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一种开放式植物组织培养育苗方法.pdf

  • 上传人:柴****2
  • 文档编号:6603457
  • 上传时间:2019-09-02
  • 格式:PDF
  • 页数:11
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN200910060484.8

    申请日:

    20090109

    公开号:

    CN101455180B

    公开日:

    20120125

    当前法律状态:

    有效性:

    失效

    法律详情:

    IPC分类号:

    A01H4/00,A61L2/16

    主分类号:

    A01H4/00,A61L2/16

    申请人:

    华中科技大学

    发明人:

    余龙江,杨英,何峰,金文闻,季家兴

    地址:

    430074 湖北省武汉市洪山区珞喻路1037号

    优先权:

    CN200910060484A

    专利代理机构:

    华中科技大学专利中心

    代理人:

    曹葆青

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    内容摘要

    本发明涉及一种开放式植物组织培养育苗方法,属于农林领域的植物组织培养育苗技术。该方法在有菌的室温自然环境条件下进行:在培养基中添加植物提取物抑菌剂,以1L培养基计算,抑菌剂的添加量为4~15g,制备抑菌培养基,再利用该抑菌培养基进行接种培养。抑菌剂有两类,其一包括大蒜提取物、黄连提取物和忍冬叶提取物,其质量百分比为:20~100%∶0~40%∶0~50%;其二包括甘草根提取物、桂花提取物和石蒜提取物,其质量比为:10~100%∶0~80%∶0~50%。本发明方法可使植物组织培养育苗过程脱离严格无菌的操作环境,在开放的有菌环境中进行植物组织培养育苗,这从根本上简化了植物组织培养育苗环节,提高了工作效率,大大降低了育苗成本。

    权利要求书

    1.一种开放式植物组织培养育苗方法,其特征在于,该方法在有菌的室温自然环境条件下进行:在培养基中添加植物提取物抑菌剂,以1 L培养基计算,植物提取物抑菌剂的添加量为4~15 g,制备抑菌培养基,再利用该抑菌培养基进行接种培养;所述植物提取物抑菌剂的第一种配方包括大蒜提取物、黄连提取物和忍冬叶提取物,其质量百分比为:20~100%:0~40%:0~50%;所述植物提取物抑菌剂的第二种配方包括甘草根提取物、桂花提取物和石蒜提取物,其质量百分比为:10~100%:0~80%:0~50%。 2.如权利要求1所述的开放式植物组织培养育苗方法,其特征在于,在所述植物提取物抑菌剂的第一种配方中,大蒜提取物中的大蒜素的重量百分比大于或等于6.0%,黄连提取物中黄连素的重量百分比大于或等于20.0%,忍冬叶提取物中绿原酸的重量百分比大于或等于10.0%。 3.如权利要求1所述的开放式植物组织培养育苗方法,其特征在于,在所述植物提取物抑菌剂的第二种配方中,甘草根提取物中的甘草黄酮纯度大于或等于70%,桂花提取物中的桂花黄酮纯度大于或等于40%,石蒜提取物中的石蒜生物碱纯度大于或等于2%。

    说明书

    技术领域

    本发明属于农林领域的植物组织培养育苗技术,具体涉及一种开放式 植物组织培养工厂化育苗方法。即在培养基中添加采用植物提取物配制而 成的抑菌剂的条件下,使植物组织培养育苗过程脱离严格无菌的操作环境, 尤其是不需要高压灭菌,可在开放的带菌环境中进行植物组织培养育苗, 从根本上简化了植物组织培养育苗环节,提高了育苗工作效率,大大降低 了植物组织培养育苗成本。

    背景技术

    植物组织培养是本世纪初开始,以植物生理学为基础发展起来的一项 植物繁殖技术。植物组织培养又称植物克隆,指通过无菌操作把植物的任 何器官、组织或细胞接种于人工配制的含有营养物质和植物生长调节物质 等组成的培养基上,在人工控制环境下进行离体培养,使其生长、分化形 成完整植株的过程。植物组织培养为植物的快速繁殖提供了新的手段,接 种的一个小外植体,可以被诱导形成愈伤组织并再生芽和根,继代多次后, 即可建立无性繁殖系,大量生产试管苗。建立植物试管苗繁育体系,有着 非常重要的意义,其一,快速繁殖不受季节限制,可在短期内获得大量个 体;其二,选择优良单株扩繁,可保证品种的纯合性,可对高产、高抗、 优质新品种进行快速推广;其三,通过脱毒离体培养,可以培育出不带任 何病原物和病毒的试管苗,减少病害的发生。因此,利用植物组织培养快 繁技术,在提高繁殖系数、有效防止种性退化和生产高质量的种苗中起到 了决定性作用。经过近一个世纪的发展,植物组织培养技术以其独特的优 势,作为现代生物技术的一个重要手段现已在工厂化育苗、种苗脱毒复壮、 遗传育种、种质资源的保存与交换等领域得到了广泛的应用。目前,已在 多种经济植物中建立了相应的良种快速繁育体系。

    发展至今,植物组织培养的理论研究已经相当精深,但它的技术环节 还存在不少问题。目前广泛使用的植物组织培养育苗是在密闭、无菌环境 下进行,包括接种外植体、诱导愈伤组织、愈伤组织分化形成试管苗、试 管苗的移栽等几个步骤。这种组织培养方式存在四个缺陷:培养基污染难 以解决、试管苗成本过高、规模化生产技术不成熟和试管生产技术繁琐。

    由于富含营养的培养基既适合植物组织生长发育,更适合杂菌的滋生。 因此,不论是在植物组织培养的试验研究中还是在工厂化生产中,污染是 普遍存在的问题,它严重地影响了植物苗木的规模化生产、植物试管基因 库的构建、生产成本和宝贵材料保全等方面。因此,控制污染成了组织培 养中的首要技术。而影响污染的因素多种多样,如外植体的种类、取材的 时间、预处理方法、消毒剂的种类、消毒方法、培养基和器皿灭茵、操作 人员和工作环境的要求等都与污染密切相关,因此,使得污染问题难以防 治,成为限制组织培养产业化的重要原因之一。

    此外,传统的植物组织培养方式均是在严格无菌的封闭条件下进行的, 无菌操作是常规植物组织培养的一项严格要求,如要对培养基、培养器皿 高温灭菌,任何用于操作和处理植物组织的器皿都要消毒,其操作过程都 必须在无菌环境如超净工作台内进行。如果能够建立起不灭菌的组织培养 技术,还能够将污染率降低到可接受范围内,组织培养技术将得到巨大的 飞跃。因此,寻找一种无需灭菌程序的开放式组织培养技术非常重要。植 物开放式组织培养,即在抑菌剂的作用下,使植物组织培养脱离严格无菌 的操作环境,不需高压灭菌和超净工作台,在开放的有菌环境中进行植物 组织培养,从根本上简化组织培养环节,降低成本。

    众所周知,传统组织培养过程中的污染,主要表现为培养基的污染, 营养丰富的培养基为细菌、真菌提供了适宜的滋生场所。因此,只要将培 养基改造成既可保证植物组织正常生长,又具有抑菌功能的培养基,菌类 一旦失去滋生场所,就不会对组织培养过程产生危害。改造培养基的关键 在于找到一种能够添加到培养基的广谱抑菌剂。目前,广谱抑菌剂的筛选 一直是困扰植物组织培养专家的难题,有学者对抑菌剂及组织培养关系进 行过研究。单文修等采用在培养基中添加大量化学杀菌消毒剂苯甲酸类、 山梨酸类、酚类、含氯化合物类、季胺盐类、脲类、胍类或天然消毒抑菌 剂,建立了一种非无菌条件下的植物组织培养方法(申请号:200410024035.5 公开号:CN1628507A)。他们对常用抗生素、抗菌素、防腐剂做了大量单 一或组合添加到培养基中的试验,实验证明,常用抗生素、抗菌素、防腐 剂对植物组织培养中的污染具有的一定的防治作用,但是针对不同的植物 品种要想找到一种合适的处理组合是比较困难的,往往当培养基抗菌时, 植物组织的生长也受到抑制;而植物组织能正常生长时,却无法获得满意 的抗菌效果。这也是国内外专家学者普遍遇到的障碍。其原因之一是还没 有一种抗生素对所有的细菌都有效,而且药效期短;二是有些抗菌素、防 腐剂在有效浓度下,其杀菌、抗菌离子对植物组织直接产生伤害。

    为此,我们从多种植物中提取具有抑菌活性物质,建立了具有良好抑 菌效果的植物提取物资源库,研制了适合于开放式组织培养的抑菌剂,使 植物组织培养育苗过程可在开放的带菌环境中进行,从根本上简化了育苗 环节,提高了工作效率,大大降低了植物组织培养育苗成本。

    发明内容

    本发明的目的在于建立一种低成本、高效益的开放式植物组织培养育 苗方法,在添加植物提取物配制而成的抑菌剂的条件下,使植物组织培养 育苗过程脱离严格无菌的操作环境,尤其是不需要高压灭菌,可在开放的 带菌环境中进行植物组织培养育苗,简化了植物组织培养育苗环节,提高 了工作效率,降低了植物组织培养育苗成本。

    本发明提供的开放式植物组织培养育苗方法,其特征在于,该方法在 有菌的室温自然环境条件下进行:在培养基中添加植物提取物抑菌剂,以 1L培养基计算,植物提取物抑菌剂的添加量为4~15g,制备抑菌培养基, 再利用该抑菌培养基进行接种培养。

    上述植物提取物抑菌剂可以采用下述两类,其一包括大蒜提取物、黄 连提取物和忍冬叶提取物,其质量百分比为:20~100%∶0~40%∶0~50%; 其二包括甘草根提取物、桂花提取物和石蒜提取物,其质量比为:10~100%∶ 0~80%∶0~50%。

    使用本发明所提供的抑菌培养基,可用于植物的种子、根、茎、叶和 愈伤组织等接种和培养,以及试管苗的移栽,可以有效地减少植物组织培 养过程中微生物的污染,保证植物组织、器官、细胞和试管苗的正常发育 生长。

    本发明所述的接种是指在有菌的自然环境条件下,将上述植物组织或 试管苗接种在抑菌培养基中,除了无需进行无菌处理程序外,具体接种操 作手续与常规组织培养的接种手续相同。

    由于使用了抑菌培养基,因而本发明所述的开放式植物组织培养方法 中的接种及培养过程无需再进行严格的无菌处理(无需高压灭菌、无菌接 种和无菌培养),改变了常规植物组织培养全过程中必须进行无菌处理的传 统观念,可以省略了高压灭菌锅、超净工作台、紫外灯等设备及严格无菌 的环境设施,并可以将易损的玻璃器皿更换为价格低廉、操作简便的塑料 杯,省略了繁琐的消毒手续,大大降低了生产成本。

    本发明与传统无菌组织培养相比,具有简化环节,节省成本等特点, 具体如下:

    1.培养容器的选择:在传统组织培养中,培养容器需选择耐高温高压 的玻璃瓶和聚丙烯封口膜。而在开放式组织培养中,在培养基中添加抑菌 剂,让抑菌培养基代替高压灭菌,并可用廉价的一次性塑料杯作为培养容 器,用保鲜膜封口,这大大降低了成本。

    2.接种器具的灭菌:传统组织培养中,接种用的剪子、镊子、刀片等 均采用高压灭菌或酒精灯灼烧灭菌,而在开放组织培养中,接种器具用75% 酒精擦洗后,即可有效的防止由于接种器具引发的污染。

    3.接种方法:在接种室内,用75%的酒精将接种台面和手擦干净,揭 开封口膜一角,用接种器具把植物接种到培养基上,再将杯口封严即可。

    4.技术环节与成本分析:开放式组织培养省去了高压灭菌和超净工作 台接种,简化了组织培养环节。由于制备抑菌剂的材料资源丰富,生产工 艺简单,消毒液也能重复利用,因此开放式组织培养与传统组织培养相比, 大大节省成本。

    具体实施方式

    下面通过借助以下实施例将更加详细说明本发明,且以下实施例仅是 说明性的,本发明并不受这些实施例的限制。

    开放式植物组织培养育苗可以按照以下步骤进行:

    (1)抑菌培养基的配制

    植物组织培养所使用的培养基种类很多,如MS、N6、White等,本专 利中植物组织培养以MS培养基为例进行说明。配制1L MS培养基,然后 按照每升培养基添加4~15g抑菌剂标准,将抑菌剂添加至基本培养基中, 用0.1mol/L NaOH或0.1mol/L HCl调节pH至6.0,配制成抑菌培养基(固 体培养基中加入1%琼脂)。采用透明的塑料杯分装,将分装好培养基的容 器盖上棉塞或用保鲜膜封口,培养基冷却后即可接种。

    (2)接种

    接种过程在开放环境中进行。除了培养基不需灭菌、不需严格无菌的 接种环境外,其它接种步骤与传统的接种程序一样,即:先用消毒剂对外 植体进行消毒,获得无菌外植体,然后在接种台面上,将消毒后的外植体 接种至添加有抑菌剂的培养基中,用保鲜膜封口。

    (3)初代培养

    将接种材料置于培养室中培养(培种室无需灭菌消毒),以获得愈伤组 织,一个周期后,按照上述操作进行继代培养。

    (4)愈伤组织的分化

    将愈伤组织接种于抑菌分化培养基中进行培养,生根长芽,形成试管 苗。

    (5)试管苗的移栽

    因为试管苗的整个培养过程为开放式培养,因此试管苗的移栽不需要 炼苗。将试管苗取出后,用清水将其根部冲洗干净,再用抑菌剂浸泡试管 苗根部,30分钟后用清水冲洗干净后移栽。

    实施例一魔芋开放式组织培养

    魔芋开放式组织培养按照以下步骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    ①大蒜提取物的制备

    剥皮后的新鲜白皮大蒜1kg,洗净后加入水300ml,用打浆机搅打20 分钟得到蒜泥,倒入密封罐中,滴加0.02mol/L的盐酸并不断搅拌至蒜泥 pH=6,在温度40℃下密封静置,让蒜泥中的内源蒜酶解蒜氨酸4小时以 产生大蒜素。酶解完成后,将蒜浆转移到搅拌罐中,加入4L 95%食用乙醇, 充分搅拌后,板框过滤得到大蒜素提取液,转移到真空减压浓缩罐中,60℃ 下减压蒸馏至干,得到黄色大蒜提取物,经高效液相色谱法检测大蒜素含 量等于6.98%。

    ②黄连提取物的制备

    称取干燥的黄连根茎1kg,粉碎机粉碎后过80目筛网,黄连粉末置于 提取罐中加入3L 95%工业乙醇,95℃浸提5小时,通过板框过滤得到黄连 提取液,转移到真空减压浓缩罐中,55℃下减压蒸馏至干,得到黄连提取 物,经高效液相色谱法检测黄连素含量等于20%。

    ③忍冬叶提取物的制备

    称取干燥的忍冬叶1kg,粉碎机粉碎后过60目筛网,忍冬叶粉末置于 提取罐中加入2L 80%工业乙醇,调节pH值5.0,95℃浸提3小时,通过板 框过滤得到忍冬叶提取液,转移到真空减压浓缩罐中,减压蒸馏至干,得 到忍冬叶提取物。经高效液相色谱法检测绿原酸含量等于10%。

    将三种提取物按照附表1所述的5种比例分别混合,制备成5种抑菌 剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制5份1L MS培养基,于其中加入1%琼脂,完全溶解后,添加激 素:6-BA 2mg/L+NAA 0.1mg/L+IBA 0.2mg/L,然后分别加入(1)中所述 的5种抑菌剂,添加量为10g/L,配制成5种固体抑菌培养基。采用透明的 塑料杯分装,将分装好培养基的容器用保鲜膜封口,培养基冷却后即可接 种。

    (3)接种魔芋球茎

    接种经常规消毒后的魔芋球茎,进行培养。对照1为(2)中所述的不 添加抑菌剂的固体培养基;对照2为(2)中所述的不添加抑菌剂的固体培 养基,而且培养基需要灭菌。每组接种20瓶,每瓶接种5块外植体,共100 块外植体。抑菌培养基对魔芋愈伤组织诱导及芽形成的影响见附表1。

    实施例二开放式条件下光果甘草、胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发

    开放式条件下光果甘草、胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发按照以下步 骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    按照实施例一中所述的制备方法制备大蒜提取物、黄连提取物和忍冬 叶提取物,并将三种提取物按照附表2所述的5种比例分别混合,制备成5 种抑菌剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制5份1L MS培养基,于其中加入1%琼脂,即为种子萌发培养基。 分别加入(1)中所述的5种抑菌剂,添加量为4g/L,配制成5种固体抑菌 培养基。采用透明的塑料杯分装,将分装好培养基的容器用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接种。

    (3)甘草种子接种

    用浓硫酸分别浸泡光果甘草、胀果甘草和乌拉尔甘草种子1h后,用清 水冲洗干净,经常规消毒后,分别接种于种子萌发培养基中,每个处理接 种20瓶,每瓶接种10粒种子,共200粒种子。对照1为(2)中所述的种 子萌发培养基,且培养基不添加抑菌剂;对照2为(2)中所述的种子萌发 培养基,且培养基不添加抑菌剂,但培养基需要灭菌。抑菌培养基对三种 甘草种子萌发的影响见附表2。

    实施例三甘草开放式组织培养育苗

    甘草开放式组织培养育苗按照以下步骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    ①甘草根提取物的制备

    准确称取干燥的甘草根茎1kg,粉碎机粉碎后过80目筛网,甘草粉末 置于提取罐中加入3L 50%工业乙醇,超声提取1小时,通过板框过滤得到 甘草黄酮提取液,转移到真空减压浓缩罐中,55℃下减压蒸馏至干,得到 甘草根提取物,其中甘草黄酮的纯度等于70%。

    ②桂花提取物的制备

    准确称取干燥的桂花1kg,加入500ml 90%乙醇,解吸15分钟。再加 入4L 80%的乙醇回流提取15分钟,提取2次,过滤,滤液转移到真空减 压浓缩罐中,55℃下减压蒸馏至干,得到桂花提取物,其中桂花黄酮的纯 度等于40%。

    ③石蒜提取物的制备

    准确称取干燥的石蒜1kg,粉碎机粉碎后过80目筛网,石蒜粉末置于 提取罐中加入10L甲醇,75℃回流提取3小时,通过板框过滤得到石蒜提 取液,转移到真空减压浓缩罐中,55℃下减压蒸馏至干,得到石蒜提取物, 经高效液相色谱法检测石蒜生物碱的纯度等于2%。

    将三种提取物按照附表3所述的5种比例分别混合,制备成5种抑菌 剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制5份1 L MS培养基,于其中加入1%琼脂,完全溶解后,添加激 素:6-BA 2mg/L+KT 0.5mg/L+IBA 0.5mg/L后,然后分别加入(1)中所 述的5种抑菌剂,添加量为4g/L,配制成5种抑菌培养基。采用透明的塑 料杯分装,将分装好培养基的容器盖上棉塞,培养基冷却后即可接种。

    (3)接种胀果甘草下胚轴

    接种经常规消毒后的胀果甘草、光果甘草下胚轴,进行培养。对照1 为(2)中所述的不添加抑菌剂的固体培养基;对照2为(2)中所述的不 添加抑菌剂的固体培养基,而且培养基需要灭菌。每组接种20瓶,每瓶接 种6个茎段,共120个茎段。抑菌培养基对胀果甘草、光果甘草愈伤组织 诱导率和分化率的影响见附表3。

    实施例四开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化

    开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化按照以下步骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    按照实施例一中所述的制备方法制备大蒜提取物、黄连提取物和忍冬 叶提取物,并将三种提取物按照附表4所述的5种比例分别混合,制备成5 种抑菌剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制MS培养基,于其中加入1%琼脂,完全溶解后,添加激素。种子 萌发培养基中添加激素为6-BA 1.0mg/L,诱导下胚轴分化培养基中添加激 素为6-BA 0.1mg/L+NAA 0.01mg/L。分别加入(1)中所述的5种抑菌剂, 添加量为15g/L,配制成抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装,将分装好培 养基的容器用保鲜膜封口,培养基冷却后即可接种。

    (3)刺山柑种子接种

    用浓硫酸浸泡刺山柑种子1h后,用清水冲洗干净,经常规消毒后,接 种于种子萌发培养基中,每个处理接种10瓶,每瓶接种15粒种子,共150 粒种子。当种子萌发后,切取下胚轴,置于分化培养基中,每组接种20瓶, 每瓶接种6个茎段,共120个茎段。对照1为(2)中所述的不添加抑菌剂 的培养基;对照2为(2)中所述的不添加抑菌剂的培养基,但是培养基需 要灭菌。抑菌培养基对刺山柑种子萌发和下胚轴分化的影响见附表4。

    实施例五开放式条件下魔芋试管苗的形成和移栽

    开放式条件下魔芋试管苗的形成和移栽按照以下步骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    按照实施例三中所述的制备方法制备甘草根提取物、桂花提取物和石 蒜提取物,并将三种提取物按照附表5所述的5种比例分别混合,制备成5 种抑菌剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制1L MS培养基,于其中加入1%琼脂,完全溶解后,添加激素:6-BA 1.5mg/L+NAA 0.3mg/L后,分别加入(1)中所述的5种抑菌剂,添加量 为15g/L,配制成抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装,将分装好培养基的 容器用保鲜膜封口,培养基冷却后即可接种。

    (3)接种魔芋不定芽

    接种经常规消毒后的魔芋不定芽,进行培养,使之分化形成试管苗。 对照1为(2)中所述的不添加抑菌剂的培养基;对照2为(2)中所述的 不添加抑菌剂的培养基,而且培养基需要灭菌,每组接种20瓶,每瓶接种 5个不定芽,共100个不定芽。

    (4)液体抑菌剂的制备

    分别取(1)中所述的5种抑菌剂,每种称取5g溶于1L水中,搅拌均 匀后制得5种液体抑菌剂,分别用于试管苗根部的浸泡。

    (5)试管苗的移栽

    待不定芽形成粗壮的试管苗后,将试管苗取出,用清水将其根部冲洗 干净,再将其根部分别置于(4)中制备的5种液体抑菌剂中,浸泡30分 钟后,用清水冲洗干净,移栽。抑菌培养基对魔芋试管苗的形成和移栽的 影响见附表5。

    实施例六开放式条件下红豆杉外植体诱导形成愈伤组织

    开放式条件下红豆杉外植体诱导形成愈伤组织按照以下步骤进行:

    (1)抑菌剂的制备:

    按照实施例三中所述的制备方法制备甘草根提取物、桂花提取物和石 蒜提取物,并将三种提取物按照附表6所述的5种比例分别混合,制备成5 种抑菌剂。

    (2)抑菌培养基的配制

    配制5份1L MS培养基,于其中加入1%琼脂,完全溶解后,添加激素: 二氯苯氧乙酸0.2mg/L和α-萘乙酸0.5mg/L,然后分别加入(1)中所述的5 种抑菌剂,添加量为8g/L,配制成5种抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器盖上棉塞,培养基冷却后即可接种。

    (3)接种红豆杉外植体

    接种经常规消毒后的中国红豆杉、东北红豆杉和曼地亚红豆杉嫩茎, 进行培养。对照1为(2)中所述的不添加抑菌剂的固体培养基;对照2为 (2)中所述的不添加抑菌剂的固体培养基,而且培养基需要灭菌。每组接 种20瓶,每瓶接种6个茎段,共120个茎段。抑菌培养基对中国红豆杉、 东北红豆杉和曼地亚红豆杉愈伤组织诱导率的影响见附表6。

    附表1开放式条件下魔芋愈伤组织诱导和芽的形成

    大蒜、黄连、忍冬 叶提取物质量比 污染瓶数   (瓶)   愈伤组织 诱导率(%) 出芽数量   (个)   100%∶0∶0     1     92     373  20%∶30%∶50%     4     70     271  40%∶30%∶30%     2     85     336  60%∶20%∶20%     1     94     375  40%∶40%∶20%     2     89     358  对照1     20     0     0  对照2     1     93     361

    附表2开放式条件下光果甘草、胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发

    大蒜、黄连、忍冬叶 提取物质量比 光果甘草种子 萌发率% 胀果甘草种子 萌发率% 乌拉尔甘草种子 萌发率%   100%∶0∶0     88     97     91   20%∶30%∶50%     62     71     65   40%∶30%∶30%     77     79     83   60%∶20%∶20%     83     92     88   40%∶40%∶20%     79     84     81   对照1     51     75     59   对照2     89     95     93

    附表3开放式条件下胀果甘草和光果甘草愈伤组织诱导和分化

    甘草根、桂花、石蒜 提取物质量比 胀果甘草愈伤 组织诱导率% 胀果甘草 分化率% 光果甘草愈伤 组织诱导率% 光果甘草 分化率%   100%∶0∶0     97     51     92     43   10%∶80%∶10%     91     44     88     34   30%∶20%∶50%     83     38     78     37   60%∶20%∶20%     97     55     91     46   40%∶30%∶30%     93     47     89     39   对照1     0     0     0     0   对照2     95     49     89     43

    附表4开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化

      大蒜、黄连、忍冬叶   提取物质量比 刺山柑种子 萌发率% 下胚轴分化 出芽率%   试管苗的   生长情况     100%∶0∶0     33     9 苗粗壮浓绿     20%∶30%∶50%     19     3 苗纤细浓绿     40%∶30%∶30%     28     5 苗纤细浓绿     60%∶20%∶20%     37     11 苗粗壮浓绿     40%∶40%∶20%     33     5 苗纤弱     对照1     15     0 无苗     对照2     36     11 苗粗壮浓绿

    附表5开放式条件下魔芋试管苗的形成及移栽

    甘草根、桂花、石 蒜提取物质量比 成苗率 (%) 试管苗的成活率 (%)  100%∶0∶0     46     41  10%∶80%∶10%     33     25  30%∶20%∶50%     42     36  60%∶20%∶20%     43     36  40%∶30%∶30%     39     33  对照1     0     0  对照2     47     38

    附表6开放式条件下中国红豆杉、东北红豆杉和曼地亚红豆杉外植体形成 愈伤组织的影响

    甘草根、桂花、石 蒜提取物质量比 中国红豆杉愈伤 组织诱导率% 东北红豆杉愈伤 组织诱导率% 曼地亚红豆杉愈 伤组织诱导率%  100%∶0∶0     97     91     92  10%∶80%∶10%     88     86     81  30%∶20%∶50%     85     88     83  60%∶20%∶20%     97     92     91  40%∶30%∶30%     93     95     89     对照1     0     0     0     对照2     95     91     89

    本发明不仅仅局限于上述具体实施方式,本领域一般技术人员根据本 发明公开的内容,可以采用其它多种具体实施方式实施本发明,因此,凡 是采用本发明的技术方案和思路,做一些简单的变化或更改的设计,都落 入本发明保护的范围。

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    一种 开放式 植物 组织培养 育苗 方法
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