由局灶性间质性肾炎的零星灰色小病灶组成， 并从尿中排出，有时大量排出持续数月或数年。因为钩端螺旋体长时间存 活于水表面，该疾病经常是水媒传播的。在美国，该疾病主要起因于哈德 焦钩端螺旋体(Leptospira hardjo)、波摩那钩端螺旋体和流感伤寒钩端螺旋体 等血清型。诊断可能比较困难，因为抗体效价可能是暂时存在的，持续时 间不足一个月。此外，钩端螺旋体亦可在健康的动物中发现。澳大利亚钩 端螺旋体布拉提斯拉瓦(Bratislava)血清型最常与生殖问题有关。慢性感染的 猪群出现流产，死产和小猪虚弱。
布鲁氏菌病是由布鲁氏菌(Brucella)属的细菌引起，其特征在于流产、 胎盘滞留、不孕、公猪的睾丸炎，和母猪严重的子宫炎。在小猪，该疾病 之特征为后躯麻痹(posterior paralysis)和跛足(lameness)。该疾病在猪中几乎 完全是由猪布鲁氏菌(Brucella suis)生物变型(biovars)1、2和3引起的。许 多其它的哺乳动物可携带猪布鲁氏菌并将其传播给猪。在未接种疫苗的猪 群中感染迅速地传播并可引起许多流产。传染主要是通过接触其它的猪而 发生，虽然性传播是有可能的。血清学诊断可能较困难，因为有一种相对 较常见的生物——小肠结肠型耶尔森氏菌(Yersinia enterocolitica)O:9与布 鲁氏菌有共同的抗原，且经常引起假阳性的结果。死后损害经常包括子宫 炎和睾丸炎，并可包括脓肿，有时在肝脏还有坏死病灶。
梭菌(Clostridium)是普遍存在的革兰氏阳性细菌，属于梭菌科 (clostridiaceae)，通常在土壤中找到，但也天然存在于大多数动物的肠道中。 猪中的艰难梭菌(C.difficile)感染的特征是严重的结肠系膜水肿、腹泻和其 它组织的水肿，如水胸。猪的梭菌性肠炎是由产气荚膜梭菌(C.perffingens) 引起，其特征是慢性肠炎，伴随有腹泻、体重减轻和发热。被产气荚膜梭 菌A、B和C型感染，引起严重的肠炎，痢疾、毒血症，而在幼牛中有高 死亡率。B和C型两者皆产生高度致坏死性且致命的β毒素，它是造成严 重肠损害的主因。该毒素对蛋白水解酶敏感，而病情与小肠中蛋白水解被 抑制有关。已经有人提出，含有胰蛋白酶抑制剂的母猪初乳是年幼小猪易 感的因素。该疾病可能引起小于1周龄小猪的突然死亡，最常见的是在出 生3天内。在较大的小猪中，梭菌性肠炎引起小肠变厚，使食物和营养不 易吸收。小猪通常因感染和缺乏营养的结合而死亡。死亡可能发生在数小 时内，但较不严重的病例可存活数天，并可能在数天内恢复。出血性肠炎 伴随黏膜溃疡是所有种类中的主要损害。在肉眼观察下，受侵袭的肠道部 分为深蓝-紫色，乍看之下似乎是与肠系膜扭转相关的梗塞形成。可检查肠 内容物抹片中是否有大量革兰氏-阳性杆状细菌，并制备滤液，检测毒素， 然后通过与特异性抗血清的中和作用进行鉴定。
已经怀疑但尚未证实诺氏梭菌(Clostridium novyi)是喂食高水平谷类食 物的牛和猪突然死亡的原因，这些牛和猪中检测不到原先存在的肝脏损害。 致命且致坏死性毒素(主要是α毒素)伤害肝实质，藉此容许细菌繁殖并产生 致命量的毒素。死亡通常突然发生，没有确定的征象。受累的动物往往落 在兽群后面，采俯卧姿，并在数小时内死亡。大部分的病例发生在夏季和 早秋，此时肝吸虫感染正值高峰期。该疾病在1至4岁大的绵羊中最为盛 行，且仅限于感染肝吸虫的动物。可能不易与急性片形吸虫病区别，但动 物的极急性(peractute)死亡，在尸体剖检时显示典型的损害，应疑为传染性 坏死性肝炎。最具特色的损害是在肝脏中灰黄色的坏死病灶，它们经常依 循着幼吸虫的迁移轨迹出现。其它常见的现象是心包囊变大，充满淡黄色 的液体，并在腹膜和胸腔中有过量的液体。皮下组织中微血管通常有广泛 的破裂，导致邻近皮肤变成黑色(因此俗称为“黑病”)。
败毒梭菌(Clostridium septicum)在全世界的土壤以及动物(包括人类)的 肠内容物中均有发现。感染通常是通过含有失活组织、土壤或一些其它组 织致弱因素(tissue-debilitant)的伤口的污染而发生的。由意外、去势、截尾、 不卫生地接种疫苗和分娩引起的伤口都可能被感染。全身性，如食欲不振、 中毒和高热，以及局部损害，在致易感性伤害(predisposing injury)之后数小 时至数天内出现。局部损害是柔软的肿胀，压下形成凹窝，而且迅速地蔓 延，这是因为形成的大量渗出液浸润受累区的皮下和肌肉内的结缔组织。 气体的积累较为少见。与撕裂相关的恶性水肿的特征为明显的水肿，严重 的毒血症，并在24-48小时内死亡。
破伤风毒血症是由坏死组织中的破伤风梭菌(Clostridium tetani)产生的 特殊神经毒素引起的。几乎所有的哺乳动物，包括猪，均易受该疾病感染。 虽然破伤风分布在全世界，但有些地区，如美国的北落矶山脉，在土壤中 很少发现该生物，在那里破伤风几乎不为人知。通常，在各大陆较温暖的 地区，破伤风梭菌在土壤中的出现率以及人类感染破伤风的发病率都较高。 破伤风梭菌是一种厌氧菌，有终端球状的芽孢，在土壤和肠道中都有发现。 在大多数情况下，其通过伤口，特别是深的穿刺伤被导入组织内，伤口为 其提供了合适的厌氧环境。
沙门氏菌属的某些种(Salmonella spp)感染可能在所有年龄的动物中导 致腹泻，特别是受到应激、密集饲养或接触严重污染之食物或水源供应的 那些动物。沙门氏菌病是由沙门氏菌属(salmonellae)的许多物种引起的，其 临床特征为下列主要症状中的一或多种：败血症、急性肠炎和慢性肠炎。 发生率随着家畜生产的密集程度而增加。虽然各种类型的沙门氏菌均可能 引起猪的感染，在猪中发现的典型沙门氏菌是猪霍乱沙门氏菌(S. choleraesuis)和鼠伤寒沙门氏菌(S.typhimurium)。大多数沙门氏菌所致的临 床特征并非截然不同，而沙门氏菌属不同物种在它们的流行病学上有分歧 的倾向。质粒谱(plasmid profile)和药物-抗药性模式在流行病学研究中有时 是有用的标记。败血性沙门氏菌病通常与猪霍乱沙门氏菌有关。被感染的 小猪不愿移动、食欲不振、高热40.5℃-41.6℃，可能还有浅咳。亦可能发 现小猪死亡，且四肢发绀。猪霍乱沙门氏菌是能同时引起肺炎和腹泻的少 数疾病之一，且被感染小猪的死亡率通常很高。小肠结肠炎通常与更常见 的鼠伤寒沙门氏菌有关。感染的特征是黄色或水状腹泻，随着感染的进行， 可能含有血或黏液。死亡率低，且常与腹泻所致的脱水和钾缺乏有关。被 感染动物的粪便可能污染食物和饮水、来自屠宰场的新鲜或加工肉类、用 来当作肥料和饲料的植物和动物产品、牧场和牧地，以及许多惰性材料。 虽然很少在饲料中发现猪霍乱沙门氏菌。它亦可能直接通过与被感染动物 接触而传递。沙门氏菌可在潮湿、温暖的地方存活数个月，如在肥育猪棚 或在水井中。啮齿动物和野鸟也是传染来源。感染的盛行程度在不同物种 和国家之间有所不同，而且高于临床疾病的发生率，通常由于应激性状况， 如突然缺乏食物、运输、干旱、拥挤、分娩，以及某些药物的施用而造成。
大肠杆菌(Escherichia coli)是肠杆菌科(enterobacteriaceae)的细菌，是天 然出现在所有哺乳动物小肠中的细菌的主要类型之一。虽然大肠杆菌通常 是无害的，但有些大肠杆菌株系可产生一些外毒素和内毒素，引起感染和 疾病。有一些株系主动地产生热不稳定(LT)和热稳定(ST)的外毒素，并这些 毒素是引起腹泻的原因。类志贺毒素第II型变种(SLT-IIe)、Stx2e和志贺样 毒素(verotoxin)水肿病作用于小动脉壁，结果导致水肿。内毒素，如脂质A， 在乳腺炎和尿道感染中扮演某种角色。大肠杆菌感染的特征在于一些不同 的症状，视所涉及的具体株系而定，包括腹泻、眼窝凹陷、生长不振 (unthriftiness)、可见的体重丧失、生长受阻、抑郁、肠水肿、乳腺炎、膀胱 炎、肾盂肾炎和死亡。可根据细胞壁(O抗原)和细毛(fimbriae)(F抗原)将大 肠杆菌分类和编码。例如，腹泻通常与大肠杆菌Abbotstown：O147、F4、 F5有关，而肠水肿则与F18细毛有关。正确地确认编码，对于选择正确的 疫苗是非常重要的。大肠杆菌感染危及猪的免疫系统，而死亡通常是继发 感染和疾病的结果。
猪痘是引起皮肤损害、丘疹、脓疱和痂的疾病。
血虫体病(eperythrozoonosis)是立克次氏体(血营养型(haemotrophic))疾 病，由猪血虫体(Eperythrozoon suis)引起，猪血虫体是一种细胞外的细菌生 物，其附贴在猪红细胞膜上，导致红细胞变形和损伤。该疾病之特征为贫 血和黄疸(黏膜、巩膜和内耳变黄色)。它可能导致不优选的怀孕率、其它不 明确的生殖问题，甚至死亡。
猪瘟也称为经典型猪瘟(Classical Swine Fever，CSF)或非洲猪瘟(ASF)， 是由一种黄病毒科(Flaviviridae)病毒引起的疾病，该病毒是一种有包膜的 RNA病毒；或者，在非洲猪瘟的情况下，是由与痘病毒有亲缘关系的有被 膜的DNA病毒引起的。在临床上，CSF和ASF是无法区分的。最先的症 状是降低活力和困乏，有一些食欲不振，且猪可能呈现寒颤。在数天内， 猪出现明显的发热(41-42℃)，有时伴随有皮肤发红。接下来，猪出现结膜 炎和便秘，导致淡黄色腹泻。在猪群中，猪表现出寒冷而经常挤在一起。 少数的猪在死亡之前可能抽搐。猪只开始死亡时皮肤有蔓延的紫斑，且死 亡经常出现在感染后10-20天内。存活的猪常发生严重的生长延迟和弓背。 在已确立的猪群中，小猪在怀孕期被母亲传染，结果导致流产、干尸化、 畸形、死产和出产小猪虚弱。由感染CSF母猪生下的小猪可能仍然是健康 的，但在其一生中持续散布疾病。
肺炎性巴斯德氏菌症(Pneumonic pasteurellosis)和链球菌病 (Streptococci)，是由多杀巴斯德氏菌(Pasteurella multocidia)和各种链球菌 引起的，最具代表性的是猪链球菌(S.suis)。被病原感染通常代表断奶后呼 吸道综合征的最终阶段。临床症状呈现三种类型，急性类型最常与多杀巴 斯德氏菌血清型B有关，动物出现呼吸困难、用力呼吸、心跳加剧 (thumping)、高热(42.2℃)、虚脱而最后死亡。在一些病例中，腹部变成 紫色。第二种类型为亚急性类型，其特征在于胸膜炎、咳嗽和呼吸困难。 猪只可能大量丧失体重，并可能生长极差或没有生长，给猪流量(flow)造 成严重影响。慢性类型出现偶发的咳嗽、心跳加剧和少量或没有发热。该 类型通常影响10-16周龄的猪。
链球菌性脑膜炎引起脑膜——即覆盖脑的膜——的炎症反应。在吮乳 小猪中，通常是由猪链球菌、副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis)，或有时 为诸如大肠杆菌之类的杆菌(bacteria)，以及其它的链球菌引起。猪链球菌有 许多血清型。在大多数的国家中，猪链球菌第1型在吮乳小猪中是主要的 一种，但这在其它国家中则可能不是事实。例如，在丹麦是猪链球菌第7 型。猪链球菌亦引起关节问题，特别是第1和14型。猪链球菌可在扁桃腺 保留长时间，并可从母猪或从其它小猪传播给吮乳小猪。母猪在初乳中亦 提供不同水平的免疫力。在吮乳小猪中，链球菌性脑膜炎散发于小猪个体 中。当该生物头一次进入猪群中时，或在其继发于PRRS感染时，在吮乳小 猪中链球菌性脑膜炎可能更加恶劣。
伪狂犬病(Pseudorabies)，亦称为猪狂犬病病毒、猪疱疹病毒，其中 该病原为有被膜的疱疹DNA病毒。在无经历(naive)猪群中，新生的猪出现 严重的中枢神经症状，从阵发痉挛(fitting)到严重的协调问题。后躯麻痹可 能导致小猪的坐姿像狗。此外，死亡率高。在断奶的猪中，中枢神经症状 可能有所减少，但可能伴随有呼吸道征象的增加。呼吸道疾病时常与继发 感染关联。断奶的猪可能发生消耗、生长状况不佳，且经常发育受阻。在 生长中的猪中，中枢神经症状进一步减少，而呼吸道症状则增加。呼吸道 疾病的程度视继发感染的出现和严重性而定。在成年猪中，主要是生殖系 统症状。母猪可能流产，而被感染动物在怀孕末期可能产下死胎或虚弱的 小猪。在已确立的猪群中，可能几乎没有临床症状。
猪流感病毒引起猪流感，并属于甲型流感病毒群。在无经历(naive)兽群 中，临床症状可能爆炸性地出现，全部或许多动物同时生病。动物可能出 现不活泼、抑郁、挤成一团/蜂拥和食欲不振。动物常以口呼吸，且呼吸费 力。在运动时可能接着发生咳嗽。其它的临床症状包括流鼻涕和眼睛肿胀， 直肠温度在40.5-41.5℃之间。在生育畜群中的高体温可导致流产、不孕、 产下小而弱的幼兽，并增加死产。在已确立的兽群中，出现每年重复感染。
结肠炎螺旋体是由结肠菌毛样短螺旋体(Brachyspira pilosicoli)细菌引 起。该感染通常影响10-20周龄的生长/肥育猪。其特征在于对生长猪为非 致命的消耗性腹泻，结果增加了肥育所需的天数。腹泻亦导致饲料效率的 降低，并产生水状腹泻或松散的粪便。大约一半的猪可能显示出暂时或持 续的水状或黏液样绿至浅棕色的腹泻，不含血。临床症状较常出现在混合 和改变饲料之后10-14天。
猪痢疾(swine dysentery)是由细菌猪痢疾短螺旋体(Brachyspira hyodysentheriae)引起。目前已知有12种血清型。在已确立的猪群中，临床 症状包括腹泻、在一些猪中出现迅速掉膘(loss of condition)、外观多毛、脱 水、腹痛，并在其它猪显现任何症状之前有一两只猪死亡。在无经历(naive) 猪群中关键性的爆发可能影响从吮乳小猪到成年母猪的所有年龄群。
传染性胃肠炎是由一种冠状病毒引起的肠道疾病。这种冠状病毒与猪 呼吸道冠状病毒、流行性腹泻病毒和凝血性脑脊髓炎病毒属于相同的科。 一开始的临床症状是水状腹泻、呕吐和食欲不振。小于21天的小猪通常会 死亡，断奶猪变得生长不振，而生长猪、肥育猪和成猪受到的影响通常轻 微，若提供适当的水将会存活。
细小病毒病(parvovirus)是特征为猪生殖系统问题的疾病。病原是小型 DAN无-包膜病毒。胎儿是唯一受影响的群体，而对胎儿的影响将视遭感染 时的年龄而定。在10-30天大时，感染导致胎儿的死亡和重吸收。在30-70 天之间，感染导致死亡和木乃伊化。而从70天到足月，感染导致生下虚弱 的小猪和木乃伊化。该疾病能够越过胎盘，然后沿着子宫移往每个胎儿。 在母猪中的临床症状为死产、木乃伊化的小猪、死胎、不孕，并产生明显 减少的活产后代数目。流产并非细小病毒感染的特征。
放线杆菌性大叶性肺炎，亦称为APP和嗜血性大叶性肺炎，是由细菌 大叶性肺炎放线杆菌(Actinobacillus pleuopneumonia)所引起的。目前已描 述了15种血清型病毒(serovirus)，且临床症状之严重性在不同的血清型病毒 之间及其它因素的存在下有所不同。认为血清型病毒1、5、9、10和11是 较具毒力的。此外，血清型病毒1、9和11；2、6和8；以及4和7可能有 交叉反应。所有年龄的猪均易感。临床症状为突然发病，结果许多动物躺 倒，并出现41.5℃的直肠高温。动物通常食欲不振且不喝水，它们肢端发 绀且摸起来冰冷。发绀可能扩散至全身，并在死前发生严重的呼吸困难， 常用口呼吸。可能在口部和鼻孔看到带血的泡沫，通常死亡发生在24-48 小时内。急性临床症状包括群体中高比例的动物不活泼，躺倒、发生40.5-51 ℃的直肠高温、食欲不振、严重的呼吸窘迫、咳嗽、用口呼吸、发绀、呕 吐和流产。亚急性临床症状包括在猪群中有间歇的咳嗽、普通的食欲不振， 且生长减退。变体(Cyrovar)第3型出现关节炎、心内膜炎和脓肿。在受到慢 性影响的兽群中，每日增重可能不受影响，但可能听到间歇的咳嗽。
格拉塞氏病(Glassers disease)是由副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis)(Hps)引起的，其具有至少15种不同的类型。在世界各地均发现它， 甚至在极为健康的兽群中亦出现该生物。若兽群是使用SPF或MEW技术 建立的且不含Hps，则当它们首次被污染时可能造成极大的破坏，产生类似 炭疽的病情，在母猪有高死亡率。在该细菌地方性流行大多数兽群中，母 猪产生强的母体免疫，其正常留存它的后代中，直到8至12周龄为止。结 果，感染在断奶仔畜中的影响通常是零或极小的。然而，在吮乳小猪中可 能出现病情。若猪只仍受到母体抗体的保护，然后刺激它们自己的免疫反 应，则通常成为亚临床感染。然而，若母体免疫在它们被感染之前消失， 则可能发展出严重的疾病。这通常是在断奶之后。其亦可成为其它主要疾 病，特别是地方性肺炎(EP)(肺炎枝原体)的继发病原体。在吮乳小猪中，特 别是在小母猪(gilt)群中，有时有疾病爆发。Hps攻击关节的平滑表面、小肠 的覆盖部分、肺、心脏和脑，引起肺炎、心包囊感染、腹膜炎和胸膜炎。 它是经呼吸传播的。Hps很少在母猪中引起疾病，除非干乳期母猪是无经历 的。在小母猪中偶而可见跛足或僵硬、关节和肌腱处稍微肿胀，以及罕有 的脑膜炎。在小猪中，急性病情表现为：猪只迅速消沉，体温升高，无食 欲，不愿起身。一次2-3下的短咳是典型特征之一。吮乳良好的小猪中的突 然死亡并不少见。亦已知Hps在个别病例中引起关节炎和跛足，伴随有发 热和无食欲。慢性疾病的特征是猪肤色苍白和生长状态不佳。亦可能发生 突然死亡。至于断奶小猪和生长猪，患有格拉塞氏病的猪变得迅速消沉， 或可能才发现就死亡了。其它的症状包括体温升高、食欲不振、不愿起身、 神经症状，如痉挛和抽搐，包括脑膜炎，常导致猪状况不良、日渐消耗和 多毛。在幼龄的生长猪中，下列的症状是最常见的：发热、轻微的脑膜炎、 关节炎、跛足、肺炎、心包囊感染、腹膜炎和胸膜炎。同样，一次仅2-3 下的短咳是典型的特征。
渗出性皮肤炎是由一种细菌——猪葡萄球菌(Staphylococcus hyicus)引 起的，其正常生活在皮肤上，不会引起疾病。不知为何它有时加剧，并引 起皮肤炎，渗出油腻的液体。其产生毒素，毒素被吸收到体内，并伤害肝 脏及肾脏。在吮乳小猪中，疾病通常限于个别的动物，但在新小母猪群和 断奶猪中可能造成严重的问题。在即将产仔前的几天内，细菌在母猪的阴 道内大量繁殖，使得小猪在出生过程中或出生后不久被感染。母猪的症状 包括少见但局限的损害，尤其可见于在眼睛和面部后方。严重受累的小猪 将会死亡。小猪中的症状包括胁部上和耳后的局限损害。损害开始时通常 是面部四周或在腿上的小型、暗色、局限的感染区。沿着腹侧面和在腿之 间的皮肤变成棕色，逐渐累及全身。皮肤起皱纹，伴随着大面积的剥落， 并有油腻的触感。在严重的病例中，皮肤因坏死而变黑，且小猪死亡。若 母猪将一些免疫力传递给小猪，则可见较局限的状况，直径大约5-10毫米 的小型、界限性、不扩展的损害。至于断奶和生长猪，症状通常在断奶后 大约3天开始，在脸部四周或在腿上皮肤已经受损之处有局限性的棕色感 染区或皮肤炎。其可能溃疡。沿着肚子侧面和在腿之间的皮肤变成棕色， 逐渐牵涉到全身。皮肤起皱纹，伴随着大面积的剥落，并发展成暗色油腻 的质地，在严重的病例中变成黑色。这类病例通常因葡萄球菌体产生的毒 素而死亡。在养殖场中，群体中高达15％可能被累及，且经常发生脱水。
猪丹毒是由细菌猪红斑丹毒丝菌(Erysipelothrix rhusiopathiae)引起的， 在大多数但非全部的猪场中发现。高达50％的动物可能在其扁桃腺中带有 这种细菌。该细菌总是出现在猪中或环境中，因为它通过唾液、粪便或尿 排泄。该细菌亦在许多其它的物种中有发现，包括鸟类和绵羊，并可在猪 体外存活数周，而在轻质土中更久。因此，从畜群中除去这种细菌是不可 能的。被感染的粪便或许是感染的主要来源，特别是在生长和肥育畜栏中。 这种细菌可单独引起该疾病，但若同时有病毒感染，如PRRS或流感，可能 引起爆发。疾病在小于8-12周龄的猪中较不常见，因为从母猪通过初乳获 得的母体抗体提供了保护。最易感染疾病的动物是生长中的猪，未接种疫 苗的母猪，和经产数不超过4次(up to 4 th parity)的母猪。该生物在体内繁 殖，并侵入血流，产生败血症。然后，在猪中的繁殖速度和免疫力之水平 可决定临床症状。
血虫体病(Epe)是由一种叫做猪血虫体的细菌引起的疾病，这种细菌附 贴在红细胞的表面，有时破坏它们。猪可能贫血，而在细胞破坏之后留下 的产物可能引起黄疸。在年幼的生长猪中最常发生临床病情。然而，它亦 可能在生育畜群中引起呼吸道问题。母猪可能带有Epe但仍相当健康，然 而，Epe可能越过胎盘，导致出生的小猪虚弱苍白。Epe出现在大多数但并 非所有的兽群中，但还不知道是什么机制使它具有致病性，而且在一些群 体中导致疾病而在其它群体中则不致病。疾病的发生率低。
脑心肌炎，或EMC，感染各种脊椎动物中并引起疾病，但猪似乎是最 易感染的农场动物。该病毒遍布全世界，但在不同的国家和地区，在致病 性和毒力上有差异。在大部分欧洲国家中，特别是在欧盟国家中，它有相 对较轻微或非致病性的倾向，且很少在猪中诊断出该疾病。澳大利亚的株 系似乎比新西兰的株系对猪的毒力强得多。佛罗里达、加勒比海和(可能的) 中美洲的毒力株系，可损害心脏并引起死亡，而在美国中西部的株系有引 起生殖问题的倾向。当大鼠数目增加至猖獗的程度时，猪便有发生临床疾 病的倾向。猪可从大鼠被感染，或从大鼠污染的饲料或水被感染。感染似 乎不会在猪之间非常迅速地散播。在受累的兽群中，断奶和生长中的猪通 常没有临床症状。
奥耶斯基氏病(Aujeszky′s disease)或称AD，是由疱疹病毒引起的一种重 要的猪类疾病。该病毒可在携带状态下，持续隐藏在神经内一段长时间， 然后再度被活化。一旦进入兽群中，病毒通常保留在其中，且它能够不同 的水平持续影响生殖功能。病毒在猪体外可存活最多3周。当有毒力的病 毒株系首次影响未接种疫苗的易感染兽群时，便发生疾病的急性爆发。病 毒能越过子宫和胎盘并感染胎儿。猪是主要的寄主。但狗和牛亦可被感染， 显示神经症状，并死亡。
猪巨细胞病毒感染(PCMV)是由一种疱疹病毒引起的；这种病毒在全身 组织中都可找到，包括新生小猪的鼻子，在那里引起炎症(鼻炎)。PCMV在 全世界都有存在，并存在于差不多所有的猪群中，但大部分的感染为亚临 床的，很少有临床疾病。例如，在英国进行的血清学分析指出，有超过90％ 的兽群已经暴露在感染之下。由该病毒产生的鼻炎是罕见的，主要发生在 新生小猪，与产毒素细菌——多杀巴斯德氏菌引起的萎缩性鼻炎无关。因 此，在大多数的兽群中，感染是不显著的，除了有时引起轻微的打喷嚏之 外，对猪的健康没有重大影响。
蓝眼病(blue eye disease)是病毒性疾病，引起神经症状、生殖障碍和角 膜不透明或变蓝。主要见于墨西哥，但在其它国家也曾有报告。未见于欧 洲。症状包括无食欲、角膜不透明-结膜炎、神经症状，如阵发痉挛和抽搐、 好采取犬坐姿、发热、返情(returns)增加、断奶到交配的间隔增加、死产、 小猪木乃伊化的、小猪高死亡率、睾丸肿大和丧失性欲。
日本乙型脑炎病毒(JE)是由蚊子传播的病毒，且仅在昆虫盛行的国家中 是重要的。它侵袭大多数的家畜。它可在人类引起脑炎。猪是重要的感染 源。症状包括小猪木乃伊化或死产，小猪的神经症状，如阵发痉挛和抽搐， 且在小猪中有水肿液。它还可引起公猪不孕和睾丸肿大。
猪流行性腹泻(PED)是由一种冠状病毒引起的，这种病毒与引起TGE 者的冠状病毒略为类似。该病毒在欧洲广泛流传。病毒损害肠绒毛，从而 使吸收表面减少，伴随体液丧失和脱水。在病毒进入易感染的种畜群之后， 在二至三周内出现强的免疫力。然后初乳的免疫力保护小猪。病毒通常自 发地从生育畜群，特别是小型的兽群(<300只母猪)中消失。当病毒头一次 进入易感染的群体中时，便发生腹泻的急性爆发。在这类情况下，可能高 达100％的母猪被侵袭，出现轻微至极度水状的腹泻。确认了两种临床现象： PED第I型仅侵袭生长中的猪，而PED第II型侵袭所有年龄，包括吮乳猪 和成熟母猪。潜伏期约2天，而腹泻则持续7至14天。在吮乳小猪中，疾 病可能是轻微或严重的，死亡率高达40％。在大型生育畜群，特别是大规 模饲养的生育畜群中，头一次并不是所有的雌兽都被感染(first time around)， 而可能会有再发。这仅在无母体抗体的母猪的吮乳小猪中发生，因此是散 发的。
猪呼吸道冠状病毒感染(PRCV)，在十多年或更久以前，首次出现在欧 洲的猪只中。它与另一种冠状病毒——TGE病毒相近但不相同。人们认为 这种病毒凭借风力在农场之间传播，保持兽群中没有该病毒是极为困难的。 感染经常发生在2至3周龄的吮乳小猪，但不是很重要。当在慢性呼吸疾 病综合征中出现其它呼吸道病原体时，它可能对肺组织有影响。母猪通常 无症状，但在其它与咳嗽有关的呼吸道病原体的存在下，可能出现咳嗽。 在断奶和生长猪中，头一次接触的兽群几乎没有症状。最常见的症状是短 暂的咳嗽，仅持续数小时。
轮状病毒(rotavirus)感染是一种在猪群中广泛流传的病毒感染。它出现 在绝大多数猪群中，在成年牲畜中差不多有100％的血清转变。其另一流行 病学特征是它在猪体外的持久性；在猪体外它对环境改变和许多杀菌剂有 抗性。母体抗体持续3-6周，在此之后猪成为易受感染的，但接触不一定会 导致疾病。估计猪中仅有10-15％的腹泻是由原发的轮状病毒感染引起的。 在成熟兽群中，在小猪7至10天大之后出现病情。随着年龄增长而越来越 不重要。然而，若存在致病的大肠杆菌株系，可能发生严重的病情且死亡 率很高。
狂犬病是由病毒引起，而在猪则被视为一种罕见的疾病。它在所有物 种包括人类中都是致命的，因此极为重要。狂犬病在英国没有，但在世界 上的其它国家中都有出现。很少感染小猪和母猪。在母猪、断乳小猪和生 长猪中，疾病发生是突然的，症状包括脸部肌肉的神经性痉挛、阵发痉挛 和抽搐、快速地咬、流唾、肌肉发生痉挛，并可能出现后躯麻痹。通常在3 天内死亡。
猪水疱病(SVD)是与引起口蹄疫(FMD)的病毒不同的病毒。然而，它在 猪身上产生的疾病，在临床上与FMD无法区别。若突然普遍出现跛足，且 在口鼻部、舌和爪尖有水泡或脓泡，便应认为是该疾病。
结核病侵袭哺乳动物，包括人、鸟类和猪。病原体结核分枝杆菌，分 成人型、牛型和鸟型。鸟型又叫做鸟分枝杆菌(M.avium)或更常称为鸟/胞内 (avian/intracellulare)复合体，因为它不是均一存在的物种。鸟分枝杆菌本身 主要感染鸟类，但也在环境中与胞内分枝杆菌(M.intracellulare)一起被发现， 其主要是腐生的，不需活体。猪很少被人或牛型感染，但经常被鸟/胞内复 合体感染。鸟/胞内复合体亦在健康的人中引起亚临床非进行性的感染。主 要的担忧是它可能在免疫抑制的人和患有AIDS的人中引起更严重的疾病。 在大多数国家中，若在屠体颈部发现损害，整个头部就要禁止使用，若在 引流肠的肠系膜淋巴结中发现损害，则内脏禁止使用。若在体内更广泛散 布——这种情况很少见——则可能禁止使用整个屠体或将其进行蒸煮。若 肉品检查员漏检了小的损害，正常的厨房烹煮将会破坏该生物。在所有的 猪中，感染在颈部和引流小肠的淋巴结中引起小结节。在绝大多数的病例 中，损害是非进行性的，不会散播到全身，也不会使猪生病且不会被排出。 没有临床症状，且感染和未感染猪之间在表现上并无差异。
猪水疱疹(VES)病毒与引起口蹄疫(FMD)和猪水疱病(SVD)的那些病毒 不同，但它在猪身上产生的疾病在临床上与FMD和SVD无法区别。和FMD 不同，它仅影响猪。症状包括低死亡率，但在吮乳小猪可能有一些死亡。 其它的症状包括流唾、无食欲，并在嘴、鼻、舌和足部周围有水泡。
水泡性口炎(VS)引起的疾病，主要发生在南美洲和中美洲，偶尔发生在 美国，极少数情况下在北至加拿大南达阿根廷的范围内流行。VS病毒在猪 身上产生的疾病，在临床上与FMD、SVD和VES无法区别。然而，感染 的猪最常是亚临床的。在所有的猪中，感染的特征为流唾、足部损害和跛 足、生长速率降低、体温升高至40-41℃(106-107℉)，在鼻、唇和乳头上， 以及在蹄冠周围出现直径最高达30毫米的水泡(脓泡)，这可能使猪跛足。 死亡率通常很低，大部分的猪在一到两周内恢复。
萎缩性鼻炎，进行性和非进行性疾病，其引起鼻子的炎症，可能由各 种细菌和刺激性物质引起。在感染过程中，伤害鼻内细致的结构和鼻甲骨， 使其萎缩并消失。进行性萎缩性鼻炎，是指鼻组织永久萎缩的特定疾病。 它是由特定的产毒素型多杀巴斯德氏菌菌株(PMt)引起的。分A和D两型。 在吮乳猪中，最先的症状是打喷嚏、鼻塞和流鼻涕，但在急性爆发且几乎 没有母体抗体时，鼻炎可能严重到鼻子流血的程度。到三至四周龄为止， 并从断奶开始，有泪液污染和鼻子扭曲与缩短(twisting and shortening)之 畸形的证据。受到严重影响的猪，可能有进食的问题。有降低很多的每日 增重。在严重爆发的猪只中，可能无法生长至上市的体重。
东方马脑炎病毒(EEEV)是披盖病毒科(Togaviridae)，α病毒(alphavirus) 属的成员。当被感染的蚊子叮咬时，EEEV可传播给马和人类。除了马和人 类之外，EEEV可在普通的家畜中产生严重疾病，如猪和牛。已经从鸟类， 如火鸡、雉、鹌鹑、驼鸟和鸸鹋中回收了EEEV或病毒特异性的抗体。
枝原体关节炎是由猪关节液枝原体(Mycoplasma hyosynoviae)感染引起 的。该关节炎之特征为一个或多个关节的炎症，且常见于所有吮乳和生长 猪，以及母猪中。然而，在小猪中很少发生。
腺病毒和凝血性脑脊髓炎病毒亦可引起猪的感染。
因此，在本领域中，需要一种获得ORF2蛋白质，但不需从被感染的细 胞内提取ORF2蛋白质的方法。更需要以足以高效地制备疫苗组合物的量获 得重组ORF2蛋白质的方法。更需要无需像现有ORF2蛋白质提取规程所需 的复杂且劳动力密集的方法，而能够获得ORF2蛋白质的方法。最后，关于 组合物，在本领域中，需要免疫组合物，其赋予对抗PCV2感染的保护性免 疫力，并减轻与其相关的临床体征的严重性或预防与其相关的临床体征。
发明概要
本发明克服了在现有技术中固有的问题，并为现有技术发展水平提供 了明显的进步。具体而言，本发明的一方面提供了用于产生和/或回收重组 PCV2 ORF2蛋白质的改进方法，所述方法i)通过容许含有PCV2 ORF2 DNA 编码序列的重组病毒载体感染培养中的易感细胞，其中该重组病毒载体表 达ORF2蛋白质，并ii)随后回收上清液中的ORF2。已经意外地发现，若容 许感染和后续的感染细胞培养越过(progress past)现有技术中典型的PCV2 ORF2回收过程(该过程从细胞内提取PCV2 ORF2)，便会释放大量的ORF2 至上清液中。而且，亦已经意外地发现，PCV ORF2蛋白质对于生产细胞外 部的原型降解作用(prototypical degradation)是鲁棒(robust)的。这两个发现共 同容许从利用含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 ORF2蛋白质的重组病毒 载体感染的细胞培养上清液中回收高量的PCV2 ORF2蛋白质。高量的PCV2 ORF2蛋白质意指超过大约20μg/ml上清液，优选超过大约25μg/ml，更 优选超过大约30μg/ml，甚至更优选超过大约40μg/ml，甚至更优选超过 大约50μg/ml，甚至更优选超过大约60μg/ml，甚至更优选超过大约80μ g/ml，甚至更优选超过大约100μg/ml，甚至更优选超过大约150μg/ml，最 优选超过大约190μg/ml。亦可通过在实施例1至3中描述的方法达到那些 表达率。
优选的细胞培养物具有在大约0.3-2.0 x 106个细胞/mL之间的细胞计数， 优选从大约0.35-1.9 x 106个细胞/mL，甚至更优选从大约0.4-1.8 x 106个细胞 /mL，甚至更优选从大约0.45-1.7 x 106个细胞/mL，而最优选的是从大约 0.5-1.5 x 106个细胞/mL。优选的细胞可以由本领域技术人员加以决定。优选 的细胞是易于利用含有PCV2 ORF2 DNA的适当重组病毒载体加以感染， 并表达PCV2 ORF2蛋白质的那些细胞。该细胞优选地是昆虫细胞，更优选 其包括以商标名Sf+昆虫细胞市售的昆虫细胞(Protein Sciences Corporation， Meriden，CT)。
适当的生长培养基亦可由本领域技术人员决定，优选的生长培养基是 不含血清的昆虫细胞培养基，如Excell 420(JRH Biosciences，Inc.，Lenexa， KS)等等。优选的病毒载体包括杆状病毒，如BaculoGold(BD Biosciences Pharmingen，San Diego，CA)，特别是在生产细胞为昆虫细胞时。虽然杆状病 毒表达系统是优选的，但本领域技术人员了解其它的表达系统对本发明的 目的，即表达PCV2 ORF2至细胞培养物的上清液中也是有用的。这类其它 的表达系统可能需要使用信号序列，以便将ORF2表达至培养基内。已经意 外地发现，当由杆状病毒表达系统产生ORF2时，不需要任何信号序列或进 一步的修饰来使ORF2表达在培养基内。人们认为该蛋白质可独立地形成类 病毒颗粒(Journal of General Virology第81册，第2281-2287页(2000))，并 被分泌至培养物上清液中。重组的病毒载体含有PCV2 ORF2 DNA序列， 当用来感染易感细胞时，具有在大约0.03-1.5之间的优选感染复数(MOI)， 更优选从大约0.05-1.3，甚至更优选从大约0.09-1.1，而最优选的是从大约 0.1-1.0。上文提及的优选MOI是相对于1mL细胞培养液。优选的是，在本 文中描述的方法包括使用含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 ORF蛋白质 的重组病毒载体，以大约0.03-1.5，更优选大约0.05-1.3，甚至更优选大约 0.09-1.1，最优选大约0.1-1.0的MOI(感染复数)感染0.35-1.9 x 106个细胞/mL， 更优选大约0.4-1.8 x 106个细胞/mL，甚至更优选大约0.45-1.7 x 106个细胞 /mL，最优选大约0.5-1.5 x 106个细胞/mL。
然后培养被感染的细胞最多10天，更优选大约2天到大约10天，甚 至更优选大约4天到大约9天，最优选从大约5天到大约8天。优选的培 养条件包括在大约22-32℃之间的温度，优选的是从大约24-30℃，更优选 从大约25-29℃，甚至更优选从大约26-28℃，最优选的是大约27℃。优选 的是，在接种之后观察Sf+细胞中杆状病毒诱导的独特变化。这类观察可包 括监视感染后的期间内细胞密度的动向和存活率的降低。结果发现，在感 染后3-5天观察到病毒效价的高峰，并且在第5到8天之间，和/或当细胞 存活力降低至10％以下时，ORF2从细胞中到上清液中的释放达到高峰。
因此，本发明的一个方面提供一种用于产生和/或回收(优选以上文所述 的量)重组PCV2 ORF2蛋白质的改良方法，所述方法是通过i)容许用重组病 毒以如上文定义的MOI载体感染若干培养中的易感染细胞(参见上文)，ii) 由该重组病毒载体表达ORF2蛋白质，且iii)然后，从感染后5-8天之间和/ 或细胞活力降低至10％以下(时)获得的细胞的上清液中回收PCV2 ORF2。 优选的是，重组病毒载体是含有PCV2 ORF2 DNA编码序列的重组杆状病 毒，且该细胞为Sf+细胞。此外，最好在感染之后的期间内周期性地检查培 养物中污染的宏观和微观证据，或是细胞形态学上的非典型变化。任何培 养物出现任何污染时均应予以抛弃。优选的是，所表达的ORF2重组蛋白质 被细胞分泌至维持细胞生存的周围生长培养基内。然后从细胞周围的上清 液中，而不是从细胞本身中回收ORF2。
回收过程优选以分离培养基中的细胞碎屑与被表达的ORF2的分离步 骤开始。优选的分离步骤包括过滤、以最高达大约20,000xg的速度离心、 连续流离心、使用离子交换或凝胶过滤的层析分离，以及传统的免疫亲和 法。那些方法均为本领域技术人员已知的，例如(Harris和Angel(编辑)， Protein purification methods-a practical approach，IRL press Oxford 1995)。最 优选的分离法包括以高达大约20,000xg的速度离心，以及过滤。优选的过 滤法包括封端(dead end)式微量离心，以及切向流(或交叉流)过滤，包括中空 纤维过滤封端式微滤(dead end microfiltration)。其中，封端式微滤是优选的。 封端式微滤的优选孔大小是在大约0.30-1.35微米之间，更优选在大约 0.35-1.25微米之间，甚至更优选在大约0.40-1.10微米之间，最优选在大约 0.45-1.0微米之间。相信任何常规的过滤膜均适合可实现本发明目的，但优 选的是聚醚砜膜。在过滤步骤期间，移除任何低分子量(low weight)的核酸 种类。
因此，本发明的另一个方面提供一种用于产生和/或回收(优选以上文所 述的量)重组PCV2 ORF2蛋白质的改良方法，所述方法通过i)容许用重组病 毒以如上文定义的MOI载体感染若干培养中的易感染细胞(参见上文)，ii) 由该重组病毒载体表达PCV ORF2蛋白质，iii)从感染后5-8天之间和/或细 胞活力降低至10％以下(时)获得的细胞的上清液中回收PCV2 ORF2，并iv) 通过分离步骤分离细胞碎屑与已表达的PCV2 ORF2。优选的是，该重组病 毒载体是含有PCV2 ORF2 DNA编码序列的重组杆状病毒，且该细胞为Sf+ 细胞。优选的分离步骤是上述的那些。最好是使用孔大小为大约0.30-1.35 微米之间，更优选大约0.35-1.25微米之间，甚至更优选大约0.40-1.10微米 之间，最优选大约0.45-1.0微米之间的膜进行封端式微滤。
为了回收将用于免疫原性或免疫学组合物(如疫苗)的PCV2 ORF2，优 选包含失活化步骤，以便使病毒载体失活。＂免疫原性或免疫学组合物＂意指 这样的物质的组合，其包括至少一个在宿主中诱发免疫反应的抗原，该免 疫反应是针对感兴趣的组合物或疫苗的细胞和/或抗体介导的免疫反应。通 常，＂免疫反应＂包括但不限于一或多个下列效应：特异地针对感兴趣之组合 物或疫苗中所含的抗原的抗体、B细胞、T辅助细胞、抑制性T细胞，和/ 或细胞毒性T细胞和/或yd T细胞的产生或激活。优选的是，宿主将展现治 疗性或预防性免疫反应，从而提高对新感染的抵抗力，和/或降低疾病的临 床严重性。这样的保护作用表现为：减少或消除被感染宿主通常展现的症 状、加快恢复时间，和/或降低在被感染宿主中的病毒效价。因此，本发明 还涉及用于产生和/或回收(优选以上文所述的量)重组PCV2 ORF2蛋白质的 方法，所述方法是通过i)容许用重组病毒以如上文定义的MOI载体感染若 干培养中的易感染细胞(参见上文)，ii)由该重组病毒载体表达PCV ORF2蛋 白质，iii)从感染后5-8天之间和/或细胞活力降低至10％以下(时)获得的细 胞的上清液中回收PCV2 ORF2，iv)通过分离步骤分离细胞碎屑与已表达的 PCV2 ORF2，并v)使该重组病毒载体失活。
优选的是，在即将进行过滤步骤之前或之后马上实施失活化，而优选 的失活化时间是在过滤步骤之后。任何传统的失活化方法均可用于本发明 的目的。因此，可通过化学和/或物理处理进行失活化。在优选的形式中， 测定收获液的体积，并使温度达到大约32-42℃之间，更优选在大约34-42 ℃之间，最优选大约35-39℃之间。优选的失活化方法包括加入环化二元氮 丙啶(BEI)，优选是以大约1至大约20mM的浓度，更优选的是大约2至大 约10mM，更优选大约2至大约8mM，甚至更优选大约3至大约7mM， 最优选的是大约5mM。例如，失活化包括在液体中加入优选为大约0.4M 的2-溴乙撑胺氢溴化物的溶液(其已经在0.3N NaOH中被环化成0.2M的二 元氮丙啶(BEI))，得到终浓度大约5mM的BEI。优选的是，然后持续搅拌 该液体72-96小时，并可将失活的收获液冷冻储存在-40℃或更低，或在大 约1-7℃下。在完成失活化之后，加入硫代硫酸钠溶液，优选是1.0M，中 和任何残余的BEI。优选的是，加入的硫代硫酸钠与先前为了失活化而加入 的BEI相比是等量的。例如在加入EBI至终浓度为5mM的情况下，加入 1.0M硫代硫酸钠溶液，得到5mM的最低终浓度，以中和任何残余的BEI。
因此，本发明更进一步的一个方面涉及一种产生重组PCV2 ORF2蛋白 质(优选以上文所述的量)的方法，该方法是通过i)容许用重组病毒以如上 文定义的MOI载体感染若干培养中的易感染细胞(参见上文)，ii)由该重组 病毒载体表达PCV ORF2蛋白质，iii)从感染后5-8天之间和/或细胞活力降 低至10％以下(时)获得的细胞的上清液中回收PCV2 ORF2，iv)通过分离步 骤分离细胞碎屑与已表达的PCV2 ORF2，并v)使该重组病毒载体失活。优 选的是，该重组病毒载体是含有ORF2 DNA编码序列的杆状病毒，且该细 胞为Sf+细胞。优选的分离步骤是上述的那些，最优选是过滤步骤。优选的 失活化步骤是上述的那些。优选的是，在大约35-39℃之间，在2至8mM BEI 的存在下，更优选在大约5mM BEI的存在下进行失活化。已经意外地发现， 较高浓度的BEI，对PCV2 ORF2蛋白质有负面的影响。
根据本发明更进一步的方面，上述的方法还包括在步骤v)之后的中和 步骤。该步骤vi)包括加入等量的中和溶液内的失活剂的试剂。优选的是， 若失活剂是BEI，则优选加入等量的硫代硫酸钠。因此，根据另一个方面， 当失活剂为BEI时，步骤vi)包括加入硫代硫酸钠溶液至大约1至大约20mM 的终浓度，优选的是大约2至大约10mM，更优选大约2至大约8mM，甚 至更优选大约3至大约7mM，最优选是大约5mM。
在优选的形式中，且特别是重组PCV2 ORF2蛋白质将用于免疫组合物， 如疫苗的形式中，对每一批收获的ORF2，通过在贴壁依赖性、杆状病毒易 感性的Sf+细胞中传代来测试其失活情况。在这种测试方法的优选形式中， 以1.0mL失活的PCV2液接种150cm2的适当细胞培养物单层，并维持在 25-29℃下14天，传代至少两次。在维持期结束时，对细胞单层检查PCV2 ORF2杆状病毒典型的致细胞病变作用(CPE)。优选的是，亦使用阳性细胞 对照组。这类对照组可由一个以未失活参考PCV2 ORF2杆状病毒接种的Sf+ 细胞培养物，以及一瓶保持未接种的Sf+细胞组成。在培养和传代之后，若 在BEI处理病毒液中没有病毒感染的细胞，则是令人满意的失活测试。以 参考病毒接种的对照组细胞应显示PCV2 ORF2杆状病毒典型的CPE，而未 接种烧瓶应该不显示任何PCV2 ORF2杆状病毒CPE的迹象。或者，在维持 期间结束时，可收集上清液试样，接种在载有Sf+细胞的Sf+96孔培养板上， 维持在25-29℃下5-6天。然后固定该板，并用与FITC偶联的抗-PCV2 ORF2 抗体染色。若通过IFA显微镜检查在BEI处理的病毒液中没有CPE和ORF2 表达，则是令人满意的失活测试。以参考病毒接种的对照组细胞，应显示 CPE和IFA活性，而未接种的瓶则不应显示任何PCV2 ORF2杆状病毒CPE 的迹象，且不含IFA活性。
因此，本发明更进一步的方面涉及一种用于测定重组病毒载体失活化 的有效性的失活测试，包括步骤：i)使至少一部分含重组病毒载体的培养液 与失活剂接触，优选如上述的失活剂，ii)加入中和剂来中和失活剂，优选如 同上述，并iii)通过如上述测定法测定残余的感染性。
本发明更进一步的方面涉及一种用于构建重组病毒载体的方法，所述 重组病毒载体含有PCV2 ORF2 DNA，并在感染至易感细胞内时以高量表达 PCV2 ORF2蛋白质。意外地发现，本文提供的重组病毒载体在感染易感细 胞之后，以如上所述的高量表达PCV2 ORF2。因此，本发明还涉及一种用 于产生和/或回收PCV2 ORF2蛋白质的改良方法，优选包括下列步骤：构建 含有PCV2 ORF2 DNA的重组病毒载体并表达PCV2 ORF2蛋白质。优选的 是，该病毒载体为重组的杆状病毒。构建本文提供的含有PCV2 ORF2 DNA 并表达PCV2 ORF2蛋白质的重组病毒载体的方法的细节，描述如下：在优 选的形式中，通过将其中克隆了ORF2基因的转移载体转染至病毒载体内， 来产生用于感染细胞的、含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 OFR2蛋白质 的重组病毒载体。优选的是，仅将转移载体中含有ORF2 DNA的部分转染 到病毒载体内。＂转染至病毒载体内＂一词用作＂导入＂或＂克隆＂异源DNA至 病毒载体内的同义词，如导入杆状病毒载体内。该病毒载体优选是但不必 是杆状病毒。
因此，根据本发明更进一步的方面，重组病毒载体是通过在含有异源 PCV2 ORF2 DNA的转移载体和病毒载体之间的重组作用而产生的，所述病 毒载体优选是杆状病毒，更优选是线性化的复制缺陷的杆状病毒(如Baculo Gold DNA)。＂转移载体＂意指这样的DNA分子，其包括至少一个复制起点、 异源基因(在本案中为PCV2 ORF2)、以及容许克隆该异源基因至病毒载 体内的DNA序列。优选地，容许克隆异源基因至病毒载体内的序列位于该 异源基因的侧翼。甚至更优选地，那些位于侧翼的序列与病毒载体的序列 至少部分上是同源的。该序列同源性容许两个分子——病毒载体和转移载 体——发生重组，产生含有异源基因的重组病毒载体。一种优选的转移载 体为pVL1392载体(BD Biosciences Pharmingen)，它被设计用于与 BaculoGold DNA共转染至优选的Sf+细胞株内。该转移载体优选包括PCV2 ORF2DNA。共染的构建体约为10,387个碱基对长。
在更优选的形式中，本发明的方法将以PCV2 ORF2 DNA的分离开始。 通常，这可来自已知或未知的株系，因为ORF2 DNA似乎是高度保留的， 在不同的分离株之间有至少大约95％的序列同一性。为了本发明的目的， 可使用本领域中已知的任何PCV2 ORF2基因，因为每一个都将表达到上清 液中。优选使用PCR法扩增PCV ORF2 DNA，更优选同时导入5′侧翼Kozak′s 共有序列(CCGCCAUG)(SEQ ID NO:1)和/或3′侧翼EcoR1位点 (GAATTC)(SEQ ID NO:2)。所述5′Kozak′s共有序列的导入优选导致PCV2 ORF2的天然存在之起始编码子AUG的去除。3′EcoR1位点优选被导入在 PCV2 ORF2之终止编码子的下游。更优选的是，它被导入在多聚A转录终 止序列的下游，多聚A转录终止序列自己则位于PCV2 ORF2终止密码子的 下游。已经发现Kozak′s共有序列的使用，特别是如上述的使用，会增加随 后PCV2 ORF2蛋白质的表达水平。将扩增后PCV2 ORF2 DNA及这些额外 的序列一起导入载体内。一种适合这个初步克隆步骤的载体是 pGEM-T-Easy载体(Promega，Madison，WI)。优选是在Not1限制位点从载体 中切下包含一些pGEM载体序列(SEQ ID NO:7)的PCV2 ORF2 DNA。然后 将所得的DNA克隆到转移载体内。
因此，在本发明的一个方面中，提供一种用于构建含有PCV2 ORF2 DNA的重组病毒载体的方法。该方法包括下列步骤:i)将重组的PCV2 ORF2 克隆到转移载体内，并ii)将转移载体的含有重组PCV2 ORF2的部分转染到 病毒载体内，产生重组的病毒载体。优选的是，该转移载体是如上所述的， 或是按照如上所述构建的，或在图1中例举的那样构建的。因此，根据更 进一步的一个方面，用来构建如上述之重组病毒载体的转移载体含有SEQ ID NO:7的序列。
根据更进一步的一个方面，该方法在步骤i)之前，还包括下列步骤：在 体外扩增PCV2 ORF2 DNA，其中按照上述修饰PCV2ORF2DNA的侧翼序 列。在体外扩增PCV2 ORF2 DNA并修饰该侧翼序列，在体外将经扩增之 PCV2 ORF2 DNA克隆到转移载体内的方法，以及适当的转移载体，已在上 文中描述、在图1中举例说明，或是本领域技术人员已知的。因此，根据 更进一步的方面，本发明涉及构建含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 ORF2蛋白质之重组病毒载体的方法，包括下列步骤：i)在体外扩增PCV2 ORF2 DNA，其中修饰该PCV2 ORF2 DNA的侧翼序列，ii)将经扩增之PCV2 ORF2 DNA克隆到转移载体内，并iii)将转移载体或其含有重组PCV2 ORF2 DNA的部分转染至病毒载体内，产生重组的病毒载体。优选如上文所述进 行PCV2 ORF2 DNA之侧翼序列的修饰，例如通过导入5′Kozak′s序列和/ 或EcoR1位点，优选如上文所述的方式进行。
根据更进一步的方面，提供一种用于产生和/或回收由PCV2的可读框2 表达的重组蛋白质的方法。该方法通常包括下列步骤：i)将重组PCV2 ORF2 克隆到转移载体内，ii)将转移载体中含有重组PCV2 ORF2的部分转染到病 毒内，iii)用被转染的病毒感染在培养基中的细胞，iv)使经转染的病毒从 PCV2 ORF2表达重组蛋白质，v)分离细胞与上清液；并vi)从上清液中回收 已表达的PCV2 ORF2蛋白质。
在上文中描述了如何将重组的PCV2 ORF2 DNA克隆到转移载体内的 方法。优选的是，转移载体含有SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:7 的序列。然而，转移载体可含有任何未经修饰或经修饰的PCV2 ORF2 DNA， 只要该PCV2 ORF2 DNA被转染至重组病毒载体内时，在细胞培养物中表 达即可。优选的是，该重组病毒载体包括SEQ ID NO:8之序列。此外，在 上文中详述了如何感染细胞的方法，优选是如何以一定数目的含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 ORF2蛋白质的重组杆状病毒来感染昆虫细胞的方 法。再者，还在上文中详述了分离细胞与上清液的步骤，以及回收已表达 之PCV2 ORF2蛋白质的步骤。在本文中描述的任何这些具体的处理步骤， 均为如上文所述的用于产生和/或回收由PCV2的可读框2表达的重组蛋白 质之方法的一部分。优选的是，该细胞为Sf+细胞。更优选地，细胞培养物 具有在大约0.3-2.0 x 106个细胞/mL之间的细胞计数，更优选从大约0.35-1.9 x 106个细胞/mL，甚至更优选从大约0.4-1.8 x 106个细胞/mL，甚至更优选从 大约0.45-1.7 x 106个细胞/mL，最优选的是从大约0.5-1.5 x 106个细胞/mL。优 选的是，当用来感染易感细胞时，含有PCV2 ORF2 DNA之重组病毒载体 具有在大约0.03-1.5之间的优选感染复数(MOI)，更优选从大约0.05-1.3， 甚至更优选从大约0.09-1.1，甚至更优选从大约0.1-1.0，最优选的是大 约0.5。优选是在感染后5-8天之间，和/或细胞存活力降低至10％ 以下时所获得之细胞的上清液中回收PCV2 ORF2蛋白质。为了产生PCV2 ORF2蛋白质，优选将细胞培养在25至29℃下。优选的分离步骤是离心或 过滤步骤。
任选地，该方法可包括在将PCV2 ORF2 DNA克隆到转移载体内之前， 扩增来自PCV2株系之PCV2 ORF2 DNA的步骤。在优选的形式中，还可在 被扩增的序列中加入5′Kozak′s序列、3′EcoR1位点及其组合，优选是在扩 增作用之前或期间加入。优选的5′Kozak′s序列包括SEQ ID NO:1。优选的 3′EcoR1位点包括SEQ ID NO:2。优选的PCV2 ORF2 DNA包括核苷酸序列 Genbank登录编号AF086834(SEQ ID NO:3)和SEQ ID NO:4。优选的重组 PCV2 ORF2蛋白质包括SEQ ID NO:5的氨基酸序列，它是由SEQ ID NO:3(Genbank登录编号AF086834)编码的蛋白质，以及SEQ ID NO:6的氨 基酸序列，它是由SEQ ID NO:4编码的蛋白质。优选的培养基包括不含血 清的昆虫细胞培养基，更优选Excell 420培养基。当进行任选的扩增步骤时， 优选是先将扩增后的可读框2克隆到第一个载体内，从该第一个载体中切 下可读框2，并使用切下来的可读框克隆至转移载体内。优选用于共转染的 细胞株是Sf+细胞株。优选用于共转染的病毒是杆状病毒。在该方法的优选 形式中，转移载体中被转染的部分包括SEQ ID NO:8。最后，对该方法而言， 优选在以病毒感染细胞之后至少5天，回收在细胞培养上清液中的PCV2 可读框2(ORF2)蛋白质。
因此，本发明更进一步的方面涉及一种产生和/或回收PCV2可读框2 的方法，包括下列步骤：i)在体外扩增PCV2 ORF2 DNA，优选是通过加入 5′Kozak′s序列和/或加入3′EcoR1限制位点，ii)将经扩增之PCV2 ORF2克 隆到转移载体内；iii)将转移载体之含有重组PCV2 ORF2的部分转染到病毒 内；iv)以经转染的病毒感染在培养基中的细胞；v)使该经转染的病毒从 PCV2 ORF2表达重组蛋白质；vi)分离细胞与上清液；并vii)从上清液中回 收已表达的PCV2 ORF2蛋白质。
本发明的一个更进一步的方面涉及制备包含PCV2 ORF2蛋白质和失活 病毒载体的组合物的方法。该方法包括下列步骤：i)将经扩增之PCV2 ORF2 克隆到转移载体内；ii)将转移载体之含有重组PCV2 ORF2的部分转染到病 毒内；iii)以经转染的病毒载体感染在培养基中的细胞；iv)使该经转染的病 毒载体从PCV2 ORF2表达重组蛋白质；v)分离细胞与上清液；vi)从上清液 中回收已表达的PCV2 ORF2蛋白质；并vii)使重组病毒载体失活。优选的 是，该重组病毒载体是含有PCV2 ORF2编码序列的杆状病毒，而该细胞是 Sf+细胞。优选的分离步骤是上述的那些，优选是过滤步骤。优选的失活步 骤是上述的那些。优选的是，在大约35-39℃下，在2至8mM BEI的存在 下，更优选在大约5mM BEI的存在下进行失活化。已经意外地发现，较高 浓度的BEI对PCV2 ORF2蛋白质有负面的影响，而较低浓度则不能在24 至72小时的失活期间内有效地使病毒载体失活。优选的是，失活化进行至 少24小时，更优选24至72小时。
根据更进一步的方面，如上文所述的制备包括PCV2 ORF2蛋白质和失 活病毒载体的组合物的方法，在步骤vii)之后还包括中和步骤。该步骤viii) 包括加入等量的能中和溶液中失活剂的试剂。优选的是，若失活剂为BEI， 优选加入等量的硫代硫酸钠。因此，根据更进一步的方面，当失活剂为BEI 时，步骤viii)包括加入硫代硫酸钠溶液至大约1至大约20mM的终浓度， 更优选大约2至大约10mM，甚至更优选大约2至大约8mM，甚至更优选 大约3到大约7mM，最优选的是大约5mM。
根据更进一步的方面，如上文所述的制备包括PCV2 ORF2蛋白质和失 活病毒载体之组合物的方法，在步骤i)之前，包括下列步骤：在体外扩增 PCV2 ORF2 DNA，其中如上文所述修饰PCV2 ORF2 DNA的侧翼序列。用 于在体外扩增PCV2 ORF2 DNA并修饰侧翼序列、在体外将经扩增之PCV2 ORF 2DNA克隆到转移载体内的方法，以及适当的转移载体，已在上文中 描述、在图1中举例说明，或者是本领域技术人员已知的。因此，根据更 进一步的方面，该方法包括下列步骤：i)在体外扩增PCV2 ORF2 DNA，其 中修饰该PCV2 ORF2 DNA的侧翼序列，ii)将经扩增之PCV2 ORF2 DNA克 隆到转移载体内；并iii)将转移载体或其含有重组PCV2 ORF2 DNA的部分 转染到病毒载体内，产生重组的病毒载体；iv)以经转染病毒感染在培养基 中的细胞；v)使该经转染的病毒从PCV2 ORF2表达重组蛋白质；vi)分离细 胞与上清液；vii)从上清液中回收已表达的PCV2 ORF2蛋白质；viii)使该重 组病毒载体失活，优选的是在大约1到大约20mM BEI的存在下，优选是 在大约5mMBEI的存在下；和ix)加入等量的中和剂来中和溶液中的失活 剂，当失活剂为BEI时，优选的是加入硫代硫酸钠溶液至大约1至大约20 mM的终浓度，优选是大约5mM。
在本发明另一项方面中，提供了一种用于制备诱发对抗PCV2的免疫反 应的组合物，优选抗原性组合物，例如疫苗的方法。通常，该方法包括将 构建体转染到病毒内的步骤，其中该构建体包括i)得自PCV2之ORF2的重 组DNA，ii)以经转染病毒感染在生长培养基中的细胞，iii)使该病毒从PCV2 ORF2表达重组蛋白质，iv)从上清液中回收已表达的ORF2蛋白质，和v) 通过将回收的蛋白质与适当的佐剂和/或可药用载体组合来制备组合物。
当在本文中使用＂佐剂＂一词时，可包括氢氧化铝和磷酸铝、皂角苷，例 如Quil A、QS-21(Cambridge Biotech Inc.，Cambridge MA)、GPI-0100(Galenica Pharmaceuticals，Inc.，Birmingham，AL)、油包水乳剂、水包油乳剂、水包油 包水乳剂。乳剂特别是以轻质液状石蜡油(欧洲药典型式)；来自链烷，特别 是异丁烯或癸烯的低聚作用的类异戊二烯油，如角鲨烷或角鲨烯油；含有 直链烷基基团之酸或醇的酯类，特别是植物油、油酸乙酯、丙二醇二-(辛酸 酯/癸酸酯)、甘油三-(辛酸酯/癸酸酯)或丙二醇二油酸酯；分支脂肪酸或醇的 酯类，特别是异硬脂酸酯为基础。使用油与乳化剂混合，形成乳剂。乳化 剂优选是非离子型表面活性剂，特别是脱水山梨糖醇(sorbitan)、二缩甘露糖 醇(例如无水甘露糖醇油酸酯)、甘油、聚甘油、丙二醇和油酸、异硬脂酸、 蓖麻油酸或羟基硬脂酸等的酯类，它们任选是乙氧基化的，以及聚氧丙烯- 聚氧乙烯嵌段共聚物，特别是普罗尼克(Pluronic)产品，尤其是L121。参见 Hunter等人，The Theory and Practical Application of Adjuvants(编辑 Stewart-Tull，D.E.S.)。John Wiley and Sons，NY，第51-94页(1995)和Todd等 人，Vaccine 15:564-570(1997)。
例如，有可能使用由M.Powell及M.Newman编写的＂Vaccine Design， The Subunit and Adjuvant Approach＂，Plenum Press，1995的第147页中描述的 SPT乳液，及在同一本书的第183页中描述的乳液MF59。
佐剂的另一例子是这样的化合物，其是选自丙烯酸或甲基丙烯酸之聚 合物和顺丁烯二酸酐与链烯基衍生物之共聚物的化合物。有利的佐剂化合 物是丙烯酸或甲基丙烯酸的交联的聚合物，尤其与糖类或多元醇的聚链烯 基醚交联的聚合物。这些化合物被叫做卡波姆(carbomer)(Phameuropa第8 册，第2期，1996年6月)。本领域技术人员还可参考美国专利第2,909,462 号，其描述这类丙烯酸聚合物，与具有至少3个羟基基团的聚羟基化的化 合物交联，更优选不超过8个，至少三个羟基的氢原子被具有至少2个碳 原子的不饱和脂肪族基团取代。优选的基团是含有从2至4个碳原子的那 些，例如乙烯基、烯丙基和其它烯族不饱和基团。不饱和基团本身可含有 其它的取代基，如甲基。以卡巴普(Carbopol)之名市售的产品(BF Goodrich， Ohio，USA)是特别适合的。它们与烯丙基蔗糖或烯丙基季戊四醇交联。其中， 可例举卡巴普974P、934P和971P。最优选的是使用卡巴普971P。在顺丁 烯二酸酐和链烯衍生物的共聚物中，共聚物EMA(Monsanto)是顺丁烯二酸 酐与乙烯的共聚物。这些聚合物溶解于水中，会产生酸性溶液，其将被中 和，优选中和至生理pH，以便得到一种佐剂溶液，免疫原性组合物、免疫 学组合物或疫苗组合物本身将加入该佐剂溶液中。
更多适当的佐剂包括，但不限于RIBI佐剂系统(RibiInc.)、嵌段共聚物 (CytRx，Atlanta GA)、SAF-M(Chiron，Emeryville CA)、单磷酰基脂质A、阿 夫立定(Avridine)脂质-胺佐剂、得自大肠杆菌的热-不稳定之肠毒素(重组或 其它的)、霍乱毒素、IMS1314或胞壁酰基二肽等等。
优选的是，以每个剂量大约100微克到大约10毫克的量加入佐剂。更 优选地，以每个剂量大约100微克到大约10毫克的量加入佐剂。甚至更优 选地，以每个剂量大约500微克到大约5毫克的量加入佐剂。甚至更优选 地，以每个剂量大约750微克到大约2.5毫克的量加入佐剂。最优选的是， 以每个剂量大约1毫克的量加入佐剂。
因此，根据更进一步的方面，制备诱发对抗PCV2之免疫反应的抗原性 组合物，例如疫苗的方法，包括i)制备并回收PCV2 ORF2蛋白质，并ii)将 其与适当之佐剂混合。优选的是，该佐剂为卡巴普971P。更优选地，以每 个剂量大约500微克到大约5毫克的量，更优选以每个剂量大约750微克 到大约2.5毫克的量，最优选的是每个剂量大约1毫克的量加入卡巴普971P。 优选的是，过程步骤i)包括如对制备和回收PCV2 ORF2描述的过程步骤。 例如，在该方法的优选形式中，在转移载体中获得包括PCV2 ORF2 DNA 的构建体。上文描述了适当的转移载体和制备它们的方法。任选地，该方 法可包括在将ORF2克隆到转移载体内之前，通过PCR从PCV2株系扩增 ORF2的步骤。优选的可读框序列、Kozak′s序列、3′EcoR1位点序列、重组 蛋白质序列、转染的构建体序列、培养基、细胞和病毒均如同在先前方法 中描述的。该方法的另一任选步骤包括将经扩增的PCV2 ORF2 DNA克隆 到第一个载体内，从该第一个载体中切下ORF2 DNA，并使用该切下的 PCV2 ORF2 DNA进行克隆到转移载体内。和其它方法一样，优选是在用经 转染的杆状病毒感染细胞之后，等待至少5天，然后才从上清液中回收重 组ORF2蛋白质。优选的是，该方法的回收步骤还包括分离培养基与细胞和 细胞碎屑的步骤。这可利用各种方式进行，但为了容易及便利，优选是通 过孔大小从大约0.45μM至大约1.0μM的滤器过滤细胞、细胞碎屑和生长 培养基。最后，对该方法而言，优选在组合物中混合回收之重组PCV2 ORF2 蛋白质之前，包括病毒失活化步骤。这可利用各种方式进行，但在本发明 的实施中优选是使用BEI。
因此，根据更进一步的方面，该方法包括下列步骤：i)在体外扩增PCV2 ORF2 DNA，其中修饰该PCV2 ORF2 DNA的侧翼序列，ii)将经扩增之PCV2 ORF2 DNA克隆到转移载体内；并iii)将该转移载体或其含有重组PCV2 ORF2 DNA的部分转染到病毒载体内，产生重组的病毒载体，iv)以该转染 病毒感染在培养基中的细胞；v)使该转染的病毒从PCV2 ORF2表达重组蛋 白质；vi)分离细胞与上清液；vii)从上清液中回收已表达的PCV2 ORF2蛋 白质；viii)使该重组病毒载体失活，优选的是在大约1至大约20mM BEI 的存在下，优选是在大约5mM BEI的存在下；ix)加入等量的能中和溶液中 失活剂的中和剂，当失活剂为BEI时，优选的是加入硫代硫酸钠溶液至大 约1到大约20mM，更优选大约5mM的终浓度；和x)加入适量的佐剂， 优选的是加入卡巴普，更优选卡巴普971P，甚至更优选以上述的量(例如， 每个剂量大约500微克至大约5毫克，更优选以每个剂量大约750微克到 大约2.5毫克的量，最优选的是以每个剂量大约1毫克的量)。
此外，组合物还可包括一种或多种可药用载体。当在本文中使用时， “可药用载体”包括任何和所有的溶剂、分散介质、包衣(coatings)、稳定 剂、稀释剂、防腐剂、抗细菌剂和抗真菌剂、等张剂、延迟吸收剂等。最 优选的是，本文提供的组合物含有下列各项：从在体外培养之细胞的上清 液中回收的PCV2 ORF2蛋白质，其中以含有PCV2 ORF2 DNA并表达PCV2 ORF2蛋白质的重组病毒载体感染该细胞，且其中以大约2至大约8mM BEI 处理该细胞培养物，优选是以大约5mM BEI使病毒载体失活；和相等浓度 的中和剂，优选是硫代硫酸钠溶液，至大约2大约8mM的终浓度，优选的 是大约5mM；卡巴普，更优选卡巴普971P，优选是以每个剂量大约500 微克到大约5毫克的量，甚至更优选以每个剂量大约750微克到大约2.5毫 克的量，最优选的是以每个剂量大约1毫克的量；以及生理盐水，优选以 大约50至大约90％(体积/体积)的量，更优选大约60至80％(体积/体 积)，甚至更优选大约70％(体积/体积)。
因此，更进一步的方面涉及制备诱发对抗PCV2之免疫反应的抗原组合 物，例如疫苗的方法，包括下列步骤：i)在体外扩增PCV2 ORF2 DNA，其 中修饰该PCV2 ORF2 DNA的侧翼序列，ii)将经扩增之PCV2 ORF2 DNA克 隆到转移载体内；并iii)将该转移载体或其含有重组PCV2 ORF2 DNA的部 分转染到病毒载体内，产生重组的病毒载体，iv)以该转染病毒感染在培养 基中的细胞；v)使该经转染的病毒从PCV2 ORF2表达重组蛋白质；vi)分离 细胞与上清液；vii)从上清液中回收已表达的PCV2 ORF2蛋白质；viii)使该 重组病毒载体失活，优选的是在大约2至大约20mM BEI的存在下，优选 是在大约5mM BEI的存在下；ix)加入等量的中和剂，中和溶液中的失活剂， 当失活剂为BEI时，优选的是加入硫代硫酸钠溶液至大约0.5到大约20mM 之终浓度，更优选大约5mM；x)加入适量的佐剂，优选的是加入卡巴普， 更优选卡巴普971P，甚至更优选以上述的量(例如，每个剂量大约500微克 至大约5毫克，更优选以每个剂量大约750微克到大约2.5毫克的量，最优 选的是以每个剂量大约1毫克的量)；并xi)加入生理盐水，优选的是以大约 50至大约90％(体积/体积)的量，更优选大约60至80％(体积/体积)，甚至更 优选大约70％(体积/体积)。该方法还可任选包括加入保护剂。当在本文中 使用保护剂时，意指抗微生物的活性剂，例如庆大霉素、硫柳汞等等。特 别是对于制备多-剂量组合物而言，优选加入保护剂。那些抗微生物的活性 剂添加的浓度可以有效防止感兴趣的组合物被任何微生物污染，或抑制任 何微生物在感兴趣的组合物中的生长。
再者，该方法还可包括加入任何稳定剂，例如糖类(saccharides)、海藻 糖、甘露糖醇、蔗糖等等，以便增加和/或维持产物的保质期。然而，已经 意外地发现，在不加任何其它稳定剂的条件下，所得的配制剂在至少24个 月的时间内是免疫学上有效的。
本发明更进一步之方面涉及由上述方法所得的产物。具体地，本发明 涉及包括重组表达之PCV2 ORF2蛋白质的物质组合物。此外，本发明还涉 及包括从昆虫细胞培养物之上清液中回收的重组表达的PCV2 ORF2蛋白质 的物质组合物。再者，本发明还涉及包括从昆虫细胞培养物之上清液中回 收的重组表达之PCV2 ORF2蛋白质之物质的组合物。优选的是，该物质之 组合物还包括适合使病毒载体失活的制剂。优选的是，该失活剂为BEI。此 外，本发明还涉及一种物质组合物，包括从昆虫细胞培养物之上清液中回 收的重组表达的PCV2 ORF2蛋白质，并包括适合使病毒载体失活的试剂， 优选是BEI，以及中和该失活剂的中和剂。优选的是，当使用BEI作为失活 剂时，该中和剂是硫代硫酸钠。
在本发明另一个方面中，提供一种免疫组合物，它诱导免疫反应，更 优选的是，它赋予对抗PCV2感染的临床体征的保护性免疫力。该组合物通 常包括由PCV2的可读框2(ORF2)表达的多肽或其片段，作为该组合物的 抗原性组分。
在本文中用来制备组合物，及用于本文提供的方法中的“PCV2 ORF2 DNA和蛋白质”，是在PCV2分离株中的一个高度保守的域，因此，任何 PCV2 ORF2作为本文中使用的PCV ORF2 DNA和/或多肽的来源都将是有 效的。优选的PCV2 ORF2蛋白质是SEQ IDNO:11所示的蛋白质。优选的 PCV2 ORF2多肽是在本文中以SEQ ID NO:5提供的，但本领域技术人员了 解该序列在序列同源性上可以有多达6-10％的改变，而仍保留抗原性特征使 其能够用于免疫组合物中。免疫组合物的抗原性特征，可通过例如由实施 例4提供之攻毒实验来评估。此外，若与由SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4 之多核苷酸序列编码的PCV2 ORF2蛋白质相比较，经过修饰的抗原能赋予 至少70％，优选的是80％，更优选90％保护性免疫力，则该经修饰抗原的 抗原性特征是被保留的。当在本文中使用＂免疫原性组合物＂时，意指PCV2 ORF2蛋白质在宿主中诱发了＂免疫反应＂，该反应为对PCV2 ORF2蛋白质 之细胞和/或抗体介导的免疫反应。优选的是，该免疫原性组合物能够赋予 对抗PCV2感染，以及与其相关之临床体征的保护性免疫力。在某些形式中， 使用PCV2 ORF2蛋白质的免疫原性部分作为组合物中的抗原性组分。当在 本文中使用＂免疫原性部分＂一词时，意指PCV2 ORF2蛋白质和/或多核苷酸 各自的截短的和/或取代的形式，或者片段。优选的是，这类截短和/或取代 的形式或片段，将包括来自全长ORF2多肽的至少6个邻接氨基酸。更优选， 截短和/或取代的形式或片段将具有来自全长ORF2多肽的至少10个，更优 选至少15个，而甚至更优选至少19个邻接氨基酸。就这一点，在本文中 提供了两个优选的序列，即SEQ ID NO:9和10。进一步应当了解，这类序 列可能是更大的片段或截短形式的一部分。在本文中提供之优选PCV2 ORF2多肽是由SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4之核苷酸序列编码的。但本领 域技术人员还了解，该序列在序列同源性上多达6-20％的改变而仍保留抗原 性特征，使其得以在免疫组合物中有用。在某些形式中，使用ORF2之截短 或取代形式或片段作为组合物中的抗原性组分。优选的是，这类截短或取 代形式或片段将包括来自全长ORF2核苷酸序列，例如SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4的至少18个邻接核苷酸。更优选的，该截短或取代形式或片段将 具有来自全长ORF2核苷酸序列，例如SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4的至 少30个，更优选至少45个，甚至更优选至少57个邻接核苷酸。
在本领域中所知的＂序列同一性＂，意指在两个或多个多肽序列或两个或 多个多核苷酸序列之间的一种关系，即参考序列和待与该参考序列进行比 较的给定序列。序列同一性是这样确定的：将给定序列与参考序列进行最 优比对以产生最高的序列相似度(由各条序列之间的匹配所决定)，然后将给 定序列与参考序列进行比较。当进行这类排列时，序列同一性是以位置-对- 位置为基础来确认的，例如，若在某个位置上的核苷酸或氨基酸残基是相 同的，则序列在该特定位点是＂同一＂的。然后将这样的位置的总数除以参考 序列中核苷酸或残基的总数，得到百分比序列同一性。可由已知的方法迅 速地计算出序列同一性，所述方法包括但不限于在计算机化分子生物学 (Computational Molecular Biology)，Lesk，A.N.，编辑，Oxford University Press， New York(1988)，Biocomputing:Informatics and Genome Projects，Smith，D.W. 编辑，Academic Press，New York(1993)；Computer Analysis of Sequence Data)， 第I部，Griffin，A.M.和Griffin，H.G.编辑，Humana Press，New Jersey(1994)； Sequence Analysis in Molecular Biology)，vonHeinge，G.，Academic Press(1987)；Sequence Analysis Primer，Gribskov，M.和Devereux，J.编辑，M. Stockton Press，New York(1991)；以及Carillo，H.和Lipman，D.，SIAM J. Applied Math.，48:1073(1988)中描述的那些，将其教导以提述的方式并入本 文中。设计确定序列同一性的优选方法使得在受试序列之间得到最大的匹 配。将确定序列同一性的方法编码成在可公开获得的计算机程序，其确定 所给序列之间的序列同一性。这类程序的实例包括，但不限于GCG程序包 (Devereux，J.编辑，Nucleic Acids Research，12(1):387(1984))、BLASTP、 BLASTN和FASTA(Altschul，S.F.等人，J.Molec.Biol.，215:403-410(1990)。 可公开获自NCBI和其它来源的BLASTX程序(BLAST手册，Altschul，S.等 人，NCVI NLM NIH Bethesda，MD 20894，Altschul，S.F.等人，J.Molec.Biol.， 215:403-410(1990)，将其教导以提述的方式并入本文中)。这些程序使用缺 省的缺口权重将序列适切地排列，以便在所给予序列和参考序列之间产生 最高程度的序列同一性。举例来说，具有与参考核苷酸序列有至少例如 85％，更优选90％，甚至更优选95％的＂序列同一性＂之核苷酸序列的多核苷 酸，意在表示除了所述给定多核苷酸序列可能相对于参考核苷酸序列的每 100个核苷酸含有最多15个，优选最多10个，更优选最多5个点突变之外， 所述给定多核苷酸的核苷酸序列与参考序列是相同的。换句话说，在对于 参考核苷酸序列具有至少有85％，更优选90％，甚至更优选95％同一性之 核苷酸序列的多核苷酸中，在参考序列中有最多15％，更优选10％，甚至 更优选5％的核苷酸可能被删除或被其它核苷酸取代，或可能有数目占参考 序列之核苷酸总数的最多15％，更优选10％，甚至更优选5％的核苷酸被插 入该参考序列中。参考序列的这些突变可发生在参考核苷酸序列的5′或3′ 端位点，或在这些末端位点之间的任何地方，或者在个别地散在于参考序 列中的核苷酸之间，或在参考序列内形成一个或多个邻接群体。同样地， 具有与参考氨基酸序列有至少例如85％，更优选90％，甚至更优选95％序 列同一性之所给氨基酸序列的多肽，意在表示除了给定的多肽序列可能相 对于参考氨基酸序列的每100个氨基酸包含最多15个，优选最多10个， 更优选最多5个氨基酸改变之外，给定的多肽的氨基酸序列与参考序列是 相同的。换言之，为获得具有与参考氨基酸序列的至少85％，优选90％， 甚至更优选95％的序列同一性的给定多肽序列，可将参考序列中的至多 15％，优选至多10％，甚至更优选至多5％的氨基酸残基删除或用另一氨基 酸取代，或者可以向参考序列中插入数目占参考序列氨基酸残基总数的至 多15％，优选至多10％，甚至更优选至多5％的氨基酸。参考序列的这些改 变可发生于参考氨基酸序列的氨基末端或羧基末端位置处或这些末端位置 之间的任何地方，或者个别地散布于参考序列的残基间，或者散布成参考 序列内一个或多个邻接群体。优选地，不一致的残基位置是通过保守氨基 酸取代而相异的。然而，当测定序列同一性时，保守取代不算作匹配。
本文中使用的＂序列同源性＂是指一种测定两个序列的相关性的方法。为 测定序列同源性，将两个或两个以上序列最优比对，必要时引入缺口。然 而，与＂序列同一性＂相比，当测定序列同源性时，将保守氨基酸取代视为匹 配。换言之，为获得与参考序列具有95％序列同源性的多肽或多核苷酸， 参考序列中的85％，优选90％，甚至更优选95％的氨基酸残基或核苷酸必 须与另一氨基酸或核苷酸匹配或与另一氨基酸或核苷酸构成保守取代，或 可向参考序列中插入数目占参考序列氨基酸残基或核苷酸总数(不包括保守 取代)的至多15％，优选至多10％，甚至更优选至多5％的氨基酸或核苷酸。 优选地，同源序列包含至少一段50个，甚至更优选至少100个，甚至更优 选至少250个，甚至更优选至少500个核苷酸。
＂保守取代＂是指氨基酸残基或核苷酸被具有类似特征或性质(包括大 小、疏水性等)的另一氨基酸残基或核苷酸取代，使得总体功能性不发生显 著变化。
＂经分离的＂意指＂通过人手＂而与其天然状态有所改变，即若其出现在自 然界，则其已经改变和/或从其原始环境中移出。例如，当术语用于本文中 时，天然存在于活有机体中的多核苷酸或多肽不是经＂分离＂的，但相同的多 核苷酸或多肽与其天然状态的共存物质分开后，则是经“分离”的。
由此，本发明更进一步的方面涉及可有效降低与PCV2感染相关之临床 症状的严重性的免疫原性组合物，其包含PCV2 ORF2蛋白质。优选的是， 该PCV2 ORF2蛋白质是上述那些中的任一个。优选的是，该PCV2 ORF2 蛋白质为
i)包括SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10或 SEQ ID NO:11之序列的多肽；
ii)与i)的多肽至少80％同源的任何多肽；
iii)i)和/或ii)的多肽的任何免疫原性部分；
iv)iii)的免疫原性部分，包括SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:9、SEQ ID NO:10或SEQ ID NO:11之序列中所含有的至少10个邻接氨 基酸，
v)由包括SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4之序列的DNA编码的多肽，
vi)由与v)之多核苷酸至少80％同源的多核苷酸编码的任何多肽，
vii)由v)和/或vi)之多核苷酸编码之多肽的任何免疫原性部分，
viii)vii)之免疫原性部分，其中编码该免疫原性部分的多核苷酸包括 SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4之序列中所含有的至少30个邻接核苷酸。
优选的是，那些免疫原性部分中任一个都将具有由SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4之序列编码之PCV2 ORF2蛋白质的免疫原性特征。
根据另一方面，在免疫学组合物中提供PCV2 ORF2蛋白，其中PCV2 ORF2蛋白的抗原包含水平(antigen inclusion level)可有效用于诱发所需的免 疫反应，即降低由PCV2感染的发生率，减轻PCV2感染的严重性，或预防 由PCV2感染所致的一或多种临床体征。优选地，PCV2 ORF2蛋白包含水 平为每毫升最终免疫原性组合物至少0.2μg抗原(μg/ml)，更优选为约0.2 μg/ml至约400μg/ml，更优选为约0.3μg/ml至约200μg/ml，甚至更优选为 约0.35μg/ml至约100μg/ml，更优选为约0.4μg/ml至约50μg/ml，更优选 为约0.45μg/ml至约30μg/ml，更优选为约0.6μg/ml至约15μg/ml，甚至 更优选为约0.75μg/ml至约8μg/ml，甚至更优选为约1.0μg/ml至约6μg/ml， 更优选为约1.3μg/ml至约3.0μg/ml，甚至更优选为约1.4μg/ml至约2.5 μg/ml，甚至更优选为约1.5μg/ml至约2.0μg/ml，且最优选为约1.6μg/ml。
根据另一方面，ORF2抗原包含水平为每个剂量最终抗原组合物至少 0.2/μg如上所描述的PCV2 ORF2蛋白(μg/剂)，更优选为约0.2μg/剂至约400 μg/剂，更优选为约0.3μg/剂至约200μg/剂，甚至更优选为约0.35μg/剂至 约100μg/剂，更优选为约0.4μg/剂至约50μg/剂，更优选为约0.45μg/剂至 约30μg/剂，更优选为约0.6μg/剂至约15μg/剂，甚至更优选为约0.75μg/ 剂至约8μg/剂，甚至更优选为约1.0μg/剂至约6μg/剂，更优选为约1.3μg/ 剂至约3.0μg/剂，甚至更优选为约1.4μg/剂至约2.5μg/剂，甚至更优选为 约1.5μg/剂至约2.0μg/剂，且最优选为约1.6μg/剂。
用于根据本发明的免疫原性组合物中的PCV2 ORF2多肽可以用任何方 式获得，包括PCV2 ORF2的分离及纯化、标准蛋白质合成及重组方法。用 于获得PCV2 ORF2多肽的优选方法在美国专利申请第11/034,797号中提 供，其教导及内容以提述的方式并入本文中。简言之，用含有PCV2 ORF2 DNA编码序列的重组病毒载体感染易感细胞，由重组病毒表达PCV2 ORF2 多肽，通过过滤从上清液回收所表达的PCV2 ORF2多肽，并用任何已知的 方法，优选使用二元乙撑亚胺，使其失活化，随后将其中和以终止失活化 过程。
因此，根据更进一步的方面，该免疫原性组合物包括i)任何上述的PCV2 ORF2蛋白质，优选具有上文所述的浓度，以及ii)表达该PCV2 ORF2蛋白 质的病毒载体(优选是重组杆状病毒)的至少一部分。此外，根据更进一步的 方面，该免疫原性组合物包括i)任何上述的PCV2 ORF2蛋白质，优选具有 上文所述的浓度，ii)表达该PCV2 ORF2蛋白质的病毒载体(优选是重组杆状 病毒)的至少一部分，以及iii)一部分的细胞培养物上清液。
根据PCV2 ORF2蛋白质之产生和回收过程的一个具体实施方案，通过 孔尺寸优选在大约0.45到1微米之间的膜来过滤细胞培养物上清液。因此， 更进一步的方面涉及这样的免疫原性组合物，其包括i)任何上述的PCV2 ORF2蛋白质，优选是以上述的浓度，ii)表达该PCV2 ORF2蛋白质的病毒 载体(优选是重组杆状病毒)的至少一部分，以及iii)一部分细胞培养物；其 中大约90％的组分具有小于1微米的尺寸。
根据更进一步的方面，本发明涉及免疫原性组合物，其包括i)任何上述 的PCV2 ORF2蛋白质，优选是以上述的浓度，ii)至少一部分表达该PCV2 ORF2蛋白质的病毒载体，iii)一部分细胞培养物，以及iv)使重组病毒载体 失活的失活剂，优选是BEI，其中大约90％的组分i)至iii)具有小于1微米 的尺寸。优选的是，BEI以有效使杆状病毒失活的浓度存在。有效浓度在上 文已有描述。
根据更进一步的方面，本发明涉及免疫原性组合物，其包括i)任何上述 的PCV2 ORF2蛋白质，优选是以上述的浓度，ii)至少一部分表达该PCV2 ORF2蛋白质的病毒载体，iii)一部分细胞培养物，iv)使重组病毒载体失活 的失活剂，优选是BEI，以及v)用于中止由该失活剂介导的失活化作用的中 和剂，其中大约90％的组分i)至iii)具有小于1微米的尺寸。优选的是，若 失活剂是BEI，则该组合物包括与BEI等量的硫代硫酸钠。
将多肽掺入可施用于对PCV2感染敏感的动物的组合物中。组合物的优 选形式亦可包括本领域技术人员已知的额外组分(亦参见Remington′s Pharmaceutical Sciences(1990)。第18版，Mack Publ.，Easton)。另外，该组 合物可包括一或多种兽医学上可接受的载体。本文中使用的＂兽医学上可接 受的载体＂包括以下载体中的任一项及全部:溶剂、分散介质、包衣(coatings)、 佐剂、稳定剂、稀释剂、防腐剂、抗细菌剂及抗真菌剂、等张剂、吸附延 迟剂等。在一个优选实施方式中，免疫原性组合物包含本文提供的PCV2 ORF2蛋白，优选具有上文所述的浓度，其与佐剂[优选卡巴普]及生理盐水 混合。
在优选的具体实施方案中，免疫原性组合物包括本文提供的PCV2 ORF2蛋白质，优选具有上文所述的浓度，作为抗原性组分，将其与佐剂， 优选是卡巴普，以及生理盐水混合。
本领域技术人员应了解用于本文中的组合物可包括已知的可注射生理 学可接受无菌溶液。为了制备非经肠注射或灌注的即用溶液，可以容易地 获得含水等张溶液诸如盐水或相应的血浆蛋白质溶液。另外，本发明的免 疫原性组合物及疫苗组合物可包括稀释剂、等张剂、稳定剂或佐剂。稀释 剂可包括水、盐水、右旋糖、乙醇、甘油等。等张剂典型地可包括氯化钠、 右旋糖、甘露糖醇、山梨糖醇及乳糖。稳定剂典型地包括白蛋白及乙二胺 四乙酸的碱金属盐。适当的佐剂则是上述的那些。最优选是使用卡巴普， 特别是卡巴普971P，优选是以上述的量(例如每个剂量大约500微克到大约 5毫克，更优选以每个剂量大约750微克到大约2.5毫克，最优选的是以每 个剂量大约1毫克的量)使用。
因此，本发明还涉及免疫原性组合物，其包括i)任何上述的PCV2 ORF2 蛋白质，优选具有上述的浓度，ii)至少一部分表达该PCV2 ORF2蛋白质的 病毒载体，iii)一部分细胞培养物，iv)使重组病毒载体失活的失活剂，优选 是BEI，以及v)用于中止由该失活剂介导之失活作用的中和剂，优选是与 BEI等量的硫代硫酸钠；以及vi)适当的佐剂，优选是具有上述量的卡巴普； 其中大约90％的组分i)至iii)具有小于1微米的尺寸。根据更进一步的方面， 该免疫原性组合物还包括可药用的盐类，优选是生理学可接受的浓度的磷 酸盐。优选的是，将该免疫原性组合物的pH值调整到生理pH值，也就是 在大约6.5到7.5之间。
因此，本发明还涉及免疫原性组合物，其每1mL包括i)至少1.6微克 上述的PCV2 ORF2蛋白质，ii)至少一部分表达该PCV2 ORF2蛋白质的杆 状病毒，iii)一部分细胞培养物，iv)大约2到大约8mM的BEI，v)与BEI 等量的硫代硫酸钠；以及vi)大约1毫克的卡巴普971，以及vii)生理学可接 受浓度的磷酸盐；其中大约90％的组分i)至iii)具有小于1微米的尺寸，且 该免疫原性组合物的pH值被调整到大约6.5至7.5。
免疫原性组合物可进一步包括一或多种其它免疫调节剂，诸如白介素、 干扰素或其它细胞因子。免疫原性组合物亦可包括庆大霉素(Gentamicin)及 硫柳汞(Merthiolate)。尽管适用于本发明的语境下的佐剂及添加剂的量及浓 度可容易地由本领域技术人员决定，但本发明涵盖这样的组合物，其包含 约50μg至约2000μg，优选约250μg/ml剂量疫苗组合物的佐剂。在一个 实施方案中，本文中使用的免疫原性组合物意图涵盖还指包含约1μg/ml至 约60μg/ml的抗生素，更优选少于约30μg/ml抗生素的疫苗组合物。
因此，本发明还涉及免疫原性组合物，其包括i)任何上述的PCV2 ORF2 蛋白质，优选具有上述的浓度，ii)至少一部分表达该PCV2 ORF2蛋白质的 病毒载体，iii)一部分细胞培养物，iv)使重组病毒载体失活的失活剂，优选 是BEI，以及v)用于中止由该失活剂介导的失活化作用的中和剂，优选是与 BEI等量的硫代硫酸钠；vi)适当的佐剂，优选是上文所述的量的卡巴普971， vii)可药用浓度的生理盐水缓冲液，优选是磷酸盐，以及viii)抗微生物活性 剂；其中大约90％的组分i)至iii)具有小于1微米的尺寸。
意外地发现，本文提供的免疫原性组合物在24个月的期间内是高度稳 定的。还发现本文提供的免疫原性组合物，包括本文提供的表达PCV2ORF2 蛋白质的重组杆状病毒，在降低与PCV2感染相关之临床体征上是极为有效 的。意外地发现，包括本文提供的表达PCV2 ORF2蛋白质之重组杆状病毒 的免疫原性组合物，比包含失活形式的完整PCV2病毒或经分离的病毒 PCV2 ORF2抗原的免疫原性组合物更有效。具体而言，意外地发现了表达 PCV2 ORF2蛋白质之重组杆状病毒在极低浓度下(指最多0.25微克/剂量的 浓度)是有效的。PCV2 ORF2蛋白质的这种令人意外的高免疫原性潜能，可 通过加入卡巴普而进一步增加。
更进一步之方面涉及包括至少一个剂量的本文提供的PCV2 ORF2蛋白 质免疫原性组合物的容器，其中一个剂量包括至少2微克PCV2 ORF2蛋白 质，优选的是2至16微克PCV2 ORF2蛋白质。该容器可包括从1至250 个剂量的免疫原性组合物，优选的是其含有1、10、25、50、100、150、200 或250个剂量的PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组合物。优选的是，每个容器 包括一个以上剂量的PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组合物，还包括抗微生物 活性剂。那些试剂为例如抗生素，包括庆大霉素和硫柳汞，等等。因此， 本发明一方面涉及包括从1到250个剂量的PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组 合物的容器，其中一个剂量包括至少2微克PCV2 ORF2蛋白质和庆大霉素 和/或硫柳汞，优选是从大约1μg/ml到大约60μg/ml的抗生素，优选的是 低于大约30μg/ml。
更进一步的方面涉及一种试剂盒，其包括上述的任何容器，以及说明 手册，包括有关肌肉内施用至少一个剂量的PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组 合物至小猪内以减少与PCV2感染相关之临床症状的严重性的信息。此外， 根据更进一步的方面，该说明手册包括有关第二次或更多次施用至少一个 剂量的PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组合物的信息，其中第二次施用或任何 更多次施用与最初或任何前次施用相隔至少14天。优选的是，该说明手册 还包括施用免疫刺激物的信息。优选的是，该免疫刺激物应施用至少两次。 在免疫刺激物的第一和第二次施用，或任何更多次施用之间，优选有至少3 天，更优选至少5天，甚至更优选至少7天。优选的是，在超过最初施用 PCV2 ORF2蛋白质之免疫原性组合物至少10天，更优选15天，甚至更优 选20天，甚至更优选至少22天，给予免疫刺激物。优选的免疫刺激物是 例如钥孔血蓝蛋白(KLH)，优选是以不完全弗氏(Freund′s)佐剂乳化的钥孔血 蓝蛋白(KLH/ICFA)。然而，当然可使用本领域技术人员已知的任何其它的 免疫刺激物。当在本文中使用＂免疫刺激物＂时，意指任何可诱发普通免疫反 应，而优选不引发或增加特异的免疫反应，例如对抗特定病原体的免疫反 应的试剂或组合物。说明书还进一步教导以适当的剂量施用免疫刺激物。 再者，套组还可包括一容器，其包括至少一个剂量的免疫刺激物，优选是 一个剂量的KLH或KLH/ICFA。
此外，还已经意外地发现，通过施用IngelVac PRRS MLV疫苗，进一 步提高包含表达PCV2 ORF2蛋白质之重组杆状病毒的免疫原性组合物(优 选与卡巴普联用)的免疫原性潜能(参见实施例5)。当存在PRRS感染时， PCV2临床体征和疾病征候大大增加。然而，本文提供的免疫原性组合物和 疫苗接种策略，大大地减少了该影响，并且超出了预期。换句话说，当以 任何本文提供的PCV2 ORF2免疫原性组合物和Ingelvac PRRS MLV疫苗 (Boehringer Ingelheim)处理动物，优选是猪时，观察到了意想不到的协同效 果。
因此，本发明更进一步的方面涉及上文所述的试剂盒，包括本文提供 的PCV2 ORF2的免疫原性组合物和说明手册，其中该说明手册还包括与 PCV2 ORF2免疫原性组合物一起或者大约同时施用包括PRRS抗原，优选 佐剂化(adjuvanted)之PRRS抗原的免疫原性组合物的信息。该PRRS抗原优 选是PRRS MLV(Boehringer Ingelheim)。
本发明更进一步的方面还涉及试剂盒，其包括i)含有至少一个剂量的本 文提供的PCV2 ORF2的免疫原性组合物的容器，以及ii)含有包括PRRS抗 原，优选佐剂化(adjuvanted)的PRRS抗原之免疫原性组合物的容器。该PRRS 抗原优选是 PRRSMLV(Boehringer Ingelheim)。更优选的是，该试 剂盒还包括说明手册，其包括施用这两种药物组合物的信息。优选的是， 它包含在含有PRRS的组合物之前施用含有PCV2 ORF2之组合物的信息。
更进一步的方面，涉及任何本文提供的组合物在作为药物，优选的是 作为兽医药物，更优选作为疫苗的用途。再者，本发明还涉及任何在本文 中描述之组合物在制备药物中的用途，所述药物用于减轻与PCV2感染相关 之临床症状的严重性。优选的是，该药物用于预防PCV2感染，更优选在小 猪中预防PCV2感染。
更进一步的方面涉及(i)预防PCV2感染或再感染，或(ii)在个体中减少 或消除由PCV2引起之临床症状的方法，包括对需要的受试者施用任何本文 提供的免疫原性组合物。优选的是，该受试者是猪。优选的是，肌肉内施 用该免疫原性组合物。优选的是，施用一或两个剂量的免疫原性组合物， 其中一个剂量包括至少大约2微克PCV2 ORF2蛋白质，更优选大约2到大 约16微克，以及至少大约0.1到大约5毫克卡巴普，优选的是大约1毫克 卡巴普。更进一步的方面涉及如上文所述之治疗方法，其中第二次施用免 疫原性组合物。优选的是，第二次施用是利用相同的免疫原性组合物来进 行，优选具有相同量的PCV2 ORF2蛋白质。第二次施用优选也通过肌肉内 施用。优选的是，第二次施用与最初施用相隔至少14天，更优选相隔最初 施用至少4周。
根据更进一步的方面，治疗方法还包括施用免疫刺激物。优选的是， 施用该免疫刺激物至少两次。在免疫刺激物的第一和第二次投药之间优选 有至少3天，更优选至少5天，甚至更优选至少7天。优选的是，在最初 施用PCV2 ORF2蛋白质免疫原性组合物至少10天，更优选15天，甚至更 优选20天，甚至更优选至少22天之后施用免疫刺激物。优选的免疫刺激 物是例如钥孔血蓝蛋白(KLH)，优选是以不完全弗氏佐剂乳化的钥孔血蓝蛋 白(KLH/ICFA)。然而，可使用本领域技术人员已知的任何其它的免疫刺激 物。以适当的剂量施用免疫刺激物是在本领域技术人员的普通知识范围内。
根据更进一步的方面，上文所述的治疗方法还包括施用PRRS抗原。优 选的PRRS抗原为 PRRS MLV(B oehringer Ingelheim)。优选的是， 该PRRS抗原的施用在时间上晚于(temporally beyond)PCV2 ORF2蛋白质免 疫原性组合物的施用。
根据更进一步的方面，本发明提供多价组合疫苗，其包括有效降低 PCV2感染之发生率或减轻其严重性的免疫学作用剂，以及至少一种具有对 抗其它在猪中引起疾病的生物的免疫原活性之组分。
具体地，有效降低PCV2感染之发生率或减轻其严重性的免疫学作用剂 为PCV2抗原。优选的是，该PCV2抗原是本文提供的PCV2 ORF2蛋白质， 或任何上述的包括PCV2 ORF2蛋白质的免疫原性组合物。
然而，应当理解，PCV2抗原还意指包含至少一种这样的抗原的物质组 合物：所述抗原当施用猪时，可诱导、刺激或提高对抗PCV2感染的免疫反 应。优选地，所述PCV2抗原是完整的PCV2病毒，优选为失活形式、活的 但经修饰的PCV2病毒或减毒的PCV2病毒、包含至少一个PCV2的免疫原 性氨基酸序列的嵌合病毒，包含至少一个PCV2的免疫原性氨基酸序列的任 何其它的多肽或组分。当在本文中使用＂免疫原性蛋白质＂、＂免疫原性多肽＂ 或＂免疫原性氨基酸序列＂等术语时，意指任何这样的氨基酸序列，其在宿主 中诱发对抗包含该免疫原性蛋白质、免疫原性多肽或免疫原性氨基酸序列 之病原体的免疫反应。当在本文中使用＂免疫原性蛋白质＂、＂免疫性原多肽＂ 或＂免疫原性氨基酸序列＂等术语时，包括任何蛋白质的全长序列、其类似物 或其免疫原性片段。＂免疫原性片段＂意指这样蛋白质的片段，它含有一个或 多个表位，因此能诱发对抗相关病原体的免疫反应。可使用本领域中已熟 知的许多表位定位技术中的任一种来确认这类片段。参见，例如Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology，第66册(Glenn E.Morris， 编辑，1996)Humana Press，Totowa，New Jersey。例如，可通过例如下面的方 法来确定线性表位：在固体支撑物上同时合成大量的肽，这些肽相当于蛋 白质分子的部分，并使这些肽与抗体反应，同时这些肽仍附接在支撑物上。 这类技术为本领域中已知的，并在例如美国专利第4,708,871号；Geysen等 人(1984)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81:3998-4002；Geysen等人(1986) Molec.Immunol.23:709-715中描述。同样的，通过确定氨基酸的空间构象， 例如通过x-射线结晶术和2-维核磁共振，迅速地鉴定构象表位。例如参见 上文Epitope Mapping Protocols。该定义中还包括合成抗原，例如多表位 (polyepitopes)、侧翼表位(flanking epitopes)，及其它重组抗原或合成得来的 抗原。例如参见Bergmann等人，(1993)Eur.J.Immunol.23:2777-2781； Bergmann等人，(1996)，J.Immunol.157:3242-3249；Suhrbier，A.(1997)， Immunol.and Cell Biol.75:402-408；Gardner等人，(1998)12th World AIDS Conference，Geneva，Switzerland，June28-July3，1998。。
根据更进一步的具体实施方案，该PCV-2抗原是 (Boehringer Ingelheim Vetmedica inc，St Joseph，MO，USA)、 (Merial SAS，Lyon，France)、CircoVent(Intervet Inc.，Millsboro，DE， USA)或Suvaxyn PCV-2(Fort Dodge Animal Health，Kansas City，KA， USA)。
对组合物或疫苗的＂免疫学或免疫反应＂是在宿主中产生出对抗感兴趣 的组合物或疫苗的细胞和/或抗体介导之免疫反应。通常，＂免疫反应＂包括 但不限于一种或多种下列效应：特异地针对感兴趣之组合物或疫苗中所含 的抗原的抗体、B细胞、T辅助细胞、抑制性T细胞，和/或细胞毒性T细 胞和/或yd T细胞的产生或激活。优选的是，宿主将展现出治疗性或预防性 的免疫反应，而得以提高对新感染的抵抗力，和/或降低疾病的临床严重性。 这样的保护作用将表现为与宿主感染相关的上述症状的减少或缺如。
优选的是，引起猪其它疾病之生物系选自下列所组成之群：大叶性肺 炎放线杆菌(Actinobacillus pleuopneumonia)(1)；腺病毒(2)；α病毒，如东 方马脑脊髓炎病毒(Easternequine encephalomyelitis viruses)(3)；支气管炎博 德特氏菌(Bordetella bronchiseptica)(4)；短螺旋体属菌种(Brachyspira spp.) (5)，优选的是猪痢疾短螺旋体(B.hyodyentheriae)(6)；结肠菌毛样短螺旋体 (B.piosicoli)(7)，猪布鲁氏菌(Brucella suis)，优选生物变型1、2和3(8)；经 典猪瘟病毒(classical swine fever virus)(9)；梭菌属菌种(Clostridium spp.) (10)，优选的是艰难梭菌(Cl.difficile)(11)、产气荚膜梭菌(Cl.perffingens)A、 B和C型(12)、诺氏梭菌(Cl.novyi)(13)、败毒梭菌(Cl.septicum)(14)、破伤 风梭菌(Cl.tetani)(15)；冠状病毒(Coronavirus)(16)，优选的是猪呼吸道冠状 病毒(Procine RespiratoryCorona virus)(17)；猪血虫体(Eperyhrozoonosis suis) (18)；猪红斑丹毒丝菌(19)；大肠杆菌(20)；副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis)，优选亚型1、7和14(21)；凝血性脑脊髓炎病毒(Hemagglutinating encephalomyelitis virus)(22)；日本脑炎病毒(23)；细胞内劳索尼亚氏菌 (Lawsonia intracellularis)(24)；钩端螺旋体属菌种(Leptospira spp.)(25)，优选 澳大利亚钩端螺旋体(Leptospira australis)(26)；犬钩端螺旋体(Leptospira canicola)(27)；流感伤寒钩端螺旋体(Leptospira grippotyphosa)(28)；出血黄 疸钩端螺旋体(Leptospira icterohaemorrhagicae)(29)；问号钩端螺旋体 (Leptospira interrogans)(30)；波摩那钩端螺旋体(Leptospira pomona)(31)；塔 拉索夫钩端螺旋体(Leptospira tarassovi)(32)；分枝杆菌属菌种 (Mycobacterium spp.)(33)，优选的是鸟分枝杆菌(M.avium)(34)、胞内分枝 杆菌(M.intracellulare)(35)和牛分枝杆菌(M.bovis)(36)；猪肺炎枝原体 (Mycoplasma hyopneumoniae)(37)；多杀巴斯德氏菌(Pasteurella multocida) (38)；猪巨细胞病毒(Porcine cytomegalovirus)(39)；猪细小病毒(Porcine Parvovirus)(40)；猪生殖与呼吸综合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome，PRRS)病毒(41)；假狂犬病病毒(Pseudorabies virus)(42)；轮状病 毒(Rotavirus)(43)；沙门氏菌属菌种(Salmonella spp.)(44)，优选的是鼠伤寒 沙门氏菌(S.thyhimurium)(45)和猪霍乱沙门氏菌(S.choleraesuis)(46)；猪葡 萄球菌(Staph.hyicus)(47)；葡萄球菌属菌种(Staphylococcus spp.)(48)，优选 的是链球菌属菌种(Streptococcus spp.)(49)，优选的是猪链球菌(Strep.suis) (50)；猪疱疹病毒(Swine herpes virus)(51)；猪流感病毒(Swine Influenza Virus) (52)；猪痘病毒(Swine pox virus)(53)；猪痘病毒(54)；水泡性口炎病毒 (Vesicular stomatitis virus)(55)；猪水疱疹病毒(Virus ofvesicular exanthema of swine)(56)；哈德焦钩端螺旋体(Leptospira Hardjo)(57)和/或猪关节液枝原体 (Mycoplasma hyosynoviae)(58)。
下文中任何关于猪病原体的提述，可以指称该病原体，例如猪肺炎枝 原体(M.Hyo)，或者可以指称该病原体后面()内的编号(可见上文)。例如， 在提述猪肺炎枝原体时，可指称“肺炎枝原体”或“(37)”。
因此，本发明涉及用来治疗和/或预防猪的组合疫苗，其包括降低PCV2 感染之发生率或减轻其严重性的免疫学作用剂，优选PCV2抗原，以及额外 的免疫学活性组分，所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/或预防由任 何猪病原体(1)、(2)、(3)、(4)、(5)、(6)、(7)、(8)、(9)、(10)、(11)、(12)、 (13)、(14)、(15)、(16)、(17)、(18)、(19)、(20)、(21)、(22)、(23)、(24)、(25)、 (26)、(27)、(28)、(29)、(30)、(31)、(32)、(33)、(34)、(35)、(36)、(37)、(38)、 (39)、(40)、(41)、(42)、(43)、(44)、(45)、(46)、(47)、(48)、(49)、(50)、(51)、 (52)、(53)、(54)、(55)、(56)、(57)和/或(58)引起的感染，或者是所述猪病原 体的免疫学活性组分。[组合1]。
当在本文中使用＂免疫学活性组分＂时，意指在施用该组分之动物中诱导 或刺激免疫反应的组分。根据优选的具体实施方案，该免疫反应系针对该 组分或包括该组分之微生物。根据更优选的具体实施方案，免疫学活性组 分是经减毒的微生物，包括经修饰的活病毒(MLV)、灭活的微生物，或至少 是微生物的免疫活性部分。
当在本文中使用＂微生物的免疫学活性部分＂时，意指微生物之含有蛋白 质、糖和/或糖蛋白的部分，其包括至少一种在施用该组分之动物中诱导或 刺激免疫反应的抗原。根据更优选的具体实施方案，该免疫反应系针对该 微生物的免疫学活性部分，或包括该免疫学活性部分的微生物。
优选的是，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/或预 防由猪病原体(41)引起的感染，或者是猪病原体(41)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(37)引起的感染，或者是猪病原体(37)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)引起的感染，或者是猪病原体(1)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(7)引起的感染，或者是猪病原体(7)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(24)引起的感染，或者是猪病原体(24)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(38)引起的感染，或者是猪病原体(38)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(21)引起的感染，或者是猪病原体(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(40)引起的感染，或者是猪病原体(40)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(2)引起的感染，或者是猪病原体(2)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(44)引起的感染，或者是猪病原体(44)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(50)引起的感染，或者是猪病原体(50)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(19)，优选(20)和/或(21)引起的感染，或者是猪病原体(19)， 优选(20)和/或(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(22)引起的感染，或者是猪病原体(22)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(41)和(37)引起的感染，或者是猪病原体(41)和(37)的免疫 学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)和(41)引起的感染，或者是猪病原体(1)和(41)的免疫学 活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)和(37)引起的感染，或者是猪病原体(1)和(37)的免疫学 活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)、(41)和(37)引起的感染，或者是猪病原体(1)、(41)和 (37)的免疫学活性组分。在优选的形式中，该组合以卡巴普佐剂化(adjuvanted with Carbopol)。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)和(21)引起的感染，或者是猪病原体(1)和(21)的免疫学 活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(21)和(41)引起的感染，或者是猪病原体(21)和(41)的免疫 学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(21)和(37)引起的感染，或者是猪病原体(21)和(37)的免疫 学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(21)和(38)引起的感染，或者是猪病原体(21)和(38)的免疫 学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(7)和(19)引起的感染，或者是猪病原体(7)和(19)的免疫学 活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(38)和(33)，更优选(34)、(35)和/或(36)引起的感染，或者 是猪病原体(38)和(33)，更优选(34)、(35)和/或(36)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，优选(50)和(21)引起的感染，或者是猪病原体(49)， 更优选(50)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，更优选(50)、(20)和(21)引起的感染，或者是猪病原 体(49)，更优选(50)、(20)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，优选(50)、(20)和(21)引起的感染，或者是猪病原体 (49)，优选(50)、(20)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，更优选(50)、(20)、(38)和(21)引起的感染，或者是 猪病原体(49)，更优选(50)、(20)、(38)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，优选(50)、(20)、(33)和(21)引起的感染，或者是猪 病原体(49)，优选(50)、(20)、(33)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(49)，优选(50)、(20)、(38)、(33)和(21)引起的感染，或 者是猪病原体(49)，优选(50)、(20)、(38)、(33)和(21)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(41)、(40)和(19)引起的感染，或者是猪病原体(41)、(40) 和(19)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(38)、(4)和(19)引起的感染，或者是猪病原体(38)、(4)和 (19)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(38)、(4)、(21)和(19)引起的感染，或者是猪病原体(38)、 (4)、(21)和(19)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(20)，更优选(20)、(31)和(38)引起的感染，或者是猪病原 体(20)、(31)和(38)的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(5)，优选(5)和(24)引起的感染，或者是猪病原体(5)和(24) 的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(1)，更优选(1)和(5)引起的感染，或者是猪病原体(1)和(5) 的免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(41)，优选(40)、(27)、(28)、(29)、(31)、(19)和(59)引起 的感染，或者是猪病原体(41)、(40)、(27)、(28)、(29)、(31)、(19)和(57)的 免疫学活性组分。
根据另一个方面，[组合1]的所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/ 或预防由猪病原体(6)，优选(6)、(19)、(38)和(58)引起的感染，或者是猪病 原体(1)和(5)的免疫学活性组分。
根据进一步的方面，组合疫苗的所述额外的免疫学活性组分选自： Ileitis， Ileitis FF， SC-54， SC-54 FF， ERY-ALC， APP ALC， AR4，HP-1， HPE-1， M.hyo， PRRS MLV，PRRS ATP， PRV-G1， PRRS PLE， PLE， TetguardTM， AD+E， Plus Parsius，(都来自Boehringer Ingelheim，St.Joseph，MO，USA)；Circovent，Porcilis Coli，Porcilis ERY+ PARVO，Porcilis Ery，Porcilis Glasser，Porcilis Parvo，Porcilis Porcoli DF， Porcilis APP，Porcilis AR-T，Porcilis AR-T DF，Porcilis Porcoli，Porcilis Porcoli Diluvac forte，Porcilis PRRS，Porcilis Porcol 5，Porcilis Aujeszky，Porcilis Begonia Diluvac，Porcilis Begonia I.D.A.L.，Porcilis Begonia Unisole，Porcilis M.hyo，Porcilis Atrinord，Myco BPM，Myco BPME，Myco ME，Myco M，Myco Once，Myco MEH， BPE， CTE 5000， CTSE，Score，Sow E II，Sow CE II，Sow TREC， CE，RCE， TREC， Pillmune， 与 II， Rota， RotamuneKV， Rota与 II， TGE/Rota， 与 TGE，MaGESTIC 7，MaGESTIC 8， MaGESTicTM与 7与 8与与 Il， 2，PRV-Begonia 与Dlluvac SC/ST，Strep Bac，Strep 与 II， Colisorb，Heptavac，Lambivac，Porcovac plus，Erysorb Parvo(都来自Intervet Inc.，Millsboro，DE，USA)；Hyoresp，Circovac，Neocolipor，Parvoruvac， Parvosuin，Progressis，Viraflu，Akipor 6.3，Jespur gl-，Jesflu gl-(都来自Merial LTD，Duluth，GA)；ER PLUS，ER ER ER B， PLUS B， PLUS，PRV，FARROWSUREB-PRV，FLUSURETM，FLUSURETM RTU， FLUSURETM/ER PLUS，FLUSURETM/ER BAC RTU， FLUSURETM/RESPISURE-/ER PLUS，FLUSURETM/RespiSure 1 BAC FLUSURETM/RESPISURE FLUSURETM/RESPISURE 1 FLUSURE/Farrowsure Plus， FLUSURE/Farrowsure Plus B， LT-C， LT， 4，Pneumosuis III，Stellamune One，Stellamune Uno，Stellamune Once，Stellamune Mono，Stellamune Mycoplasma，Respisure One，Respisure l Respisure 1 /ER Bac Enduracell T，Zylexis(原 名Baypamune)， 3， Leptoferm-5TMParvo-/Leptoferm- -Killed，PR-PR-Vac (都来自Pfizer Inc.，New York，NY，USA)；Suvaxyn MH One，Suvaxyn MH，Suvaxyn Mycoplasma，Suvaxyn Aujeszky Bartha+Diluent， Suvaxyn Aujeszky Bartha+o/w，Suvaxyn Aujeszky-Flu，Suvaxyn Aujeszky 783 +o/w，Suvaxyn Ery，Suvaxyn Flu，Suvaxyn M.hyo，Suvaxyn MH-One，Suvaxyn Parvo ST，Suvaxyn Parvo/E，Suvaxyn APP，Suvaxyn HPS，Suvaxyn MH/HPS，Suvaxyn MH，AR/T/E， EC-4， E， E-oral， PLE， PLE/PrV gpl-， LE+B， PLE+ B， PLE+B/PrV gpl-， SIV， SIV/Mh-one， P， PrV gpl-， PCV-2 One Shot(都来自Fort Dodge Animal Health，Overland Park，KS，USA(Wyeth)；M+ MaxiVac H1N1， H3N2，MaxiVac MaxiVac Excell 3， PNEU PNEU PNEU PRV/Marker PRV/Marker PRV/Marker FLU，RhusigenTM，Gletvax 6，Covexin 8，M+ PAC，Gletvax plus，(都来自Schering-Plough Animal Health Corporation，Kenilworth，NJ，USA)；AMERVAC-PRRS， AUSKIPRA-BK，AUSKIPRA-GN，COLISUIN-CL，COLISUIN-TP， ERYSIPRAVAC，GRIPORK，HIPRASUIS-MYPRAVAC SUIS， NEUMOSUIN，PARVOSUIN，PARVOSUIN-MR，PARVOSUIN-MR/AD， RINIPRAVAC-DT，SUIPRAVAC-PRRS，SUIPRAVAC-RC，TOXIPRA PLUS (都来自Laboratorios Hipra S.A.，Amer，Girona，Spain)；Clostricol，Coliporc Plus，Haeppovac，Per-C-Porc，Porciparvac，RESPIPORC ART+EP， RESPIPORC FLU，Respiporc M.HYO 1 SHOT，Rhusiovac， Rotlauf-Lebendimpfstoff，Salmoporc，Suisaloral，AK-vac MK35(都来自IDT Impfstoffwerk DessaTornau，Tornau，Germany)；Mypravac Suis，(Albrecht GmbH，Germany)；Haemo P，Parapleuro P，Parapleuro P+BE， FD，Rhini ShieldTM TX4，Prefarrow 9， Prefarrow Strep BCD， C， Ultra C 1300，Porcine 3+C，Porcine Pili ShieldPorcine Pili Shield 3，Ery Vac Oral，Ery ShieldTM+L5，PanSTARTM Ery， E，Parvo L5E，Parvo L5，Parvo PneumoSTAR SIV，PneumoSTARTMMyco，Lepto ShieldTM 5，Myco 2，Salmo Live， Amitox Perfingens Type A Toxoid(都来自Novartis Animal Health， Basel，Switzerland)；Nitro-Sal(Akro)；或任何包含在上述组合物中的抗原。 或者，当PCV2抗原已存在于任何那些疫苗中时，将(i)如本文所述的PCV 抗原添加到这些组合物/抗原的任一者中，或(ii)将这些组合物/抗原的任一者 中的PCV抗原用本文所述的PCV2抗原替代。
根据进一步的方面，组合疫苗的所述额外的免疫学活性组分选自：
Ileitis， Ileitis FF， SC-54， SC-54 FF， ERY-ALC， APP ALC， AR4， HP-1， HPE-1，M.hyo， PRRS MLV， PRRS ATP， PRV-G1， PRRS PLE， PLE， TetguardTM， AD+E，Plus Parsius，(都来自Boehringer Ingelheim，St.Joseph，MO，USA)；Circovent，Porcilis Coli，Porcilis ERY+ PARVO，Porcilis Ery，Porcilis Glasser，Porcilis Parvo，Porcilis Porcoli DF， Porcilis APP，Porcilis AR-T，Porcilis AR-T DF，Porcilis Porcoli，Porcilis Porcoli Diluvac forte，Porcilis PRRS，Porcilis Porcol 5，Porcilis Aujeszky，Porcilis Begonia Diluvac，Porcilis Begonia I.D.A.L.，Porcilis Begonia Unisole，Porcilis M.hyo，Porcilis Atrinord，Myco BPM，Myco BPME，Myco ME，Myco M，Myco Once，Myco MEH， BPE， CTE 5000， CTSE，Score，Sow E II，Sow CE II，Sow TREC， CE，RCE， TREC， Pillmune， 与 II， Rota， Rotamune KV， Rota与 II， TGE/Rota，与 TGE，MaGESTIC 7，MaGESTIC 8， MaGESTicTM与 7与 8与与 Il，End- 2，PRV-Begonia 与Dlluvac SC/ST，Strep Bac，Strep 与 II， Colisorb，Heptavac，Lambivac，Porcovac plus，Erysorb Parvo(都来自Intervet Inc.，Millsboro，DE，USA)；Hyoresp，Circovac，Neocolipor，Parvoruvac， Parvosuin，Progressis，Viraflu，Akipor 6.3，Jespur gl-，Jesflu gl-(都来自Merial LTD，Duluth，GA)；ER PLUS，ER ER ER B， PLUS B， PLUS，PRV，FARROWSUREB-PRV，FLUSURETM，FLUSURETM RTU， FLUSURETM/ER PLUS，FLUSURETM/ER BAC RTU， FLUSURETM/RESPISURE- PLUS，FLUSURETM/RespiSure 1 BAC FLUSURETM/RESPISURE FLUSURETM/RESPISURE 1 FLUSURE/Farrowsure Plus， FLUSURE/Farrowsure Plus B，LT-C， LT， 4，Pneumosuis III，Stellamune One，Stellamune Uno，Stellamune Once，Stellamune Mono，Stellamune Mycoplasma，Respisure One， Respisure 1 Respisure 1 Bac Enduracell T，Zylexis(原 名Baypamune)， 3， Leptoferm-5TMParvo--Killed，PR-PR-Vac (都来自Pfizer Inc.，New York，NY，USA)；Suvaxyn MH One，Suvaxyn MH，Suvaxyn Mycoplasma，Suvaxyn Aujeszky Bartha+Diluent， Suvaxyn Aujeszky Bartha+o/w，Suvaxyn Aujeszky-Flu，Suvaxyn Aujeszky 783 +o/w，Suvaxyn Ery，Suvaxyn Flu，Suvaxyn M.hyo，Suvaxyn MH-One，Suvaxyn Parvo ST，Suvaxyn Parvo/E，Suvaxyn APP，Suvaxyn HPS，Suvaxyn MH/HPS，Suvaxyn MH， AR/T/E， EC-4， E， E-oral， PLE， PLE/PrV gpl-， LE+B， PLE+ B， PLE+B/PrV gpl-， SIV， SIV/Mh-one， P， PrV gpl-， PCV-2 One Shot(都来自Fort Dodge Animal Health，Overland Park，KS，USA(Wyeth)；M+ MaxiVac H1N1， H3N2，-FLU，-M+， MaxiVac MaxiVac Excell 3， PNEU PNEU PNEU PRV/Marker PRV/Marker PRV/Marker FLU，RhusigenTM，Gletvax 6，Covexin 8，M+ PAC，Gletvax plus， (都来自Schering-Plough Animal Health Corporation，Kenilworth，NJ，USA)；AMERVAC-PRRS， AUSKIPRA-BK，AUSKIPRA-GN，COLISUIN-CL，COLISUIN-TP， ERYSIPRAVAC，GRIPORK，HIPRASUIS-MYPRAVAC SUIS， NEUMOSUIN，PARVOSUIN，PARVOSUIN-MR，PARVOSUIN-MR/AD， RINIPRAVAC-DT，SUIPRAVAC-PRRS，SUIPRAVAC-RC，TOXIPRA PLUS (都来自Laboratorios Hipra S.A.，Amer，Girona，Spain)；Clostricol，Coliporc Plus，Haeppovac，Per-C-Porc，Porciparvac，RESPIPORC ART+EP， RESPIPORCFLU，Respiporc M.HYO 1 SHOT，Rhusiovac， Rotlauf-Lebendimpfstoff，Salmoporc，Suisaloral，AK-vac MK35(都来自IDT Impfstoffwerk DessaTornau，Tornau，Germany)；Mypravac Suis，(Albrecht GmbH，Germany)；Haemo P，Parapleuro P，Parapleuro P+BE， FD，Rhini ShieldTM TX4，Prefarrow 9， Prefarrow Strep BCD， C， Ultra C 1300，Porcine 3+C，Porcine Pili Shield Porcine Pili Shield 3，Ery Vac Oral，Ery ShieldTM+L5，PanSTARTM Ery， E，Parvo L5E，Parvo L5，Parvo PneumoSTAR SIV，PneumoSTARTMMyco，Lepto ShieldTM 5，Myco 2，Salmo Live， Amitox Perfingens Type A Toxoid(都来自Novartis Animal Health， Basel，Switzerland)；Nitro-Sal(Akro)；或任何包含在上述组合物中的抗原。 或者，当PCV2抗原已存在于任何那些疫苗中时，将(i)如本文所述的PCV 抗原添加到这些组合物/抗原的任一者中，或(ii)将这些组合物/抗原的任一者 中的PCV抗原用本文所述的PCV2抗原替代。
配制剂(formulations)
本发明的一项重要方面是制备组合疫苗(combination vaccines)。本领 域技术人员知道可包含在该组合物中的额外组分(还参见Remington′s Pharmaceutical Sciences.(1990).第18版Mack Publ.，Easton)。专家可使用已 知的注射用、在生理学上可接受的无菌溶液。为了制备立即可用的非经肠 注射或输液用溶液，可容易地获得等张水溶液，例如生理盐水或相应的血 浆蛋白质溶液。药物组合物可以冷冻干燥或干制备物的形式存在，可在使 用之前，在无菌的条件下直接以已知的注射用溶液加以重建，例如作为包 含多个部分的试剂盒。
此外，本发明之免疫和疫苗组合物可包含一种或多种在兽医上可接受 的载体。当在本文中使用时，＂兽医上可接受之载体＂包括任何和所有的溶剂、 分散介质、包衣(coatings)、佐剂、稳定剂、稀释剂、防腐剂、抗细菌和抗 真菌剂、等张剂、延迟吸收的试剂，等等。
稀释剂可包括水、生理盐水、右旋糖、乙醇、甘油等等。等张剂可包 括氯化钠、右旋糖、甘露糖醇、山梨糖醇和乳糖等等。稳定剂包括白蛋白 和乙二胺四乙酸的碱金属盐类等等。
优选的佐剂是上述的那些。免疫原性组合物更可包含一种或多种其它 的免疫调节剂，例如白介素、干扰素或其它的细胞因子。免疫原性组合物 还可包括庆大霉素和硫柳汞。在本发明之语境中所使用的佐剂和添加物的 含量或浓度，可由本领域技术人员容易地确定，本发明意图涵盖包括从大 约50微克到大约2000微克佐剂的组合物，而更优选大约250μg/ml剂量的 疫苗组合物。在另一优选的具体实施方案中，本发明意图涵盖包括从大约l μg/ml到大约60μg/ml抗生素，更优选低于大约30μg/ml的抗生素的疫苗 组合物。
根据更进一步的具体实施方案，首先将组合疫苗脱水。若先通过其它 方法将该组合物冷冻干燥或脱水，然后在接种疫苗之前，以含水(例如生理 盐水、PBS(磷酸缓冲之生理盐水))或非-含水溶液(例如油乳剂(以矿物油或植 物/可代谢油为基础/单或双乳剂为基础)、以铝为基础、以卡波姆(carbomer) 为基础的佐剂)，将该组合物再水合。
剂量和施用
根据本发明，施用于猪的有效量的组合疫苗能提供对抗PCV2和上文列 举之至少一种额外病原体引起之微生物感染的有效免疫力。上文列举了用 以治疗和预防微生物学疾病之抗原的优选组合。
根据更进一步的具体实施方案，以大约2至4周的间隔，将1或2个 剂量的组合疫苗施用于猪。例如，当动物大约2至3周到大约8周大时， 进行第一次施用。在第一次疫苗接种的第一次施用之后大约1至大约4周， 进行第二次施用。根据更进一步的具体实施方案，在施用第二个剂量之后 间隔3至12个月进行再接种。后续疫苗剂量的施用优选每6个月到一年进 行一次。在另一优选的具体实施方案中，在大约2至3周龄之前接种疫苗 的动物应再接种。后续疫苗剂量的施用优选每年一次。
组合疫苗的有效量，将视疫苗的成分和施用时间表而定。通常，当在 组合疫苗中使用失活病毒或经修饰的活病毒制备物时，疫苗每个剂量含有 大约102至大约109TCID50，优选的是每个剂量大约103至大约108TCID50， 更优选每个剂量大约104至大约108TCID50。一般而言，失活抗原的用量通 常比经修饰的活病毒更高。通常，当在组合疫苗中使用细菌抗原时，该疫 苗每个剂量含有大约103至大约109个菌落形成单位(CFU)，优选每个剂量 大约104到大约108(CFU)，更优选每个剂量大约105到大约106(CFU)。亚单 位疫苗通常以每个剂量至少0.2微克抗原的抗原包含水平来施用，优选的是 大约0.2到大约400微克/剂量，更优选大约0.3到大约200微克/剂量，甚 至更优选大约0.35到大约100微克/剂量，甚至更优选大约0.4到大约50微 克/剂量，甚至更优选大约0.45到大约30微克/剂量，甚至更优选大约0.6 到大约15微克/剂量，甚至更优选大约0.75到大约8微克/剂量，甚至更优 选大约1.0到大约6微克/剂量，而甚至更优选大约1.3到大约3.0微克/剂量。 例如，PCV2 ORF2抗原的抗原包含水平，优选的是本文提供的PCV2 ORF2 蛋白质，含有大约2微克到大约150微克，更优选大约2微克到大约60微 克，甚至更优选大约2微克到大约50微克，甚至更优选大约2微克到大约 40微克，甚至更优选大约2微克到大约30微克，甚至更优选大约2微克到 大约25微克，甚至更优选大约2微克到大约20微克，甚至更优选大约4 微克到大约20微克，而甚至更优选大约4微克到大约16微克。在包含(37) 的组合疫苗的情况下，优选是使用至少1至10个log，更优选5-10个log， 最优选的是6-8个log。在包含(41)的组合疫苗的情况下，优选使用至少l 至10个log，更优选3-10个log，最优选的是5-6个log。
可以皮内(intradermally)、气管内或阴道内之方式施用根据本发明之组 合物。优选是以肌肉内或鼻内之方式施用该组合物。在动物身上，可证明 依上文所述通过静脉内或通过直接注射至靶组织来施用所述药物组合物是 有利的。对于全身施用，静脉内、血管内、肌肉内、鼻内、动脉内、腹腔 内、口服或鞘内路径是优选的。更多局部应用可通过皮下、皮内 (intradermally)、皮内(intracutaneously)、心脏内、叶内(intralobally)、髓内、 肺内，或直接或在接近待治疗之组织处(结缔组织、骨组织、肌肉组织、神 经组织、表皮组织)实施。依据期望的治疗期间和效力，可施用根据本发明 之组合物一或多次，还可间歇地施用，例如按日为基础，持续数天、周或 月，并以不同的剂量。
治疗方法
本发明另一重要的实施方案，是预防或治疗由PCV2以及一种或多种猪 致病性微生物引起的疾病的方法，其中以适当的剂量，将PCV2抗原(优选 本文提供的PCV2 ORF2蛋白质)和额外的免疫学活性组分施用于有需要的 动物，所述额外的免疫学活性组分可有效治疗和/或预防由所述其他猪致病 性微生物引起的感染。根据更进一步的方面，该PCV2 ORF2蛋白质是上文 所述的抗原性组合物的一部分。因此，本发明的另一项方面涉及组合疫苗， 其包括本文提供的任一种抗原性组合物，且其包括PCV2 ORF2蛋白质和可 有效治疗和/或预防由所述其他猪致病性微生物引起的感染的其他免疫学活 性组分。
附图简要说明
图1为PCV2 ORF2重组杆状病毒的优选构建过程的流程图，以及
图2a和2b分别为如何产生根据本发明之组合物的流程图。
优选实施方式详述
下列实施例展示根据本发明之优选的材料和程序。然而，应了解这些 实施例仅为了解释而提供，其中任何内容均不应视为对本发明之全部范围 的限制。
实施例1
本实施例比较使用本发明之方法和现有技术中已知的方法的ORF2的 相对产率。以大约1.0 x 106个Sf+细胞/mL，在300mL昆虫不含血清的培养 基Excell 420(JRH Biosciences，Inc.，Lenexa，KS)中，分别接种四个1000mL 转瓶(spinner flask)。母细胞培养物(master cell culture)鉴定为Sf+(草地夜 蛾(Spodoptera frugiperda)母细胞贮备物，第19代，批号#N112-095W。用来 产制Sf+母细胞贮备物的细胞系获自Protein Sciences Corporation，Inc.， Meriden，CT。用于本实施例之Sf+细胞株限制在第19至59代之间。其它的 代数也可用于本发明的目的，但为了将过程放大以供大规模生产，至少传 代至19代或许是必要的，而传代超过59代可能对表达有影响，虽然对此 没有进行研究。更详细地说，使来自液氮储存的起始Sf+细胞培养物在无菌 转瓶中恒定搅拌下悬浮生长于Excell 420培养基中。使培养物生长在装有 25至150mL的Excell 420无血清培养基的100mL至250mL转瓶中。当细 胞繁殖至1.0-8.0 x 106个细胞/mL的密度时，以0.5-1.5 x 106个细胞/mL的种 植密度，将它们分配至新的容器中。接下来的培养物培养在尺寸最多达36 升的转瓶中，或最多300升的不锈钢生物反应器中，在25-29℃下持续2-7 天。
在接种之后，在27℃下培养烧瓶4小时。然后，以含有PCV2 ORF2基 因(SEQ ID NO:4)的重组杆状病毒接种每个烧瓶。如下制备含有PCV2 ORF2 基因的重组杆状病毒：以PCR扩增来自PCV2之北美株系的PCV2 ORF2 基因，使其含有5′Kozak′s序列(SEQ ID NO:1)和3′EcoR1位点(SEQ ID NO:2)， 克隆到pGEM-T-Easy载体(Promega，Madison，WI)内。然后，接着将其切下 并亚克隆到转移载体pVL1392(BD Biosciences Pharmingen，San Diego，CA) 内。在本文中该亚克隆的部分以SEQ ID NO:7表示。将含有PCV2 ORF2基 因的pVL1392质粒命名为N47-064Y，然后与(BD Biosciences Pharmingen)杆状病毒DNA共转染到Sf+昆虫细胞(Protein Sciences，Meriden， CT)内，产生含有PCV2 ORF2基因的重组杆状病毒。该新的构建体在本文 中以SEQ ID NO:8表示。噬斑纯化含有PCV2 ORF2的重组杆状病毒，且使 母病毒种株(Master Seed Virus，MSV)在SF+细胞株中增殖、分成等份试样且 储存于-70℃。使用杆状病毒特异性引物的PCR-RFLP，将MSV肯定地鉴定 为PCV2 ORF2杆状病毒。在间接荧光抗体测定中利用多克隆血清或单克隆 抗体检测到感染了PCV2 ORF2杆状病毒而产生MSV或工作病毒种株 (Working Seed Virus)的昆虫细胞表达PCV2 ORF2抗原。另外，凭借N-末端 氨基酸测序确认了PCV2 ORF2杆状病毒的身份。还根据9 C.F.R.113.27(c)、 113.28及113.55测试了PCV2 ORF2杆状病毒MSV的纯度。接种于转瓶中 的每一重组杆状病毒具有不同的病毒感染复数(MOI)。将瓶1用7.52mL 的.088MOI的种株接种；瓶2用3.01mL的0.36MOI的种株接种；瓶3用 1.5mL的0.18MOI的种株接种；将瓶4用0.75mL的0.09MOI的种株接种。 本文提供构建PCV2 ORF2重组杆状病毒的基本步骤的示意性流程图作为图 1。
用杆状病毒接种后，随后将转瓶在27℃±2℃下培养7天，同时还在 100rpm下搅动。所述转瓶使用通风盖以允许空气流动。对于接下来的7天， 每24小时自每一转瓶取样品。提取(extraction)后，将每一样品离心并将离 心沉淀及上清液两者分离，随后经由0.45μm-1.0μm孔径的膜微过滤。
随后，通过ELISA测定定量所得样品中存在的ORF2的量。用蛋白G 纯化的猪抗PCV2 Pab IgG(在PBS中1:250稀释)作为捕捉抗体，在0.05M 碳酸盐缓冲液(pH9.6)中稀释至1:6000进行ELISA测定。随后，将100μL 抗体置于微量滴定板的孔中，密封，并在37℃下温育过夜。随后，用包含 0.5mL Tween 20(Sigma，St.Louis，MO)、100mL10X D-PBS(Gibco Invitrogen，Carlsbad，CA)及899.5mL蒸馏水的洗涤溶液将板洗涤三次。随 后，将250μL封闭溶液(5g Carnation脱脂奶粉(Nestle，Glendale，CA)加于10 mL D-PBS中，用蒸馏水补至100mL)添加至每个孔中。下一步为洗涤测试 板，然后添加预稀释的抗原。预稀释抗原的制备是通过将200μL稀释剂溶 液(999.5mL D-PBS中加0.5mL Tween 20)添加到稀释板上的每个孔中。随 后，将样品以1:240的比率及1:480的比率稀释，且随后将这些稀释样品中 的每一个取100μL，添加至稀释板上的一个顶部孔中(即，一个顶部孔容纳 100μL的1:240的稀释物，另一个顶部孔容纳100μL的1:480的稀释物)。 随后在板的剩余部分上进行连续稀释，即连续地从一个孔移出100μL转移 至板上相邻的下一个孔中。每个孔在进行下一次转移之前先混合。测试板 的洗涤包括用洗涤缓冲液洗涤该板三次。随后，将该板密封并在37℃温育 一小时，然后用洗涤缓冲液再洗涤三次。所使用的检测抗体为PCV ORF2 的单克隆抗体。将检测抗体以稀释剂溶液稀释至1:300，然后将100μL经稀 释的检测抗体添加至孔中。随后，将板密封并在37℃温育一小时，然后用 洗涤缓冲液洗涤三次。随后，将正常兔血清(Jackson Immunoresearch，West Grove，PA)添加至稀释剂溶液中至1％浓度而制成偶联稀释剂。将山羊抗小 鼠的偶联抗体(H+1)-HRP(Jackson Immunoresearch)用偶联稀释剂稀释至 1:10,000。随后，将100μL经稀释的偶联抗体添加至每个孔中。随后，将该 板密封并在37℃温育45分钟，然后用洗涤缓冲液洗涤三次。将与等体积过 氧化物酶底物B(KPL)混合的100μL底物(TMB过氧化物酶底物，Kirkgaard and PerryLaboratories(KPL)，Gaithersberg，MD)添加至每个孔中。将板在室 温下温育15分钟。随后，向所有孔中添加100μL的1N HCl以终止反应。 随后，使该板通过ELISA读取器。此测定的结果提供于以下表1中：
表1
天数转瓶离心沉淀中的ORF2(μg)上清液中的ORF2(μg)3147.53123257.46223353.44143458.64124143.01444265.61624370.56324464.97245131.741005234.931425347.84905455.14866114.71586218.131826334.781406436.88146716.54176
7212.091907315.841587415.19152
这些结果指示当延长温育时间时，ORF2在离心后的细胞及培养基的上 清液中的表达大于在离心后的细胞及培养基的离心沉淀中的表达。相应地， 使得ORF2表达进行至少5天且在上清液中回收ORF2，而非使得表达进行 少于5天并从细胞回收ORF2，可提供ORF2产率的极大提高及优于先前方 法的显著改良。
实施例2
此实施例提供了在本申请要求保护的本发明的功效的数据。以大约 1.0×106个Sf+细胞/毫升于300mL Excell 420培养基中接种1000mL转瓶。 随后，将转瓶在27℃下温育且在100rpm下搅动。随后，温育24小时后， 将转瓶以0.1MOI的10mL PCV2 ORF2/Bac p+6(含有PCV2 ORF2基因，在 Sf9昆虫细胞中额外传代6次后的重组杆状病毒)病毒种株接种。
随后，将瓶在27℃下温育共6天。温育后，再将瓶离心，收集所得上 清液的三个样品，使其失活化。通过使上清液温度到达37℃±2℃使上清液 失活化。对于第一个样品，将已经于0.3N NaOH中环化成0.2M二元乙撑 亚胺(BEI)的0.4M氢溴酸2-溴乙撑胺(2-bromoethyleneamine hydrobromide) 溶液添加至上清液中以产生终浓度为5mM的BEI。对于第二个样品，将 10mM BEI添加至上清液中。对于第三个样品，不添加BEI至上清液中。 随后，将样品连续搅拌48小时。添加1.0M硫代硫酸钠溶液产生5mM的 最小终浓度，以中和任何残余BEI。随后，使用如在实施例1中描述的相同 ELISA测定程序定量每一样品中的ORF2的量。此结果可见于下表2中：
表2
样品上清液中的ORF2(μg)178.71268.75383.33
本实施例证实，以BEI中和不会移除或降解显著量的重组PCV2 ORF2 蛋白质产物。证据是BEI或升高温度的上清液中没有大量ORF2损失的事 实。本领域技术人员将承认，回收的ORF2是稳定的蛋白质产物。
实施例3
此实施例说明本发明可从重组PCV2ORF2的小规模生产放大至重组 PCV2 ORF2的大规模生产。将于7000mL ExCell 420培养基中的5.0×105个细胞/毫升的SF+细胞/ml种植于20000mL Applikon生物反应器中。随后， 在接下来的68个小时，将培养基及细胞在27℃下温育并在100RPM下搅 动。在第68小时时，将41.3mL PCV2 ORF2杆状病毒MSV+3添加至7000 mL ExCell 420培养基中。随后，将所得混合物添加至生物反应器中。在接 下来的七天，将混合物在27℃下温育并在100RPM下搅动。自感染后第4 天开始，每24小时自生物反应器抽取样品并将每一样品离心。将样品的上 清液保留并随后使用SDS-PAGE密度测定法定量ORF2的量。此结果可见 于下表3中：
表3
在感染后的天数在上清液中的ORF2(μg/ml)429.33541.33631.33760.67
实施例4
此实施例测试七种PCV2候选疫苗的功效，并进一步定义暴露于一种 PCV2毒力株后的功效参数。将9-14日龄的一百零八(108)只剖腹产术获得 的断初乳(CDCD)小猪随机分成相同大小的9个组。表4阐述用于此实施例 的通用研究设计。
表4.整体研究设计
组 猪数 处理 0 处理 天数第21天及 第27天的 KLH/ICFA第24天用 毒力PCV2 攻毒 第49天尸 体剖检
1121号PCV2疫苗 -(vORF216μg)0+++2122号PCV2疫苗 -(vORF28μg)0+++3123号PCV2疫苗 -(vORF24μg)0+++4124号PCV2疫苗 -(rORF216μg)0+++5125号PCV2疫苗 -(rORF28μg)0+++6126号PCV2疫苗 -(rORF24μg)0+++7127号PCV2疫苗-(灭 活的全细胞病毒)0+++812无疫苗-攻毒对照N/A+++912无疫苗-严格阴性 对照组 N/A+- +
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细胞病毒＝在适 当细胞培养物中生长的PCV2病毒
所述组中的七个(1-7组)接受PCV2 ORF2多肽剂量，一个组充当攻毒对 照并不接受PCV2 ORF2，而另一组充当严格阴性对照组并亦不接受PCV2 ORF2。在第0天，将第1至7组用指定的疫苗处理。在第14天，给与第7 组中的小猪增强免疫(booster)处理。疫苗接种后，观测小猪的不良事件及注 射部位的反应并在第19天，将小猪移至第二试验点。在第二试验点，将第 1-8组群养于一个猪舍(building)中而将第9组养于另一猪舍中。在第21天 及第27天，使所有猪接受钥孔血蓝蛋白(KLH)/弗氏不完全佐剂(ICFA)，在 第24天将第1-8组用毒力PCV2攻毒。
攻毒前和攻毒后，收集血液样品用于PCV2血清学。攻毒后，收集体重 数据用于测定平均每日体重增加(ADWG)，并采集临床症状以及鼻拭子 (nasal swab)样品用于测定PCV2的鼻排出(nasal shedding)。在第49天，对 所有存活猪进行尸体剖检，对肺损害评分，并将选定的组织保存于福尔马 林中用于日后的免疫组织化学(IHC)测试。
材料和方法
本实验为在第0天，在9至14日龄的CDCD猪中进行的部分盲法 (partially blinded)疫苗接种-攻毒可行性研究(vaccination-challenge feasibility study)。母猪的PCV2 IFA效价为≤1:1000方可纳入该研究中。另外，母猪 的血清学状态来自已知的PRRS-阴性畜群。测试了二十八(28)只母猪的 PCV2血清学状态。十四(14)只母猪具有≤1000的PCV2效价，它们被转移 至第一试验点。通过剖腹产手术接生一百一十(110)只小猪并在第-4天可用 于此研究。在第-3天，将在第一试验点的108只CDCD猪称体重、用耳标 标记、按重量分批(block by weight)并随机分配至如以上在表4中列出的9 组中的1组中。若满足纳入标准(inclusion criteria)的任何测试动物参加该研 究后由于任何原因而被排除，则研究者及监控者进行商议以决定自该动物 所收集的资料在最后分析中的使用。记录参加的小猪被排除的日期及排除 的理由。起初，无母猪被排除。在第-3天，将可用110只猪中的总共108 只随机分配至9个组中的一个组中。两只最小的猪(第17号及第19号)不分 配至组中，需要时可用作备用。在研究过程中，有若干只动物被排除。在 攻毒之前，各自发现第82号猪(第9组)在第-1天，第56号猪(第6组)在第 3天，第53号猪(第9组)在第4天，第28号猪(第8组)在第8天，第69号 猪(第8组)在第7天及第93号猪(第4组)在第9天死亡。在最后研究结果中 不包括这六只猪。将第17号猪(备用猪之一)分配至第9组。将剩余的备用 猪(第19号)自该研究排除。
给与每一组的配制剂如下：设计第1组施用每毫升含有16μg ORF2的 1ml病毒ORF2(vORF2)。这是通过将10.24ml病毒ORF2(256μg/25 μg/ml＝10.24ml vORF2)与3.2ml的0.5％卡巴普及pH值为7.4的2.56ml磷 酸盐缓冲盐水混合而进行的。由此产生16ml用于第1组的配制剂。设计第 2组施用每毫升含有8μg vORF2的1ml vORF2。这是通过将5.12ml vORF2 (128μg/25μg/ml＝5.12ml vORF2)与3.2ml的0.5％卡巴普及7.68ml pH值为 7.4的磷酸盐缓冲盐水混合而进行的。由此产生16ml用于第2组的配制剂。 设计第3组施用每毫升含有4μg vORF2的1ml vORF2。这是通过将2.56ml vORF2(64μg/25μg/ml＝2.56ml vORF2)与3.2ml的0.5％卡巴普及10.24ml pH值为7.4的磷酸盐缓冲盐水混合进行的。由此产生16ml用于第3组的 配制剂。设计第4组施用每毫升含有16μg rORF2的1ml重组ORF2 (rORF2)。这是通过将2.23ml rORF2(512μg/230μg/ml＝2.23ml rORF2)与6.4 ml的0.5％卡巴普及23.37ml pH值为7.4的磷酸盐缓冲盐水混合而进行的。 由此产生32ml用于第4组的配制剂。设计第5组施用每毫升含有8μg rORF2的1ml rORF2。这是通过将1.11ml rORF2(256μg/230μg/ml＝1.11ml rORF2)与6.4ml的0.5％卡巴普及pH值为7.4的24.49ml磷酸盐缓冲盐水混 合而进行的。由此产生32ml用于第5组的配制剂。设计第6组施用每毫升 含有8μg rORF2的1ml rORF2。这是通过将0.56ml rORF2(128μg/230 μg/ml＝0.56ml rORF2)与6.4ml的0.5％卡巴普及pH值为7.4的25.04ml磷 酸盐缓冲盐水混合而进行的。由此产生32ml用于第6组的配制剂。设计第 7组施用含有MAX PCV2 KV的2ml PCV2灭活全细胞疫苗(PCV2 KV)。这 是通过将56ml PCV2 KV与14ml的0.5％卡巴普混合进行的。由此产生70 ml用于第7组的配制剂。最后，设计第8组施用每2ml剂量0.5μg/ml或 1.0μg/ml的KLH。这是通过将40.71mlKLH(7.0μg蛋白质/ml0.5μg/ml＝570 ml(7.0μg/ml)(x)＝(0.5)(570ml))、pH值为7.4的244.29ml磷酸盐缓冲盐水 及285ml弗氏佐剂混合而进行的。表5描述用于此实施例的主要活动的时 间范围。
表5.研究活动
研究日研究活动-4、0至49对于总体健康情况及临床症状的一般观测-3称体重；随机化成组；从所有猪收集血液样品0健康检查；分别向第1-7组施用第1-7号IVP0-7观测猪的注射部位反应14用第7号PCV2疫苗加强第7组；来自所有猪的血液样品14-21观测第7组的注射部位反应16-19用抗生素处理所有猪(数据丢失)19将猪自第一测试点转移至第二测试点21用KLH/ICFA处理第1-9组24 自所有猪收集血液及鼻拭子样品；称所有猪的体重；将第 1-8组用PCV2攻毒材料攻毒
25、27、29、31、 33、35、37、39、 41、43、45、47 自所有猪收集鼻拭子样品 27用KLH/ICFA处理第1-9组31自所有猪收集血液样品49 自所有猪收集血液及鼻拭子样品；称所有猪的体重；将所 有猪尸体剖检；记录可见损害，重点是黄疸及胃溃疡；评 估肺的损害；保存新鲜组织样品及经福尔马林固定的组织 样品；完成研究的活体阶段(In-life phase)
完成研究的活体阶段后，由病理学者通过免疫组织化学(IHC)检查经福 尔马林固定的组织以检测PCV2抗原，评估血液样品的PCV2血清学，评估 鼻拭子样品的PCV2排出(shedding)，并测定自第24天至第49天的平均每 日体重增加(ADWG)。
自出生至大约11日龄(大约为该研究的第0天)，将动物养于在第一试 验点的五个房间中的个别笼中。各个房间布局相同，由堆叠的多个单独的 不锈钢笼组成，其中将加热并过滤空气独立供应至每一隔离单元。每一房 间具有独立的供热和通风，藉此防止在房间之间的空气交叉污染。在第二 试验点将动物养于两个不同猪舍中。将第9组(严格阴性对照组)单独养于经 改装的肥育猪舍(finisher building)中，并将第1-8组养于经改装的保育猪舍 (nursery building)中。将每一组养于独立围栏(每围栏11-12只猪)中，每一围 栏提供给每只猪大约3.0平方英尺。每一围栏设在具有塑料漏缝地板(platic slatted floors)的抬高平台(elevated deck)上。围栏下面的坑充当粪便及排泄物 的储槽。每一猪舍具有其自身独立的供暖及通风系统，几乎不可能有猪舍 间的空气交叉污染。
在第一试验点，从出生至大约3周龄，给小猪喂以特别配制的乳质定 粮(milk ration)。到第19天(大约41/2周龄)为止，所有小猪都在进食经特 别混制的固体状定粮。在第二试验点，给所有小猪喂以适于其年龄及重量 的定制未加药(non-medicated)市售混合定粮(不限量)。在两个试验点，水的 供应亦不限量。
将所有受试猪在第-2天用维生素E处理，在第-1天用铁注射处理，在 第16天、第17天、第18天及第19天用(1.0mL，两臀部轮流 肌注)处理。另外，由于各种健康原因，将第52号猪(第9组)在第3天用铁 注射处理，将第45号猪(第6组)在第11天用铁注射处理，将第69号猪(第 8组)在第6天用处理，将第74号猪(第3组)在第14天用地塞米 松(dexamethazone)及青霉素(penicillin)处理，将第51号猪(第1组)在第13 天用地塞米松及青霉素处理，并在第14天用处理。
同时，在两个试验点猪均接受了兽医学护理。在第0天进行动物健康 检查并记录于健康检查记录表中。第0天的观测确定所有动物在疫苗接种 前均具有良好的健康及营养状态。在攻毒前，观测到所有测试动物具有良 好健康及营养状态。屠体及组织通过熬炼(rendering)加以处置。将研究动物 的最后处置记录于动物处置记录上。
在第0天，分配至第1-6组的猪分别接受1.0mL PCV2疫苗1-6，使用 无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器(Luer-lock syringe)和无菌的20g×1/2＂针 头在左颈区肌注(IM)。分配至第7组的猪接受2.0mL的第7号PCV2疫苗， 使用无菌的3.0mLLuer锁紧套口注射器和无菌的20g×1/2＂针头在左颈区月几 注。在第14天，分配至第7组的猪接受2.0mL第7号PCV2疫苗，使用无 菌的3.0mLLuer锁紧套口注射器和无菌的20g×1/2＂针头在右颈区肌注。
在第21天，所有受试猪接受2.0mLKLH/ICFA，使用无菌的3.0mL Luer 锁紧套口注射器和无菌的20g×1＂针头在右臀区肌注。在第27天，所有受 试猪接受2.0mL KLH/ICFA，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无 菌的20g×1＂针头在左臀区肌注。
在第24天，分配至第1-8组的猪接受1.0mL PCV2 ISUVDL攻毒材料 (5.11log10TCID50/mL)，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌的 20g×1＂针头在左颈区肌注。使用3.0mL Luer锁紧套口注射器及鼻导管，通 过经鼻注射(IN)对每只猪额外施用1.0mL的相同材料(每鼻孔0.5mL)。
在第-4天及自第0天至第19天，每日观测受试猪的总体健康状况及不 良事件。将观测结果记录于临床观测记录上。自第0天至第7天观测所有 受试猪，并自第14天至第21天进一步观测第7组的注射部位反应。在第-3 天、第24天及第49天或发现猪在攻毒后死亡的当天，在校准后的天平上 称量每只猪的体重以测定平均每日体重增加。将体重记录于体重表中。在 随机化之前，利用第-3天的体重将猪分批(block)。利用第24天及第49天 的重量数据测定每只猪在这些时间点的平均每日体重增加(ADWG)。对于在 攻毒之后第49天之前死亡的猪，将ADWG调整为表示自第24天至死亡之 日的ADWG。
为测定PCV2血清学，在第-3天及第14天，自每只小猪的眼眶静脉窦 采集静脉全血。对于每只小猪，通过将无菌毛细管插入一只眼睛的内眦中 从眼眶静脉窦收集血液，并将大约3.0mL的全血汲入4.0mL血清分离管 (Serum Separator Tube，SST)中。在第24天、第31天及第49天，使用18g×1 1/2＂无菌真空采血针(Vacutainer needle)(Becton Dickinson and Company， Franklin Lakes，New Jersey)、真空采血持针器及13mL SST，自前腔静脉采 集每只猪的静脉全血。将在每一时间点的血液收集记录于样品收集记录上。 使每个SST中的血液凝结，随后将每个SST离心并收集血清。将收集的血 清转移至无菌搭扣管中并储存于-70℃±10℃下直至日后测试为止。由 BIVI-R&D的人员测试血清样品中PCV2抗体的存在。
自第20天至第49天每日一次观测猪的临床症状并将临床观测结果记 录于临床观测记录上。
为测试PCV2的鼻排出，在第24天、第25天，和接下来每隔一个奇数 研究日的奇数研究日(each other odd numbered study day)直至第49天(含)， 将无菌涤纶拭子尽可能无菌地鼻内插入每只猪的左鼻孔或右鼻孔(每只猪一 个拭子)，擦拭几秒钟后移出。随后，将每一拭子置放于含有具2％IFBS、 500单位/毫升的青霉素(Penicillin)、500μg/mL的链霉素(Streptomycin)及2.5 μg/mL两性霉素B(Fungizone)的1.0mL EMEM培养基的单个无菌搭扣密封 管中。将拭子在管中折断并将搭扣管密封并适当标记动物编号、研究编号、 收集日期、研究日及＂鼻拭子＂。将密封搭扣管储存于-40℃±10℃直至隔夜 于冰上送至BIVI-St.Joseph.。鼻拭子收集记录于鼻拭子样品收集表中。 BIVI-R&D对鼻拭子样品进行了PCV2的定量病毒分离(VI)测试。结果以 log10值表示。认为1.3log或更小的值为负，认为大于1.3log的任何值为正。
将在第一试验点死亡的猪(第28号、第52号、第56号、第69号、第 82号及第93号)尸体剖检至确定诊断结果所需要的程度。记录可见损害， 这些猪的组织不予保留。在第二试验点，将在第49天前死亡的猪(第45号、 第23号、第58号、第35号)、在第49天安乐死前发现死亡的猪(第2号、 第43号)及在第49天安乐死的猪尸体剖检。记录任何可见损害并将具有损 害的肺叶的百分比记录于尸体剖检报告表中。
对于在第二试验点尸体剖检的103只猪，从每只猪的扁桃体、肺、心 脏、肝、肠系膜淋巴结、肾及腹股沟淋巴结取组织样品，置于具有10％缓 冲福尔马林的单个容器中；同时将取自上述相同器官的另一组织样品置放 于Whirl-pak(M-Tech Diagnostics Ltd.，Thelwall，UK)中并将每一Whirl-pak置 放于冰上。将每一容器适当标记。将样品收集记录于尸体剖检报告表中。 随后，提交经福尔马林固定的组织样品及诊断申请表供IHC测试。IHC测 试根据用于接收样品、样品及切片(slide)制备及染色技术的标准ISU实验室 程序来进行。将于Whirl-pak中的新鲜组织用冰袋运送至研究监控者(Study Monitor)储存(-70℃±10℃)，供将来可能的使用。由病理学者对福尔马林固 定的组织进行IHC检查以检测PCV2，并使用以下计分系统计分：0＝无；1＝ 少数阳性染色，几处；2＝中度阳性染色，多处；及3＝大量阳性染色，弥漫 于整个组织。由于病理学者不能肯定地区分腹股沟LN与肠系膜LN，故直 接将这些组织标记为淋巴结，对于每只动物，以两种组织中的每一种的最 高分数来计分。
以下给出此实施例的结果。注意到第0天前第9组的一只猪死亡，且 接种后又有5只猪死亡(第4组的1只猪；第6组的1只猪；第8组的2只 猪；及第9组的1只猪)。死后检查表明所有六只猪死于与疫苗接种或PMWS 不相关的潜在感染。另外，任何组中无不良事件或注射部位反应记录。
平均每日体重增加(ADWG)的结果呈现于下表6中。严格阴性对照组的 第9组具有最高ADWG(1.06±0.17磅/天)，接着为接受一剂8μg rORF2的第 5组(0.94±0.22磅/天)。接受一剂4μgvORF2的第3组具有最低ADWG (0.49±0.21磅/天)，接着为接受2剂灭活疫苗的第7组(0.50±0.15磅/天)。
表6.组平均每日体重增加(ADWG)的总结
组 处理 N ADWG-磅/天(第24天至 第49天)或对于第29天 前死亡的猪的调整值 1vORF2-16μg(1剂)120.87±0.29磅/天2vORF2-8μg(1剂)120.70±0.32磅/天
3vORF2-4μg(1剂)120.49±0.21磅/天4rORF2-16μg(1剂)110.84±0.30磅/天5rORF2-8μg(1剂)120.94±0.22磅/天6rORF2-4μg(1剂)110.72±0.25磅/天7KV(2剂)120.50±0.15磅/天8攻毒对照100.76±0.19磅/天9严格阴性对照111.06±0.17磅/天
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
PCV2血清学结果呈现于下表7中。在第-3天，所有九个组对于PCV2 均为血清反应阴性。在第14天，接受vORF2疫苗的组具有最高的效价，其 范围为187.5至529.2。接受灭活病毒疫苗的猪具有第二高的效价，接着为 接受rORF2疫苗的组。此时，第8组及第9组保持血清反应阴性。在第24 天及第31天，接受vORF2疫苗的猪继续展现强血清学反应，紧接着为接受 两剂灭活病毒疫苗的组。接受rORF2疫苗的猪血清学反应要慢一些，而第 8组及第9组继续保持血清反应阴性。在第49天，接受vORF2疫苗、2剂 灭活病毒疫苗及最低剂量rORF2的猪展现最强血清学反应。接受16μg及8 μg rORF2疫苗的猪具有比攻毒对照稍高的IFA效价。第9组在第49天展现 强血清学反应。
表7.组PCV2IFA效价的总结
IFA平均效价
组处理第-3天第14天第24天第31天 ** 第49天 *** 1vORF2-16μg(1 剂) 50.0529.24400.07866.711054.52vORF2-8μg(1剂)50.0500.03466.76800.010181.83vORF2-4μg(1剂)50.0187.51133.35733.39333.34rORF2-16μg(1剂)50.095.51550.03090.98000.05rORF2-8μg(1剂)50.075.0887.52266.77416.76rORF2-4μg(1剂)50.050.0550.03118.210570.0
7KV(2剂)50.0204.23087.54620.88680.08攻毒对照50.055.050.050.05433.39严格阴性对照50.059.159.154.56136.4
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
*为计算的目的，将≤100的IFA效价指定为效价＂50＂；将≥6400的IFA 效价指定为效价＂12,800＂。
**攻毒之日
***尸体剖检之日
攻毒后临床观察的结果呈现于下表8中。此结果的总结包括对于异常 行为、异常呼吸、咳嗽及腹泻的观察结果。表9包括来自组临床症状的总 发生率的总结的结果，表10包括来自组攻毒后死亡率的总结的结果。在此 研究中记录的最常见的临床症状是异常行为，记录为轻度至严重嗜睡。接 受2个较低剂量vORF2的猪、接受16μg rORF2的猪及接受2个剂量的KV 疫苗的猪具有≥27.3％的发生率。接受8μg rORF2的猪及严格阴性对照组无 异常行为。此研究中，无一只猪展现任何异常呼吸。在所有组中多见有咳 嗽(0至25％)，以及腹泻(0-20％)。所见临床症状无一为PMWS的病征。
临床症状的总发生率在各组间不同。接受任一vORF2疫苗的组、接受 16μgrORF2的组、接受2剂KV疫苗的组及攻毒对照组具有最高的总临床 症状发生率(≥36.4％)。严格阴性对照组、接受8μg rORF2的组及接受4μg rORF2的组分别具有0％、8.3％及9.1％的总临床症状发生率。
各组间的总死亡率亦不同。接受2剂KV疫苗的组具有最高死亡率 (16.7％)；而接受4μg vORF2、16μg rORF2或8μg rORF2的组及严格阴性 对照组全部具有0％的死亡率。
表8.组的异常行为、异常呼吸、咳嗽及腹泻的观测结果的总结
组处理N异常行为1异常行为2咳嗽3腹泻41vORF2-16μg(1剂)122/12(16.7％)0/12(0％)3/12(25％)2/12(16/7％)2vORF2-8μg(1剂)124/12(33.3％)0/12(0％)1/12(8.3％)1/12(8.3％)3vORF2-4μg(1剂)128/12(66.7％)0/12(0％)2/12(16.7％)1/12(8.3％)4rORF2-16μg(1剂)113/11(27.3％)0/11(0％)0/11(0％)2/11(18.2％)5rORF2-8μg(1剂)120/12(0％)0/12(0％)1/12(8.3％)0/12(0％)
6rORF2-4μg(1剂)111/11(9.1％)0/11(0％)0/11(0％)0/12(0％)7KV(2剂)127/12(58.3)0/12(0％)0/12(0％)1/12(8.3％)8攻毒对照101/10(10％)0/10(0％)2/10(20％)2/10(20％)9严格阴性对照110/11(0％)0/11(0％)0/11(0％)0/11(0％)
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
1每一组中展现任何异常行为历时至少一天的猪总数
2每一组中展现任何异常呼吸历时至少一天的猪总数
3每一组中展现咳嗽历时至少一天的猪总数
4每一组中展现腹泻历时至少一天的猪总数
表9.组临床症状总发生(incidence)的总结
组 处理 N具临床症状的猪发 生数1(incidence) 发生率1vORF2-16μg(1剂)12541.7％2vORF2-8μg(1剂)12541.7％3vORF2-4μg(1剂)12866.7％4rORF2-16μg(1剂)11436.4％5rORF2-8μg(1剂)1218.3％6rORF2-4μg(1剂)1119.1％7KV(2剂)12758.3％8攻毒对照10440％9严格阴性对照1100％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
1每一组中展现任何临床症状历时至少一天的猪总数
表10.组攻毒后死亡率的总结
组处理N攻毒后死亡数死亡率1vORF2-16μg(1剂)1218.3％2vORF2-8μg(1剂)1218.3％3vORF2-4μg(1剂)1200％
4rORF2-16μg(1剂)1100％5rORF2-8μg(1剂)1200％6rORF2-4μg(1剂)1119.1％7KV(2剂)12216.7％8攻毒对照10110％9严格阴性对照1100％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
PCV2的鼻排出结果呈现于下表11中。在第24天攻毒后，第7组中的 1只猪在第27天开始排出PCV2。在第33天之前，其它组无一经历排毒。 鼻排毒主要见于第35天至第45天。接受三种vORF2疫苗中的任何一种的 组及接受4μg或8μg rORF2的组具有最低的PCV2鼻排毒发生率(≤9.1％)。 攻毒对照组(第8组)具有最高排毒率(80％)，接着为具有63.6％的发生率的 严格阴性对照组(第9组)。
表11.组PCV2鼻排出发生率的总结
组处理N排毒至少一天的猪数发生率1vORF2-16μg(1剂)1218.3％2vORF2-8μg(1剂)1218.3％3vORF2-4μg(1剂)1218.3％4rORF2-16μg(1剂)11218.2％5rORF2-8μg(1剂)1218.3％6rORF2-4μg(1剂)1119.1％7KV(2剂)12541.7％8攻毒对照10880％9严格阴性对照11763.6％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；灭活的全细 胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
组黄疸发生率、组胃溃疡发生率、组平均肺损害计分及组肺损害发生 率的总结展示于下表12中。在第一测试点，六只猪在研究的接种后阶段死 亡(第4组，N＝1；第6组，N＝1；第8组，N＝2；第9组，N＝2)。六只猪中 的四只在一个或多个体腔中具有纤维蛋白性损害(fibrinous lesion)，一只猪 (第6组)具有符合梭菌病的损害，一只猪(第9组)无可见损害。在该研究的 疫苗接种后阶段死亡的猪无一具有符合PMWS的损害。
将在攻毒后死亡的猪及在第49天安乐死的猪尸体剖检。尸体剖检可见， 任何组中均不存在黄疸及胃溃疡。关于平均肺损害百分比，第9组具有最 低平均肺损害百分比(0％)，接着为具有0.40±0.50％的第1组及具有 0.68±1.15％的第5组。第2组、第3组、第7组及第8组具有最高平均肺损 害百分比(≥7.27％)。这些四个组中的每一者都含有肺损害百分比≥71.5％的一 只猪，拉高了这四个组的结果。除具有所记录的0％肺损害的第9组外，其 余8组具有≤36％的肺损害。几乎所有记录的肺损害均被描述为红色/紫色且 为坚实(consolidated)的。
表12.记录的组黄疸发生数、组胃溃疡发生数、组平均肺损害百分比计分及 组肺损害发生数的总结
组处理黄疸胃溃疡平均肺损害 百分比 记录的肺损害 发生率 1vORF2-16μg(1剂)0/12 (0％)0/12 (0％)0.40±0.50％10/12 (83％)2vORF2-8μg(1剂)0/12 (0％)0/12 (0％)7.41±20.2％10/12 (83％)3vORF2-4μg(1剂)0/12 (0％)0/12 (0％)9.20±20.9％10/12 (83％)4rORF2-16μg(1剂)0/11 (0％)0/11 (0％)1.5±4.74％4/11 (36％)5rORF2-8μg(1剂)0/12 (0％)0/12 (0％)0.68±1.15％9/12 (75％)6rORF2-4μg(1剂)0/11 (0％)0/11 (0％)2.95±5.12％7/11 (64％)7KV(2剂)0/12 (0％)0/12 (0％)7.27±22.9％9/12 (75％)8攻毒对照0/10 (0％)0/10 (0％)9.88±29.2％8/10 (80％)9严格阴性对照0/11 (0％)0/11 (0％)0/11(0％)0/11 (0％)
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
组IHC阳性发生结果的总结展现于表13中。第1组(vORF2-16μg)及第 5组(rORF2-8μg)具有最低IHC阳性发生率的结果(16.7％)。第8组(攻毒对 照)及第9组(严格阴性对照)具有最高的IHC阳性结果率，分别为90％及 90.9％。
表13.组IHC阳性发生率的总结
组 处理 N具有至少一种对于 PCV2为阳性的组织 的猪数 发生率1vORF2-16μg(1剂)12216.7％2vORF2-8μg(1剂)12325.0％3vORF2-4μg(1剂)12866.7％4rORF2-16μg(1剂)11436.3％5rORF2-8μg(1剂)12216.7％6rORF2-4μg(1剂)11436.4％7KV(2剂)12541.7％8攻毒对照10990.0％9严格阴性对照111090.9％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
攻毒后，接受一剂8μg rORF2抗原的第5组表现优于其它6个疫苗组。 第5组具有最高ADWG(0.94±0.22磅/天)、最低异常行为发生率(0％)、第二 低的咳嗽发生率(8.3％)、最低总临床症状发生率(8.3％)、最低死亡率(0％)、 最低PCV2鼻排出率(8.3％)、第二低的平均肺损害百分比比率(0.68±1.15％) 及最低阳性组织发生率(16.7％)。接受不同水平的rORF2抗原的组总体优于 接受不同水平的vORF2的组，接受2剂灭活全细胞PCV2疫苗的组表现最 差。表14及表15包含组攻毒后数据的总结。
表14.组攻毒后数据总结-第1部分
组 N 处理ADWG (磅/天) 异常行为 咳嗽总临床症状的 发生率 112vORF2-16μg(1剂)0.87±0.292/12(16.7％)3/12(25％)41.7％212vORF2-8μg(1剂)0.70±0.324/12(33.3％1/12(8.3％)41.7％312vORF2-4μg(1剂)0.49±0.218/12(66.7％)2/12(16.7％)66.7％411rORF2-16μg(1剂)0.84±0.303/11(27.3％)0/11(0％)36.4％
512rORF2-8μg(1剂)0.94±0.220/12(0％)1/12(8.3％)8.3％611rORF2-4μg(1剂)0.72±0.251/11(9.1％)0/11(0％)9.1％712KV(2剂)0.50±0.157/12(58.3)0/12(0％)58.3％810攻毒对照0.76±0.191/10(10％)2/10(20％)40％911严格阴性对照1.06±0.170/11(0％)0/11(0％)0％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
表15.组攻毒后数据总结-第2部分
组 N 处理 死亡率 鼻排毒 平均肺损害 百分比 对于PCV2为IHC 阳性的至少一种 组织的发生率 112vORF2-16μg(1剂)8.3％8.3％0.40±0.50％16.7％212vORF2-8μg(1剂)8.3％8.3％7.41±20.2％25.0％312vORF2-4μg(1剂)0％8.3％9.20±20.9％66.7％411rORF2-16μg(1剂)0％18.2％1.50±4.74％36.3％512rORF2-8μg(1剂)0％8.3％0.68±1.15％16.7％611rORF2-4μg(1剂)9.1％9.1％2.95±5.12％36.4％712KV(2剂)16.7％41.7％7.27±22.9％41.7％810攻毒对照10％80％9.88±29.2％90.0％911严格阴性对照0％63.6％0/11(0％)90.9％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
此研究的结果表明，所有进一步的疫苗研究工作应当围绕rORF2疫苗 来进行。总的说来，攻毒后检测到了PCV2的鼻排出，而用PCV2接种导致 了排出减少。选定的淋巴组织的免疫组织化学亦可作为疫苗功效的良好参 数，而在组间未检测到ADWG、临床症状及可见损害方面的大的差异。第 9组(严格阴性对照组)中的PCV2鼻排出、PCV2血清转化及阳性IHC组织 证明，在研究中某些地方引入了外来PCV2，这一事实使得此项研究复杂化。
讨论
在此研究中评估了七种PCV2疫苗，其包括在第0天施用一次的三个不 同剂量水平的vORF2抗原、在第0天施用一次的三个不同剂量水平的rORF2 抗原，及在第0天及第14天施用的一个剂量水平的灭活全细胞PCV2疫苗。 总的说来，接受一剂含有8μg rORF2抗原的疫苗的第5组具有最佳结果。 第5组具有最高ADWG、最低异常行为发生率、最低异常呼吸发生率、第 二低的咳嗽发生率、最低总临床症状发生率、最低死亡率、最低PCV2的鼻 排出率、第二低的平均肺损害百分比比率及最低阳性IHC组织发生率。
有趣地是，接受比第5组更高剂量的rORF2抗原的第4组并未表现得 和第5组一样好或好于第5组。与第5组相比，第4组具有稍微较低的 ADWG、较高的异常行为发生率、较高的总临床症状发生率、较高的PCV2 鼻排出率、较高的平均肺损害百分比及较高的阳性IHC组织比率。对这些 数据未进行统计分析——该分析可能会指示这些两个组间的差异不具有统 计学上的显著性——但观察到的倾向是第4组表现不如第5组好。
接种后，6只猪在第一试验点死亡。所述六只猪中的四只来自未接受疫 苗的第8组或第9组。六只猪中无一展现符合PMWS的损害，无不良事件 报导，总的看来，当施用于大约11日龄的猪时，所有七种疫苗看来都是安 全的。在该研究的接种后阶段，接受三个剂量水平的vORF2疫苗或灭活全 细胞疫苗的猪具有最高的IFAT水平，在疫苗组中第5组在即将攻毒前具有 最低的IFAT水平。
尽管未正式证实，但人们相信PCV2传播至断乳后不久的小猪的主要途 径是通过口鼻直接接触，而能在生产环境(production setting)中减少PCV2 鼻排出的有效疫苗将有助于控制感染的传播。接受三个vORF2抗原水平之 一的组及接受8μgrORF2的组具有最低的PCV2鼻排出发生率(8.3％)。如 预料的那样，攻毒对照组具有最高的鼻排出发生率(80％)。
在患有继发于PCV2感染的PMWS的猪中，可见损害通常由与一或多 种以下症状组合的全身性淋巴结病(generalized lymphadenopathy)组成：(1) 具有小叶间水肿的间质性肺炎，(2)皮肤苍白或黄疸，(3)斑点状萎缩性肝 (mottled atrophic liver)，(4)胃溃疡和(5)肾炎。在尸体剖检时，在任何组 中未见黄疸、肝炎、肾炎及胃溃疡，对淋巴结病没有进行特定检查。平均 肺损害百分比计分在各组间不同。接受16μg vORF2抗原的组具有最低的 平均肺损害百分比计分(0.40±0.50％)，其次为接受8μg rORF2的组 (0.68±1.15％)。如预期的，攻毒对照组具有最高的平均肺损害百分比计分 (9.88±29.2％)。在所有四个组中，由于在这些组中各自有一只猪具有极高的 肺损害计分，因此平均肺损害百分比计分被提高。大多数肺损害被描述为 红色/紫色且坚实(consolidated)的。通常，与PMWS相关的肺损害被描述为 黄褐色并不可萎陷(non-collapsible)，伴有小叶间水肿。在此研究中发现的肺 损害与PCV2感染无关，或者可能存在另一肺感染原。在此研究范围内，肺 损害百分比计分可能不反映由PCV2所致的肺感染的量的真实量度。
其它研究人员已证明，通过IHC发现的PCV2抗原的存在与组织病理 学之间有直接相关性。在此研究中未进行所选组织的组织病理学检查。第1 组(16μg vORF2)及第5组(8μg rORF2)的PCV2抗原阳性猪的发生率最低 (8.3％)，而第9组(严格阴性对照组-90.9％)及第8组(攻毒对照组-90.0％)的 PCV2抗原阳性猪的发生率最高。由于此测试的非主观性，IHC结果可能是 用来判断疫苗功效的最佳参数之一。
因此，在本发明的一个方面中，测定含有提取的PCV2 ORF2(rORF2) 抗原的1毫升/1剂重组产物在CDCD猪模型中面对PCV2攻毒的最小保护 性剂量(MPD)。在接受了不同水平的rORF2抗原的三个组中，第5组(8μg rORF2抗原)明显具有最高的保护水平。对于被检查的所有参数，第5组均 具有最佳的结果，或者与其它组一样具有(tied for)最理想的结果。当攻毒后 将第5组与其它六个疫苗组进行比较时，第5组具有最高的ADWG (0.94±0.22磅/天)、最低的异常行为发生率(0％)、第二低的咳嗽发生率(8.3％)、 最低的总临床症状发生率(8.3％)、最低的死亡率(0％)、最低的PCV2鼻排出 率(8.3％)、第二低的平均肺损害百分比比率(0.68±1.15％)及最低的阳性IHC 组织发生率(16.7％)。
在本发明的另一方面中，测定的1毫升/1剂常规产品[其为部分纯化的 PCV2 ORF2(vORF2)抗原]在CDCD猪模型中面对PCV2攻毒的MPD。在接 受不同水平的vORF2抗原的三个组中，第1组(16μg vORF2)具有最高保护 水平。第1组在ADWG、平均肺损害百分比及IHC方面的表现优于第2组 及第3组。在临床症状的总发生率方面，第1组与第2组(8μg vORF2抗原) 的表现相等，第3组(4μg vORF2抗原)具有最低死亡率，而在鼻排毒方面， 所有三个组的表现相等。总的说来，vORF疫苗表现不及rORF疫苗好。
在本发明的另一个方面中，测定最大剂量的2毫升/2剂的常规灭活 PCV2疫苗在CDCD猪模型中面对PCV2攻毒的功效。在此研究中所评估的 七种疫苗中，灭活全细胞PCV2疫苗表现最差。接受两剂灭活全细胞PCV2 疫苗的小猪具有最低ADWG、第二高的异常行为发生率(58.3％)、第二高的 临床症状总发生率(58.3％)、最高死亡率(16.7％)、第二高的鼻排毒发生率 (41.7％)、最高平均肺损害百分比(9.88±29.2％)、高的可见肺损害发生率(75％) 及中等的组织中IHC发生率(41.7％)。然而，它仍可有效引起免疫反应。
在本发明的另一方面中，评估PCV2鼻排出作为功效参数，并再次确证 了来自先前研究的先前PCV2功效参数。该项研究的结果表明在鼻内攻毒后 发生PCV2鼻排出，且PCV2疫苗可减少攻毒后的PCV2鼻排出。此外，此 研究的结果及文献中的报导指示，在将来的PCV2疫苗试验中亦应继续评估 IHC。
此研究得到的另外一些结论有：淋巴结病为PMWS的标志(hallmark)之 一。PMWS的另一标志为淋巴细胞消减(depletion)及多核组织细胞/巨组 织细胞。另外，7种PCV2疫苗中任一个均未见不良事件或注射部位反应， 且当施用小猪时，所有7种PCV2疫苗看来为安全的。
实施例5
此实施例测试八种PCV2候选疫苗的功效，并从先前暴露于PCV2毒力 菌株后的攻毒研究获得的PCV2攻毒参数进行了再次确证。将6-16日龄的 一百五十(150)只剖腹产术获得的断初乳(CDCD)小猪按重量分批(block)并 随机分入相同规模的10个组。表16给出了用于此实施例的整体研究设计。
表16.整体研究设计
组 猪 数 处理 处理 之日 第22天及 第28天的 KLH/ICFA第25天用 毒力PCV2 攻毒 第46天 PRRSV MLV 第50 天尸 体剖 检 1 15 PVC2疫苗1 16μg rORF2-IMS 1314 0和 14 + + + + 2 15 PVC2疫苗2 16μg vORF2-卡巴 普 0和 14 + + + +
3 15 PCV2疫苗3 16μg rORF2-卡巴 普 0和 14 + + + + 4 15 PCV2疫苗2 16μg vORF2-卡巴 普 0 + + + + 5 15 PVC2疫苗3 4μg rORF2-卡巴 普 0和 14 + + + + 6 15 PVC2疫苗3 1μg rORF2-卡巴 普 0和 14 + + + + 7 15 PVC2疫苗3 0.25μg rORF2-卡巴 普 0和 14 + + + + 8 15PVC2疫苗4 >8.0log KV- 卡巴普 0和 14 + + + +915攻毒对照N/A++++ 10 15无疫苗-严格 阴性对照组 N/A + + +
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
给与每一组的疫苗配制剂如下：1号PCV2疫苗，以1×2ml剂量施用 于第1组，是以IMS 1314佐剂化的高剂量(16微克/2毫升剂量)失活化重组 ORF2抗原(16μg rORF2-IMS 1314)。2号PCV2疫苗，以1×2ml剂量施用 于第2组，是以卡巴普佐剂化的、高剂量(16微克/2毫升剂量)的、由VIDO R-1产生的部分纯化的PCV2 ORF2抗原(16μg vORF2-卡巴普)。3号PCV2 疫苗，以1×2ml剂量施用于第3组，是以卡巴普佐剂化的、高剂量(16微克 /2毫升剂量)的失活化重组ORF2抗原(16μg rORF2-卡巴普)。4号PCV2疫 苗，以1×1ml剂量施用于第4组，是以卡巴普佐剂化的、高剂量(16μg/l ml 剂量)的、部分纯化的由VIDO R-1产生的PCV2 ORF2抗原(16μg vORF2- 卡巴普)。5号疫苗，以1×2ml剂量施用于第5组，是以卡巴普佐剂化的4μg/2 ml剂量的失活化重组ORF2抗原(4μg rORF2-卡巴普)。6号PCV2疫苗，以 1×2ml剂量施用于第6组，是以卡巴普佐剂化的1μg/2ml剂量的失活化重 组ORF2抗原(1μgrORF2-卡巴普)。7号PCV2疫苗，以1×2ml剂量施用于 第7组，是以卡巴普佐剂化的低剂量(0.25μg/2ml剂量)失活化重组ORF2 抗原(0.25μg rORF2-卡巴普)。8号PCV2疫苗，以1×2ml剂量施用于第8 组，是以卡巴普佐剂化的高剂量(失活前效价>8.0log/2ml剂量)的失活化常 规灭活VIDO R-1产生的PCV2 Struve抗原(>8.0log KV-卡巴普)。在第0天， 用指配的疫苗处理第1至8组。在第14天，第1-3组及第5-8组再次接受 其各别疫苗的加强接种。对于第4组(其在第14天未接受加强接种)测试单 个剂量的16μg vORF2-卡巴普的有效性。在两次疫苗接种后都观测小猪的 不良事件及注射部位反应。在第21天，将小猪移至第二试验点，其中第1-9 组群养于一个猪舍中，将第10组养于另一猪舍中。在第22天及第28天， 所有猪接受用弗氏不完全佐剂乳化的钥孔血蓝蛋白(KLH/ICFA)。在第25 天，将第1-9组用大约4log的毒力PCV2病毒攻毒。到第46天为止，在攻 毒对照组中出现的死亡极少。为了试图对猪进行免疫刺激并增强PCV2攻毒 材料的毒力，在第46天，将所有组用 PRRSV MLV(猪生殖及 呼吸疫苗，修饰活病毒)处理。
在攻毒之前和之后，收集血液样品用于PCV2血清学。攻毒之后，收集 测定平均每日体重增加(ADWG)的体重资料及临床征象的观测结果。在第 50天，将所有存活猪进行尸体剖检，记录可见损害、对肺进行病理学计分， 并将选择的组织保存于福尔马林中用于日后凭借免疫组织化学(IHC)检测 PCV2抗原的检查。
材料及方法
本研究是对第0天时6至16日龄的CDCD猪进行的部分盲法接种-攻 毒可行性研究。纳入该研究中的母猪的PCV2 IFA效价为≤1:1000。另外， 母猪的血清学状态来自已知的PRRS-阴性畜群。测试十六(16)只母猪的 PCV2血清学状态，所有十六(16)只皆具有≤1000的PCV2效价，并将它们 转移至第一试验点。通过剖腹产术手术分娩一百五十(150)只小猪，在第-3 天可用于此研究。在第-3天，将在第一试验点的150只CDCD猪称体重、 用耳标标记、按重量分批并随机分配至如在以上表16中所述的10个组中 的1个组中。自所有猪收集血液样品。若满足纳入标准的任何测试动物参 加了该研究，而随后由于任何原因而被排除，则由研究者及监控者商议决 定自该动物收集的数据在最后分析中的使用。记录参加的小猪被排除的日 期及排除的理由。满足该纳入标准、选择用于该研究并送至第一试验点的 母猪均未被排除。没有小猪被从该研究排除，且在结束前，无测试动物被 从该研究移除。表17描述用于此实施例的重要活动的时段。
表17.研究活动
完成研究的活体阶段后，对经福尔马林固定的组织由病理学者进行免 疫组织化学(IHC)检查以检测PCV2抗原，评估血液样品的PCV2血清学， 并测定自第25天至第50天的平均每日体重增加(ADWG)。
动物自出生至大约11日龄(大约为该研究的第0天)被养于第一试验点 的七个房间中的个别笼中。每一房间布局相同并由堆叠的多个单独不锈钢 笼组成，并将经过加热并过滤的空气独立地供应至每一分离单元。每一房 间独立供热并通风，藉此防止房间之间的空气交叉污染。在第二试验点， 动物被养于两个不同猪舍中。将第10组(严格阴性对照组)独立养于经改装 的肥育猪舍中，并将第1-9组养于经改装的产仔猪舍中。将每一组养于独立 围栏(每围栏14-15只猪)，每一围栏为每只猪提供大约2.3平方英尺。将第 2组、第4组及第8组圈入通道一侧的三个相邻围栏中，并将第1组、第3 组、第5组、第6组、第7组及第9组圈入通道另一侧的六个相邻围栏中。 之所以把各组分开，是因为研究监控者(Study Monitor)担心第2组、第4组 及第8组所施用的疫苗未完全失活。每一围栏设置于具塑料漏缝地板的抬 高平台上。围栏下面的坑充当粪便及排泄物的储槽。每一猪舍具有其自身 独立的供暖及通风系统，几乎不可能有猪舍间的空气交叉污染。
在第一试验点，自出生至大约3周龄，给小猪喂以特定配制的乳质定 粮。到第21天(大约41/2周龄)为止，所有小猪均在食用固体状特定混合的定 粮。在第二试验点，给所有小猪喂以与其年龄及体重相适应的定制未加药 市售混合定粮(不限量)。在两个试验点，水的供应亦不限量。
在第19天、第20天及第21天，将所有受试猪用1.0mL两 臀部轮流肌注处理。另外，出于各种健康原因，将第11号猪(第1组)在第 10天用0.5mL 肌注处理，将第13号猪(第10组)在第10天用1mL 青霉素及1mL 2X处理，将第4号猪(第9组)在第11天用1.0mL 肌注处理，将第1号(第1组)、第4号及第11号猪在第14天用 1.0mL处理。
同时，两个试验点的猪均接受了兽医学护理。在第-3天进行动物健康 检查并记录于健康检查记录表中。通过第0天的观察确定了所有动物在疫 苗接种之前均具有良好的健康及营养状态。在攻毒前，观察到所有受试动 物均具有良好的健康及营养状态。屠体及组织通过熬炼(rendering)加以处 置。将研究动物的最后处理记录于动物处置记录上。
在第0天及第14天，分配至第1-3组及第5-8组的猪分别接受2.0mL 的指定PCV2疫苗1-4，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌的 20g×1/2＂针头分别在右颈区及左颈区肌注。分配至第4组的猪仅在第0天接 受1.0mL 2号PCV2疫苗，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌 的20g×1/2＂针头在右颈区肌注。
在第22天，所有受试猪均接受了2.0mL KLH/ICFA，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌的20g×1＂针头在左颈区肌注。在第28天，所 有受试猪在右股臀部均接受了2.0mL KLH/ICFA，使用无菌的3.0mL Luer 锁紧套口注射器和无菌的20g×1”针头。
在第25天，分配至第1-9组的猪接受了1.0mL PCV2 ISUVDL攻毒材 料(3.98log10TCID50/mL)，使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌的 20g×1”针头在右颈区肌注。使用无菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器及鼻 导管，对每只猪鼻内注射(IN)额外施用1.0mL的相同材料(每鼻孔0.5mL)。 在第46天，所有受试猪接受2.0mL PRRS MLV，使用无 菌的3.0mL Luer锁紧套口注射器和无菌的20g×1”针头在右颈区肌注。施 用PRRSV MLV以试图增强PCV2攻毒材料的毒力。
在第-3天及自第0天至第21天，每日观测受试猪的总体健康状况及不 良事件。对每一只猪的正常或异常行为、呼吸或咳嗽计分。将观测结果记 录于临床观测记录上。自第0天至第7天观测所有受试猪的注射部位反应， 并自第14天至第21天进一步观测第7组的注射部位反应。在第-3天、第 25天及第50天或在攻毒后发现猪死亡的当天，在校准后的天平上称量每只 猪的体重以测定平均每日体重增加。将体重记录于体重表中。在随机化之 前，利用第-3天的体重将猪分批。利用第25天及第50天的重量数据测定 每只猪在这些时间点时的平均每日体重增加(ADWG)。对于攻毒后及第50 天前死亡的猪，将ADWG调整为表示自第25天至死亡之日的ADWG。
为测定PCV2血清学，在第-3天及第14天，自每只小猪的眼眶静脉窦 采集静脉全血。对于每只小猪，通过将无菌毛细管插入一只眼睛的内眦中 从眼眶静脉窦收集血液，并将大约3.0mL的全血汲入4.0mL血清分离管 (Serum Separator Tube，SST)中。在第25天、第32天及第50天，使 用20g×11/2＂真空采血针(Becton Dickinson and Company，Franklin Lakes，New Jersey)、真空采血持针器及13mL SST， 自前腔静脉收集每只猪的静脉全血。将在每一时间点的血液收集记录于样 品收集记录上。使各SST中的血液凝结，随后将各SST离心并收集血清。 将收集的血清转移至无菌搭扣管中并储存于-70℃±10℃下直至日后测试为 止。由BIVI-R & D的人员测试血清样品中PCV2抗体的存在。
自第22天至第50天，每日一次观测猪的临床症状并对正常或异常行 为、呼吸或咳嗽计分。将观测结果记录于临床观测记录上。
第46号(第1组)及第98号(第9组)猪在第一试验点死亡。这两例死亡 均被归为出血死亡(bleeding death)，且未对这两只猪进行尸体剖检。在第二 试验点，对攻毒之后第50天前死亡的猪及在第50天安乐死的猪进行尸体 剖检。记录任何可见损害，并将具有损害的肺叶的百分比记录于尸体剖检 报告表中。
将来自在第二试验点尸体剖检的每只猪的扁桃体、肺、心脏及肠系膜 淋巴结的组织样品置于含有10％缓冲福尔马林的单一容器中；同时将来自 上述相同器官的另一组织样品置于(M-Tech Diagnostics Ltd.， Thelwall，UK)中并将每一置放于冰上。将每一容器适当标记。将 样品收集记录于尸体剖检报告表中。然后，提交经福尔马林固定的组织样 品及诊断申请表用于IHC测试。IHC测试依照用于接收样品、样品及切片 制备及染色技术的标准实验室程序进行。将置于中的新鲜组织 用冰袋运送至研究监控者(Study Monitor)储存(-70℃±10℃)，供将来可能 的使用。
经福尔马林固定的组织由病理学者通过IHC检查检测PCV2，并使用以 下计分系统计分：0＝无；1＝阳性染色不足，几处；2＝中度阳性染色，多处； 3＝大量阳极染色，弥漫于整个组织。为分析的目的，计分0视为＂阴性＂，大 于0的计分视为＂阳性＂。
结果
以下给出此实施例的结果。注意到第46号猪及第98号猪分别在第14 天及第25天死亡。这些死亡被归为出血死亡。在第15天，第11号猪(第1 组)气喘，同时呼吸急促。除此之外，在此观测期期间，所有猪在行为、呼 吸及咳嗽方面均正常，且任何组均未见全身性不良事件。在第0天疫苗接 种后，未见注射部位反应。在第14天疫苗接种后，第1组猪的十四(14)只 中的七(7)只(50.0％)在第15天具有计分为＂2＂的肿胀。第1组的十四(14)只中 的四(4)只(28.6％)在第16天仍具有为＂2＂的肿胀。其它组在任一次疫苗接种 后无一发生注射部位反应。
平均每日体重增加(ADWG)的结果呈现于下表18中。将死于出血的第 46号及第98号猪从组结果中排除。接受了一剂16μg vORF2-卡巴普的第4 组具有最高的ADWG(1.16±0.26磅/天)，接着为第1组、第2组、第3 组、第5组、第6组及第10组，它们的ADWG在自1.07±0.23 磅/天至1.11±0.26磅/天的范围。第9组具有最低的AD WG (0.88±0.29磅/天)，接着为第8组及第7组，它们分别具有0.93±0.33 磅/天及0.99±0.44磅/天的ADWG。
表18.组平均每日体重增加(ADWG)的总结
组 处理 N ADWG-磅/天(第25天至第50 天)或对第50天前死亡的猪的 调整值 1rORF2-16μg-IMS 1314 2剂141.08±0.30磅/天2vORF2-16μg-卡巴普2剂151.11±0.16磅/天3rORF2-16μg-卡巴普2剂151.07±0.21磅/天4vORF2-16μg-卡巴普1剂151.16±0.26磅/天5rORF2-4μg-卡巴普1剂151.07±0.26磅/天6rORF2-1μg-卡巴普2剂151.11±0.26磅/天7rORF2-0.25μg-卡巴普2剂150.99±0.44磅/天8KV>8.0log-卡巴普2剂150.93±0.33磅/天9攻毒对照140.88±0.29磅/天10严格阴性对照151.07±0.23磅/天
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
PVC2血清学结果呈现于下表19中。在第-3天，所有十(10)组均为PCV2 血清反应阴性。在第14天，所有十(10)组的PCV2效价仍然低(50-113的范 围)。在第25天，接受全细胞灭活病毒疫苗的第8组具有最高PCV2效价 (4617)，接着为接受16μg vORF2-卡巴普的第2组、接受单个剂量的16μg vORF2-卡巴普的第4组，及接受16μg rORF2-卡巴普的第3组，它们分别 具有2507、1920及1503的效价。在第32天(攻毒后一周)，第1-6组及第8 组的效价由2360至7619不等；而第7组(0.25μg rORF2-卡巴普)、第9组(攻 毒对照)及第10组(严格阴性对照)分别具有382、129及78的效价。在第50 天(尸体剖检之日)，所有十(10)组均展现高PCV2效价(≥1257)。
在第25天、第32天及第50天，接受两剂16μg rORF2-卡巴普的第3 组具有比接受两剂16μg rORF2-IMS1314的第1组更高的抗体效价。在第 25天、第32天及第50天，接受两剂16μg vORF2的第2组具有比仅接受 一剂相同疫苗的第4组更高的效价。接受递减水平的rORF2-卡巴普—分别 为16μg、4μg、1μg及0.25μg—的第3组、第5组、第6组、第7组，在 第25天及第32天展现的抗体效价相应地递减。
表19.组PCV2IFA效价的总结
组处理第-3天第14天**第25天***第32天第50天****1rORF2-16μg-IMS 1314 2剂5064646332643142vORF2-16μg-卡巴普2剂501102507562740053rORF2-16μg-卡巴普2剂50801503512067204vORF2-16μg-卡巴普1剂501131920372012575rORF2-4μg-卡巴普1剂50611867393345336rORF2-1μg-卡巴普2剂5070490236057407rORF2-0.25μg-卡巴普2剂50736338258198KV>8.0log-卡巴普2剂509746177619108179攻毒对照505350129428810严格阴性对照5050507811205
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
*为计算的目的，将≤100的IFA效价指定为效价＂50＂；将≥6400的IFA 效价指定为效价＂12,800＂
**攻毒之日
***尸体剖检之日
下面给出攻毒后临床观测的结果。表20包括异常行为、异常呼吸、咳 嗽及腹泻的观测结果。表21包括组临床症状的总发生率的总结结果，表22 包括组攻毒后死亡率的总结结果。接受16μg rORF2-IMS 1314(第1组)、16 μg rORF2-卡巴普(第3组)、1μg rORF2-卡巴普(第6组)、0.25μg rORF2-卡 巴普(第7组)的猪及攻毒对照组(第9组)中的猪在攻毒后的异常行为、呼吸 及咳嗽的发生率低。接受16μg vORF2-卡巴普(第2组)、单剂量的16μg vORF2-卡巴普(第4组)、4μg rORF2-卡巴普(第5组)、>8log KV-卡巴普(第 8组)的猪及严格阴性对照组(第10组)中的猪在攻毒后的异常行为、呼吸及 咳嗽的发生率为零。
临床症状的总发生数在各组之间变化。接受16μg vORF2-卡巴普(第2 组)、单剂量16μg vORF2-卡巴普(第4组)的猪及严格阴性对照组(第10组) 的猪具有0％的发生率；接受16μg rORF2-卡巴普(第3组)及1μg rORF2-卡 巴普(第6组)的猪具有6.7％的发生率；接受16μg rORF2-IMS 1314(第1组) 的猪具有7.1％的总发生率；接受4μg rORF2-卡巴普(第5组)、0.25μg rORF2- 卡巴普(第7组)及>8log KV疫苗的猪具有13.3％的发生率；而攻毒对照组(第 9组)中的猪具有14.3％的发生率。
总死亡率亦在各组之间变化。接受2剂KV疫苗的第8组具有20.0％的 最高死亡率；接着为第9组即攻毒对照组，及接受0.25μg rORF2-卡巴普的 第7组，它们分别具有14.3％及13.3％的死亡率。接受一剂16μg vORF2- 卡巴普的第4组具有6.7％的死亡率。其它所有组，即第1组、第2组、第 3组、第5组、第6组及第10组，具有0％的死亡率。
表20.组的攻毒后异常行为、异常呼吸及咳嗽的观测结果的总结
组处理N异常行为1异常行为2咳嗽31rORF2-16μg-IMS 1314 2剂 140/14 (0％)0/14 (0％)1/14 (7.1％)
2vORF2-16μg-卡巴普 2剂 150/15 (0％)0/15 (0％)0/15 (0％)3rORF2-16μg-卡巴普 2剂 150/15 (0％)0/15 (0％)1/15 (6.7％)4vORF2-16μg-卡巴普 1剂 150/15 (0％)0/15 (0％)0/15 (0％)5rORF2-4μg-卡巴普 1剂 151/15 (6.7％)1/15 (6.7％)0/15 (0％)6rORF2-1μg-卡巴普 2剂 150/15 (0％)0/15 (0％)1/15 (6.7％)7rORF2-0.25μg-卡巴普 2剂 150/15 (0％)1/15 (6.7％)1/15 (06.7％)8KV>8.0log-卡巴普 2剂 151/15 (6.7％)1/15 (6.7％)0/15 (0％)9攻毒对照141/14 (7.1％)1/14 (7.1％)2/14 (14/3％)10严格阴性对照150/15 (0％)0/15 (0％)0/15 (0％)
1每一组中展现任何异常行为历时至少一天的猪总数
2每一组中展现任何异常呼吸历时至少一天的猪总数
3每一组中展现咳嗽历时至少一天的猪总数
表21.组攻毒后临床症状的总发生率的总结
组处理N有临床症状猪的 发生数1 发生率1rORF2-16μg-IMS 1314 2剂 1417.1％2vORF2-16μg-卡巴普 2剂 1500.0％3rORF2-16μg-卡巴普 2剂 1516.7％4vORF2-16μg-卡巴普 1剂 1500.0％5rORF2-4μg-卡巴普 1剂 15213.3％6rORF2-1μg-卡巴普 2剂 1516.7％7rORF2-0.25μg-卡巴普 2剂 15213.3％
8 KV>8.0log-卡巴普 2剂15 2 13.3％ 9攻毒对照14214.3％10严格阴性对照1500.0％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
1每一组中展现任何临床症状历时至少一天的猪的总数
表22.组攻毒后死亡率的总结
组处理N攻毒后死亡死亡率1rORF2-16μg-IMS 1314 2剂1400.0％2vORF2-16μg-卡巴普2剂1500.0％3rORF2-16μg-卡巴普2剂1500.0％4vORF2-16μg-卡巴普1剂1516.7％5rORF2-4μg-卡巴普1剂1500.0％6rORF2-1μg-卡巴普2剂1500.0％7rORF2-0.25μg-卡巴普2剂15213.3％8KV>8.0log-卡巴普2剂15320.0％9攻毒对照14214.3％10严格阴性对照1500.0％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活
的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
在下表23中给出组平均肺损害百分比及初步诊断率(tentative diagnosis) 的总结。攻毒对照组第9组具有最高的肺损害百分比，平均值为 10.81±23.27％，接下来是接受0.25μgrORF2-卡巴普的第7组，平均值为 6.57±24.74％；接受4μgrORF2-卡巴普的第5组，平均值为2.88±8.88％；及 接受KV疫苗的第8组，平均值为2.01±4.98％。其余六(6)个组具有较低的 平均肺损害百分比，范围在0.11±0.38％至0.90±0.15％。
肺炎的初步诊断率在各组之间不同。接受两剂16μgrORF2-卡巴普的第 3组具有最低的肺炎初步诊断率，为13.3％。攻毒对照组第9组中有50％被 初步诊断为肺炎，接下来是严格阴性对照组第10组及接受两剂16μg vORF2-卡巴普的第2组，它们中分别有46.7％及40％被初步诊断为肺炎。
第1组、第2组、第3组、第5组、第9组及第10组中0％被初步诊 断为PCV2感染；而接受两剂KV疫苗的第8组的组PCV2感染初步诊断率 最高，为20％。而接受两剂0.25μg rORF2-卡巴普的第7组及接受一剂16μg vORF2-卡巴普的第4组，组PCV2感染初步诊断率分别为13.3％及6.7％。
仅在第7组中的一只猪中诊断出了胃溃疡(6.7％)；而其它9组保持无胃 溃疡。
表23.组平均肺损害百分比及初步诊断率的总结
组处理N排毒至少一天的猪数发生率1rORF2-16μg-IMS 1314 2剂1500％2vORF2-16μg-卡巴普2剂1516.7％3rORF2-16μg-卡巴普2剂15320.0％4vORF2-16μg-卡巴普1剂15213.3％5rORF2-4μg-卡巴普1剂15320.0％6rORF2-1μg-卡巴普2剂15640.0％7rORF2-0.25μg-卡巴普2剂15746.7％8KV>8.0log-卡巴普2剂151280％9攻毒对照1414100.0％10严格阴性对照151493.3％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
组IHC阳性发生率结果的总结展示于下表24中。第1组(16μg rORF2-IMS 1314)具有最低的组IHC阳性结果率，其中0％的猪对于PCV2 为阳性；接下来是第2组(16μg vORF2-卡巴普)及第4组(单剂量16μg vORF2-卡巴普)，它们分别具有6.7％及13.3％的组IHC率。攻毒对照组第9 组具有最高的IHC阳性发生率，其中100％的猪对于PCV2为阳性；接下来 是严格阴性对照组的第10组及第8组(KV疫苗)，它们分别有93.3％及80％ 的猪对于PCV2为阳性。
表24.组IHC阳性发生率的总结
组处理N排毒至少一天的猪数发生率1 rORF2-16μg-IMS 1314 2剂15 0 0％ 2 vORF2-16μg-卡巴普 2剂15 1 6.7％
3rORF2-16μg-卡巴普 2剂 15320.0％4vORF2-16μg-卡巴普 1剂 15213.3％5rORF2-4μg-卡巴普 1剂 15320.0％6rORF2-1μg-卡巴普 2剂 15640.0％7rORF2-0.25μg-卡巴普 2剂 15746.7％8KV>8.0log-卡巴普 2剂 151280％9攻毒对照1414100.0％10严格阴性对照151493.3％
vORF2＝分离的病毒ORF2；rORF2＝重组杆状病毒表达的ORF2；KV或灭活 的全细胞病毒＝在适当细胞培养物中生长的PCV2病毒
讨论
在此实施例中评估了七种PCV2疫苗，包括：以IMS 1314佐剂化的高 剂量(16μg)rORF2抗原，施用两次；以卡巴普佐剂化的高剂量(16μg)vORF2 抗原，向一组猪施用一次并向另一组猪施用两次；以卡巴普佐剂化的高剂 量(16μg)rORF2抗原，施用两次；以卡巴普佐剂化的4μg剂量的rORF2抗 原，施用两次；以卡巴普佐剂化的1μg剂量的rORF2抗原，施用两次；以 卡巴普佐剂化的低剂量(0.25μg)rORF2抗原，施用两次；以及以卡巴普佐剂 化的高剂量(>8log)灭活全细胞PCV2疫苗。总的说来，接受两剂16μg rORF2-IMS 1314的第1组的表现稍好于接受含有不同水平vORF2或rORF2 抗原并以卡巴普佐剂化的疫苗的第2组至第7组，并比接受两剂灭活全细 胞PCV2疫苗的第8组好得多。第1组具有第三高的ADWG(1.80±0.30磅/ 天)、最低的异常行为发生率(0％)、最低的异常呼吸发生率(0％)、低的咳嗽 发生率(7.1％)、低的总临床症状发生率(7.1％)，与其它三个组一样(tied with three other groups)具有最低的死亡率(0％)、第二低的平均肺损害百分比比率 (0.15±0.34％)、第二低的肺炎比率(21.4％)和最低的阳性IHC组织发生率 (0％)。然而，第1组是唯一发现注射部位反应的组，包括在第二次疫苗接 种后1天50％的受接种者(vaccinate)。施用于第2组至第7组的其它疫苗表 现得比灭活疫苗好，且几乎与施用于第1组的疫苗一样好。
接受以卡巴普佐剂化的两剂灭活PCV2疫苗的第8组，具有对于任何疫 苗组而言最差的一组结果。第8组具有最低的ADWG(0.93±0.33磅/天)、第 二高的异常行为发生率(6.7％)、最高的异常呼吸发生率(6.7％)，与其它三个 组一样具有最高的临床症状总发生率(13.3％)，具有所有组中最高的死亡率 (20％)，并具有任何疫苗组中最高的阳性IHC率(80％)。有一种担忧是所述 灭活全细胞PCV2疫苗在施用于第8组之前可能并未完全失活化，这可能能 够解释该组的不良结果。不幸的是，未获得确定性的数据来确认这种担忧。 总的说来，在此实施例的语境下，一种常规的灭活PCV2疫苗无助于减少 PCV2相关疾病。
如先前所述，除以IMS 1314佐剂化的疫苗外，受试疫苗没有与不良事 件相关。用与IMS 1314配制的疫苗进行第二次接种后1天，在50.0％的猪 中可见注射部位反应；第二次接种后2天，在28.6％的猪中可见注射部位反 应。在任何接受以卡巴普佐剂化的疫苗的猪均中未见反应。包括接种以IMS 1314佐剂化的疫苗的猪的任何进一步研究都应当继续密切监控猪的注射部 位反应。
所有猪在第-3天对于PCV2均为血清反应阴性，仅第2组在第14天具 有100以上的效价。在第25天(攻毒之日)，第8组具有最高PCV2抗体效 价(4619)，接着为第2组(2507)。除第7组、第9组及第10组外，到第32 天为止，所有组均展现了强抗体反应。到第50天为止，包括第7组、第9 组及第10组的所有组均展现了强抗体反应。
后期PCV2感染及随后的PMWS发病的一个标志是在断乳猪中生长迟 缓，在严重情况下可见体重减轻。组的平均每日体重增加是显示生长迟缓 或体重减轻的一种定量性方法。在此实施例中，各组之间ADWG不存在大 的差异。第8组具有0.88±0.29磅/天的最低ADWG，而第4组具有1.16±0.26 磅/天的最高ADWG。在此项研究的背景下，由于组间的差异不足，无法将 ADWG作为未来疫苗功效的基准。
除体重减轻外，PMWS相关的临床症状还有呼吸困难、嗜睡(leghargy)、 皮肤苍白，有时还有黄疸。在此实施例中，对于每一组，异常行为、异常 呼吸及咳嗽均不常见。该项研究证明，该攻毒模型及攻毒病毒株并不导致 压倒性的(overwhelming)临床症状，这不是作为疫苗功效的基准的有力参数。
总的说来，在此实施例中死亡率不高，而在攻毒对照组中缺乏高死亡 率，限制了该参数作为疫苗功效基准。在第46天前，第4组及第7组分别 在十五只猪中有一只死亡，第9组十四只猪中有两只死亡，且在第8组十 五只猪中有三只死亡。由于攻毒对照组第9组未展现PCV2临床症状，而且 到第46天为止此组中出现仅两例死亡，因此在第46天对所有猪施用猪呼 吸及生殖综合征病毒(PRRSV)MLV疫苗。早些时候的研究已利用 PRRS MLV作为免疫刺激剂来加剧PCV2相关的PMWS病， 且在这些早期研究中死亡率较高。在第46天施用PRRS疫苗后不久发生两 例死亡——第4组在第46天有一例死亡，第7组在第47天有一例死亡— —其可能与PRRS疫苗的施用并不相关。到第50天为止，接受两剂灭活疫 苗的第8组具有最高死亡率(20％)，接着是死亡率分别为14.3％及13.3％的 第9组(攻毒对照)及第7组(0.25μg rORF2-卡巴普)。总的说来，在此实施例 的攻毒后观测期中较晚的时候将PRRS疫苗施用于攻毒模型，没有显著提高 死亡率。
在患有继发于PCV2感染的PMWS的猪中的可见损害通常由与一种或 多种以下症状组合的一般淋巴结病组成：(1)具有小叶间水肿之间质性肺炎， (2)皮肤苍白或黄疸，(3)斑点状萎缩性肝，(4)胃溃疡及(5)肾炎。在尸体剖检 (第50天)时，在任何组中均未见黄疸、肝炎及肾炎。在第7组的一只猪中 可见胃溃疡，但未特定检查淋巴结病。基于符合PCV2感染的损害的存在， 初步诊断三个组中有至少一只猪有PCV2(PMWS)。接受两剂灭活疫苗的第 8组有20％初步诊断有PCV2，而第7组及第4组分别有13.3％及6.7％初步 诊断有PCV2。在尸体剖检时，平均肺损害百分比计分各组之间不同。第1 组、第2组、第3组、第4组、第6组及第10组具有0.11±0.38％至0.90±0.15％ 范围内的低肺损害百分比计分。如所预期的，攻毒对照组第9组具有最高 的平均肺损害百分比计分(10.81±23.27％)。在四个组中，由于这些组中各有 一至三只猪具有极高的肺损害计分，因此提高了平均肺损害百分比计分。 肺损害为红色/紫色且坚实的。通常，与PMWS相关的肺损害被描述为黄褐 色、不可萎陷并伴有小叶间水肿。在此研究中记录的肺损害与PCV2感染不 相关或可能存在第二肺传染原。在此研究的语境中，肺损害百分比计分可 能不反映由PCV2所致肺感染量的真实量度。同样，可能肺炎的初步诊断也 可能被过度利用了。任何具有肺损害——有些小至0.10％——的猪，都在被 初步诊断有肺炎之列。在此实施例中，可见损害及肺损害百分比的组间差 异不足，无法作为疫苗功效的基准。
IHC结果所展示的组间差异最大。第1组(16μg rORF2-IMS 1314)具有 最低的PCV2抗原阳性IHC结果(0％)；而第9组及第10组具有最高的阳性 IHC结果，发生率分别为100％及93.3％。分别接受16μg、4μg、1μg或0.25 μg rORF2抗原的第3组、第5组、第6组及第7组IHC阳性率分别为20％、 20％、40％及46.7％。接受两剂以卡巴普佐剂化的16μg vORF2的第2组具 有6.7％的IHC阳性率，而仅接受一剂相同疫苗的第4组具有13.3％的IHC 阳性率。由于此测试的客观性且IHC结果与预期结果相关的事实，IHC测 试可能是作为疫苗功效基准的最佳参数之一。
因此，在本发明的一个方面中，测定以卡巴普佐剂化的PCV2 rORF2 抗原在CDCD猪模型中面对PCV2攻毒的最小保护性剂量(MPD)。第3组、 第5组、第6组及第7组各自接受两剂以卡巴普佐剂化的rORF2抗原，但 rORF2抗原的水平各组不同。第3组、第5组、第6组及第7组分别各自 接受16μg、4μg、1μg或0.25μg rORF2抗原。通常，减少rORF2抗原的 水平会降低PCV2抗体效价，并提高死亡率、平均肺损害百分比及IHC阳 性组织的发生率。在接受不同水平的rORF2-卡巴普的四个组中，分别接受 两剂16μg rORF2抗原或4μg rORF2抗原的第3组及第5组各自具有仅20％ 的IHC阳性率，且各自具有类似的抗体效价。总的说来，基于IHC阳性结 果，施用两次的rORF2抗原的最小保护性剂量大约为4μg。
在本发明的另一方面中，评估重组(rORF2)及VIDO R-1(vORF2)PCV2 抗原的抗原性。第2组接受两剂16μg vORF2，第3组接受两剂16μg rORF2。 两种疫苗均以卡巴普佐剂化。发现两种疫苗都是安全的，且两者都具有0％ 的死亡率。在第25天，第2组具有2507的PCV2抗体效价，而第3组具有 1503的PCV2抗体效价。第3组具有比第2组低的平均肺损害百分比计分 (0.11±0.38％对0.90±0.15％)，但第2组具有比第3组低的IHC阳性发生率 (6.7％对20％)。总的说来，两种疫苗的抗原性类似，但与vORF2相关的IHC 结果稍好。
在本发明的另一方面中，测定两种不同佐剂(卡巴普及IMS 1314)的适用 性。第1组及第3组两者均接受了两剂含有16μg rORF2抗原的疫苗，但第 1组接受以IMS 1314佐剂化的抗原，而第3组接受以卡巴普佐剂化的抗原。 两个组具有基本上相同的ADWG、基本上相同的攻毒后临床体征发生率、 相同的死亡率及基本上相同的平均肺损害百分比；但第1组具有0％的IHC 阳性率，而第3组具有20％的IHC阳性率。然而，接受以卡巴普佐剂化的 疫苗的第3组在第25天、第32天及第50天具有比接受以IMS1314佐剂 化的疫苗的第1组高的IFAT PCV2效价。总的说来，尽管以IMS1314佐剂 化的PCV2疫苗确实提供了更好的IHC结果，但其提供的抗PCV2感染保 护并不具有压倒性的优势，而且其确实诱发了注射部位反应。而以卡巴普 佐剂化的PCV2疫苗表现得几乎与以IMS 1314佐剂化的疫苗一样好，却不 与任何不良事件相关。
在本发明的另一方面中，测定PCV2 ORF2作为1ml1剂量产品的可行 性。第2组及第4组都在第0天接受了以卡巴普佐剂化的vORF2疫苗，而 第2组在第14天又接受了一剂。第4组的ADWG较第2组稍高，平均肺 损害百分比较第2组低，但第2组在第25天、第32天及第50天的IFAT PCV2 效价较高，IHC阳性组织发生率稍低。这两个组的所有其它结果是类似的。 总的说来，以卡巴普佐剂化的一剂vORF2的表现类似于两剂的相同疫苗。
序列表
<110>贝林格尔.英格海姆维特梅迪卡有限公司(BOEHRINGER INGELHEIM VETMEDICA，INC.)
<120>多价PCV2免疫原性组合物和制备此类组合物的方法
<150>未知
<151>2005-12-30
<160>11
<170>PatentIn version 3.3
<210>1
<211>8
<212>DNA
<213>人工
<220>
<223>这是修饰的Kozak’s序列.
<400>1
<210>2
<211>6
<212>DNA
<213>人工
<220>
<223>这是重组Eco R1序列.
<400>2
<210>3
<211>713
<212>DNA
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>3
<210>4
<211>713
<212>DNA
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>4
<210>5
<211>233
<212>PRT
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>5
<210>6
<211>233
<212>PRT
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>6
<210>7
<211>756
<212>DNA
<213>人工
<220>
<223>该序列来自2型猪圆环病毒(Porcine circovirus)，可读框2，以及来自pGEM T-easy载体 的一部分
<400>7
<210>8
<211>10387
<212>DNA
<213>人工
<220>
<223>这是2型猪圆环病毒(Porcine circovirus)ORF2构建体，包括杆状病毒和pGEM T-easy编码
序列
<400>8
<210>9
<211>20
<212>PRT
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>9
<210>10
<211>19
<212>PRT
<213>猪圆环病毒(Porcine circovirus)
<400>10
<210>11
<211>233
<212>PRT
<213>人工
<220>
<223>这是2型猪圆环病毒(Porcine circovirus)可读框2的氨基酸序列
<400>11