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1、(10)授权公告号 CN 101455180 B (45)授权公告日 2012.01.25 CN 101455180 B *CN101455180B* (21)申请号 200910060484.8 (22)申请日 2009.01.09 A01H 4/00(2006.01) A61L 2/16(2006.01) (73)专利权人 华中科技大学 地址 430074 湖北省武汉市洪山区珞喻路 1037 号 (72)发明人 余龙江 杨英 何峰 金文闻 季家兴 (74)专利代理机构 华中科技大学专利中心 42201 代理人 曹葆青 张薪薪等 . 抑菌剂在开放组培中的使用 及效果研究 .辽宁师范大学学报 。
2、( 自然科学 版 ) .2005,( 第 04 期 ), 崔刚等 . 植物开放式组织培养研究初探 . 山 东农业大学学报 ( 自然科学版 ) .2004,( 第 04 期 ), 李奇等 . 浅谈中草药对抗真菌的研究 .中 国社区医师 ( 医学专业半月刊 ) .2008,( 第 08 期 ), 崔刚等 . 葡萄开放式组织培养外植体系的建 立 .中国农学通报 .2004,( 第 06 期 ), 崔刚等 . 植物开放式组织培养研究初探 . 山 东农业大学学报 ( 自然科学版 ) .2004,( 第 04 期 ), (54) 发明名称 一种开放式植物组织培养育苗方法 (57) 摘要 本发明涉及一种开放。
3、式植物组织培养育苗方 法, 属于农林领域的植物组织培养育苗技术。 该方 法在有菌的室温自然环境条件下进行 : 在培养基 中添加植物提取物抑菌剂, 以 1L 培养基计算, 抑 菌剂的添加量为 4 15g, 制备抑菌培养基, 再利 用该抑菌培养基进行接种培养。 抑菌剂有两类, 其 一包括大蒜提取物、 黄连提取物和忍冬叶提取物, 其质量百分比为 : 20 100 0 40 0 50 ; 其二包括甘草根提取物、 桂花提取物和 石蒜提取物, 其质量比为 : 10 100 0 80 0 50。本发明方法可使植物组织培养 育苗过程脱离严格无菌的操作环境, 在开放的有 菌环境中进行植物组织培养育苗, 这从根本。
4、上简 化了植物组织培养育苗环节, 提高了工作效率, 大 大降低了育苗成本。 (51)Int.Cl. (56)对比文件 审查员 岑喆鑫 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 权利要求书 1 页 说明书 9 页 CN 101455180 B1/1 页 2 1. 一种开放式植物组织培养育苗方法, 其特征在于, 该方法在有菌的室温自然环境条 件下进行 : 在培养基中添加植物提取物抑菌剂, 以 1 L 培养基计算, 植物提取物抑菌剂的添 加量为 4 15 g, 制备抑菌培养基, 再利用该抑菌培养基进行接种培养 ; 所述植物提取物抑菌剂的第一种配方包括大蒜提取物、 黄连提取物和忍冬叶提取。
5、物, 其质量百分比为 : 20 100% : 0 40% : 0 50% ; 所述植物提取物抑菌剂的第二种配方包括甘草根提取物、 桂花提取物和石蒜提取物, 其质量百分比为 : 10 100% : 0 80% : 0 50%。 2. 如权利要求 1 所述的开放式植物组织培养育苗方法, 其特征在于, 在所述植物提取 物抑菌剂的第一种配方中, 大蒜提取物中的大蒜素的重量百分比大于或等于 6.0%, 黄连提 取物中黄连素的重量百分比大于或等于 20.0%, 忍冬叶提取物中绿原酸的重量百分比大于 或等于 10.0%。 3. 如权利要求 1 所述的开放式植物组织培养育苗方法, 其特征在于, 在所述植物提取。
6、 物抑菌剂的第二种配方中, 甘草根提取物中的甘草黄酮纯度大于或等于 70%, 桂花提取物中 的桂花黄酮纯度大于或等于 40%, 石蒜提取物中的石蒜生物碱纯度大于或等于 2%。 权 利 要 求 书 CN 101455180 B1/9 页 3 一种开放式植物组织培养育苗方法 技术领域 0001 本发明属于农林领域的植物组织培养育苗技术, 具体涉及一种开放式植物组织培 养工厂化育苗方法。即在培养基中添加采用植物提取物配制而成的抑菌剂的条件下, 使植 物组织培养育苗过程脱离严格无菌的操作环境, 尤其是不需要高压灭菌, 可在开放的带菌 环境中进行植物组织培养育苗, 从根本上简化了植物组织培养育苗环节, 。
7、提高了育苗工作 效率, 大大降低了植物组织培养育苗成本。 背景技术 0002 植物组织培养是本世纪初开始, 以植物生理学为基础发展起来的一项植物繁殖技 术。植物组织培养又称植物克隆, 指通过无菌操作把植物的任何器官、 组织或细胞接种于 人工配制的含有营养物质和植物生长调节物质等组成的培养基上, 在人工控制环境下进行 离体培养, 使其生长、 分化形成完整植株的过程。 植物组织培养为植物的快速繁殖提供了新 的手段, 接种的一个小外植体, 可以被诱导形成愈伤组织并再生芽和根, 继代多次后, 即可 建立无性繁殖系, 大量生产试管苗。 建立植物试管苗繁育体系, 有着非常重要的意义, 其一, 快速繁殖不受。
8、季节限制, 可在短期内获得大量个体 ; 其二, 选择优良单株扩繁, 可保证品种 的纯合性, 可对高产、 高抗、 优质新品种进行快速推广 ; 其三, 通过脱毒离体培养, 可以培育 出不带任何病原物和病毒的试管苗, 减少病害的发生。因此, 利用植物组织培养快繁技术, 在提高繁殖系数、 有效防止种性退化和生产高质量的种苗中起到了决定性作用。经过近一 个世纪的发展, 植物组织培养技术以其独特的优势, 作为现代生物技术的一个重要手段现 已在工厂化育苗、 种苗脱毒复壮、 遗传育种、 种质资源的保存与交换等领域得到了广泛的应 用。目前, 已在多种经济植物中建立了相应的良种快速繁育体系。 0003 发展至今,。
9、 植物组织培养的理论研究已经相当精深, 但它的技术环节还存在不少 问题。目前广泛使用的植物组织培养育苗是在密闭、 无菌环境下进行, 包括接种外植体、 诱 导愈伤组织、 愈伤组织分化形成试管苗、 试管苗的移栽等几个步骤。 这种组织培养方式存在 四个缺陷 : 培养基污染难以解决、 试管苗成本过高、 规模化生产技术不成熟和试管生产技术 繁琐。 0004 由于富含营养的培养基既适合植物组织生长发育, 更适合杂菌的滋生。 因此, 不论 是在植物组织培养的试验研究中还是在工厂化生产中, 污染是普遍存在的问题, 它严重地 影响了植物苗木的规模化生产、 植物试管基因库的构建、 生产成本和宝贵材料保全等方面。 。
10、因此, 控制污染成了组织培养中的首要技术。而影响污染的因素多种多样, 如外植体的种 类、 取材的时间、 预处理方法、 消毒剂的种类、 消毒方法、 培养基和器皿灭茵、 操作人员和工 作环境的要求等都与污染密切相关, 因此, 使得污染问题难以防治, 成为限制组织培养产业 化的重要原因之一。 0005 此外, 传统的植物组织培养方式均是在严格无菌的封闭条件下进行的, 无菌操作 是常规植物组织培养的一项严格要求, 如要对培养基、 培养器皿高温灭菌, 任何用于操作和 处理植物组织的器皿都要消毒, 其操作过程都必须在无菌环境如超净工作台内进行。如果 说 明 书 CN 101455180 B2/9 页 4 。
11、能够建立起不灭菌的组织培养技术, 还能够将污染率降低到可接受范围内, 组织培养技术 将得到巨大的飞跃。 因此, 寻找一种无需灭菌程序的开放式组织培养技术非常重要。 植物开 放式组织培养, 即在抑菌剂的作用下, 使植物组织培养脱离严格无菌的操作环境, 不需高压 灭菌和超净工作台, 在开放的有菌环境中进行植物组织培养, 从根本上简化组织培养环节, 降低成本。 0006 众所周知, 传统组织培养过程中的污染, 主要表现为培养基的污染, 营养丰富的培 养基为细菌、 真菌提供了适宜的滋生场所。 因此, 只要将培养基改造成既可保证植物组织正 常生长, 又具有抑菌功能的培养基, 菌类一旦失去滋生场所, 就不。
12、会对组织培养过程产生危 害。 改造培养基的关键在于找到一种能够添加到培养基的广谱抑菌剂。 目前, 广谱抑菌剂的 筛选一直是困扰植物组织培养专家的难题, 有学者对抑菌剂及组织培养关系进行过研究。 单文修等采用在培养基中添加大量化学杀菌消毒剂苯甲酸类、 山梨酸类、 酚类、 含氯化合物 类、 季胺盐类、 脲类、 胍类或天然消毒抑菌剂, 建立了一种非无菌条件下的植物组织培养方 法 ( 申请号 : 200410024035.5 公开号 : CN1628507A)。他们对常用抗生素、 抗菌素、 防腐剂做 了大量单一或组合添加到培养基中的试验, 实验证明, 常用抗生素、 抗菌素、 防腐剂对植物 组织培养中的。
13、污染具有的一定的防治作用, 但是针对不同的植物品种要想找到一种合适的 处理组合是比较困难的, 往往当培养基抗菌时, 植物组织的生长也受到抑制 ; 而植物组织能 正常生长时, 却无法获得满意的抗菌效果。这也是国内外专家学者普遍遇到的障碍。其原 因之一是还没有一种抗生素对所有的细菌都有效, 而且药效期短 ; 二是有些抗菌素、 防腐剂 在有效浓度下, 其杀菌、 抗菌离子对植物组织直接产生伤害。 0007 为此, 我们从多种植物中提取具有抑菌活性物质, 建立了具有良好抑菌效果的植 物提取物资源库, 研制了适合于开放式组织培养的抑菌剂, 使植物组织培养育苗过程可在 开放的带菌环境中进行, 从根本上简化了。
14、育苗环节, 提高了工作效率, 大大降低了植物组织 培养育苗成本。 发明内容 0008 本发明的目的在于建立一种低成本、 高效益的开放式植物组织培养育苗方法, 在 添加植物提取物配制而成的抑菌剂的条件下, 使植物组织培养育苗过程脱离严格无菌的操 作环境, 尤其是不需要高压灭菌, 可在开放的带菌环境中进行植物组织培养育苗, 简化了植 物组织培养育苗环节, 提高了工作效率, 降低了植物组织培养育苗成本。 0009 本发明提供的开放式植物组织培养育苗方法, 其特征在于, 该方法在有菌的室温 自然环境条件下进行 : 在培养基中添加植物提取物抑菌剂, 以 1L 培养基计算, 植物提取物 抑菌剂的添加量为 。
15、4 15g, 制备抑菌培养基, 再利用该抑菌培养基进行接种培养。 0010 上述植物提取物抑菌剂可以采用下述两类, 其一包括大蒜提取物、 黄连提取物和 忍冬叶提取物, 其质量百分比为 : 20 100 0 40 0 50; 其二包括甘草根提取 物、 桂花提取物和石蒜提取物, 其质量比为 : 10 100 0 80 0 50。 0011 使用本发明所提供的抑菌培养基, 可用于植物的种子、 根、 茎、 叶和愈伤组织等接 种和培养, 以及试管苗的移栽, 可以有效地减少植物组织培养过程中微生物的污染, 保证植 物组织、 器官、 细胞和试管苗的正常发育生长。 0012 本发明所述的接种是指在有菌的自然环。
16、境条件下, 将上述植物组织或试管苗接种 说 明 书 CN 101455180 B3/9 页 5 在抑菌培养基中, 除了无需进行无菌处理程序外, 具体接种操作手续与常规组织培养的接 种手续相同。 0013 由于使用了抑菌培养基, 因而本发明所述的开放式植物组织培养方法中的接种及 培养过程无需再进行严格的无菌处理 ( 无需高压灭菌、 无菌接种和无菌培养 ), 改变了常规 植物组织培养全过程中必须进行无菌处理的传统观念, 可以省略了高压灭菌锅、 超净工作 台、 紫外灯等设备及严格无菌的环境设施, 并可以将易损的玻璃器皿更换为价格低廉、 操作 简便的塑料杯, 省略了繁琐的消毒手续, 大大降低了生产成本。
17、。 0014 本发明与传统无菌组织培养相比, 具有简化环节, 节省成本等特点, 具体如下 : 0015 1. 培养容器的选择 : 在传统组织培养中, 培养容器需选择耐高温高压的玻璃瓶和 聚丙烯封口膜。 而在开放式组织培养中, 在培养基中添加抑菌剂, 让抑菌培养基代替高压灭 菌, 并可用廉价的一次性塑料杯作为培养容器, 用保鲜膜封口, 这大大降低了成本。 0016 2. 接种器具的灭菌 : 传统组织培养中, 接种用的剪子、 镊子、 刀片等均采用高压灭 菌或酒精灯灼烧灭菌, 而在开放组织培养中, 接种器具用 75酒精擦洗后, 即可有效的防止 由于接种器具引发的污染。 0017 3. 接种方法 : 。
18、在接种室内, 用 75的酒精将接种台面和手擦干净, 揭开封口膜一 角, 用接种器具把植物接种到培养基上, 再将杯口封严即可。 0018 4. 技术环节与成本分析 : 开放式组织培养省去了高压灭菌和超净工作台接种, 简 化了组织培养环节。由于制备抑菌剂的材料资源丰富, 生产工艺简单, 消毒液也能重复利 用, 因此开放式组织培养与传统组织培养相比, 大大节省成本。 具体实施方式 0019 下面通过借助以下实施例将更加详细说明本发明, 且以下实施例仅是说明性的, 本发明并不受这些实施例的限制。 0020 开放式植物组织培养育苗可以按照以下步骤进行 : 0021 (1) 抑菌培养基的配制 0022 植。
19、物组织培养所使用的培养基种类很多, 如 MS、 N6、 White 等, 本专利中植物组织 培养以 MS 培养基为例进行说明。配制 1L MS 培养基, 然后按照每升培养基添加 4 15g 抑 菌剂标准, 将抑菌剂添加至基本培养基中, 用 0.1mol/L NaOH 或 0.1mol/L HCl 调节 pH 至 6.0, 配制成抑菌培养基 ( 固体培养基中加入 1琼脂 )。采用透明的塑料杯分装, 将分装好 培养基的容器盖上棉塞或用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接种。 0023 (2) 接种 0024 接种过程在开放环境中进行。除了培养基不需灭菌、 不需严格无菌的接种环境 外, 其它接种步骤与传。
20、统的接种程序一样, 即 : 先用消毒剂对外植体进行消毒, 获得无菌外 植体, 然后在接种台面上, 将消毒后的外植体接种至添加有抑菌剂的培养基中, 用保鲜膜封 口。 0025 (3) 初代培养 0026 将接种材料置于培养室中培养 ( 培种室无需灭菌消毒 ), 以获得愈伤组织, 一个周 期后, 按照上述操作进行继代培养。 0027 (4) 愈伤组织的分化 说 明 书 CN 101455180 B4/9 页 6 0028 将愈伤组织接种于抑菌分化培养基中进行培养, 生根长芽, 形成试管苗。 0029 (5) 试管苗的移栽 0030 因为试管苗的整个培养过程为开放式培养, 因此试管苗的移栽不需要炼苗。
21、。将试 管苗取出后, 用清水将其根部冲洗干净, 再用抑菌剂浸泡试管苗根部, 30 分钟后用清水冲洗 干净后移栽。 0031 实施例一魔芋开放式组织培养 0032 魔芋开放式组织培养按照以下步骤进行 : 0033 (1) 抑菌剂的制备 : 0034 大蒜提取物的制备 0035 剥皮后的新鲜白皮大蒜 1kg, 洗净后加入水 300ml, 用打浆机搅打 20 分钟得到蒜 泥, 倒入密封罐中, 滴加 0.02mol/L 的盐酸并不断搅拌至蒜泥 pH 6, 在温度 40下密封静 置, 让蒜泥中的内源蒜酶解蒜氨酸 4 小时以产生大蒜素。酶解完成后, 将蒜浆转移到搅拌罐 中, 加入 4L 95食用乙醇, 充。
22、分搅拌后, 板框过滤得到大蒜素提取液, 转移到真空减压浓缩 罐中, 60下减压蒸馏至干, 得到黄色大蒜提取物, 经高效液相色谱法检测大蒜素含量等于 6.98。 0036 黄连提取物的制备 0037 称取干燥的黄连根茎 1kg, 粉碎机粉碎后过 80 目筛网, 黄连粉末置于提取罐中加 入 3L 95工业乙醇, 95浸提 5 小时, 通过板框过滤得到黄连提取液, 转移到真空减压浓 缩罐中, 55下减压蒸馏至干, 得到黄连提取物, 经高效液相色谱法检测黄连素含量等于 20。 0038 忍冬叶提取物的制备 0039 称取干燥的忍冬叶 1kg, 粉碎机粉碎后过 60 目筛网, 忍冬叶粉末置于提取罐中加 。
23、入 2L 80工业乙醇, 调节 pH 值 5.0, 95浸提 3 小时, 通过板框过滤得到忍冬叶提取液, 转 移到真空减压浓缩罐中, 减压蒸馏至干, 得到忍冬叶提取物。 经高效液相色谱法检测绿原酸 含量等于 10。 0040 将三种提取物按照附表 1 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0041 (2) 抑菌培养基的配制 0042 配制 5 份 1L MS 培养基, 于其中加入 1琼脂, 完全溶解后, 添加激素 : 6-BA 2mg/ L+NAA 0.1mg/L+IBA 0.2mg/L, 然后分别加入 (1) 中所述的 5 种抑菌剂, 添加量为 10g/L, 配 制成 5 种。
24、固体抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接种。 0043 (3) 接种魔芋球茎 0044 接种经常规消毒后的魔芋球茎, 进行培养。对照 1 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂 的固体培养基 ; 对照 2 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的固体培养基, 而且培养基需要灭菌。 每组接种 20 瓶, 每瓶接种 5 块外植体, 共 100 块外植体。抑菌培养基对魔芋愈伤组织诱导 及芽形成的影响见附表 1。 0045 实施例二开放式条件下光果甘草、 胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发 0046 开放式条件下光果甘草、 胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发按照以下步骤进。
25、行 : 0047 (1) 抑菌剂的制备 : 说 明 书 CN 101455180 B5/9 页 7 0048 按照实施例一中所述的制备方法制备大蒜提取物、 黄连提取物和忍冬叶提取物, 并将三种提取物按照附表 2 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0049 (2) 抑菌培养基的配制 0050 配制5份1L MS培养基, 于其中加入1琼脂, 即为种子萌发培养基。 分别加入(1) 中所述的 5 种抑菌剂, 添加量为 4g/L, 配制成 5 种固体抑菌培养基。采用透明的塑料杯分 装, 将分装好培养基的容器用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接种。 0051 (3) 甘草种子接种 005。
26、2 用浓硫酸分别浸泡光果甘草、 胀果甘草和乌拉尔甘草种子 1h 后, 用清水冲洗干 净, 经常规消毒后, 分别接种于种子萌发培养基中, 每个处理接种 20 瓶, 每瓶接种 10 粒种 子, 共 200 粒种子。对照 1 为 (2) 中所述的种子萌发培养基, 且培养基不添加抑菌剂 ; 对照 2 为 (2) 中所述的种子萌发培养基, 且培养基不添加抑菌剂, 但培养基需要灭菌。抑菌培养 基对三种甘草种子萌发的影响见附表 2。 0053 实施例三甘草开放式组织培养育苗 0054 甘草开放式组织培养育苗按照以下步骤进行 : 0055 (1) 抑菌剂的制备 : 0056 甘草根提取物的制备 0057 准确。
27、称取干燥的甘草根茎 1kg, 粉碎机粉碎后过 80 目筛网, 甘草粉末置于提取罐 中加入 3L 50工业乙醇, 超声提取 1 小时, 通过板框过滤得到甘草黄酮提取液, 转移到 真空减压浓缩罐中, 55下减压蒸馏至干, 得到甘草根提取物, 其中甘草黄酮的纯度等于 70。 0058 桂花提取物的制备 0059 准确称取干燥的桂花1kg, 加入500ml 90乙醇, 解吸15分钟。 再加入4L 80的 乙醇回流提取 15 分钟, 提取 2 次, 过滤, 滤液转移到真空减压浓缩罐中, 55下减压蒸馏至 干, 得到桂花提取物, 其中桂花黄酮的纯度等于 40。 0060 石蒜提取物的制备 0061 准确称。
28、取干燥的石蒜 1kg, 粉碎机粉碎后过 80 目筛网, 石蒜粉末置于提取罐中加 入 10L 甲醇, 75回流提取 3 小时, 通过板框过滤得到石蒜提取液, 转移到真空减压浓缩罐 中, 55下减压蒸馏至干, 得到石蒜提取物, 经高效液相色谱法检测石蒜生物碱的纯度等于 2。 0062 将三种提取物按照附表 3 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0063 (2) 抑菌培养基的配制 0064 配制 5 份 1 L MS 培养基, 于其中加入 1琼脂, 完全溶解后, 添加激素 : 6-BA 2mg/ L+KT 0.5mg/L+IBA 0.5mg/L 后, 然后分别加入 (1) 中所述。
29、的 5 种抑菌剂, 添加量为 4g/L, 配 制成 5 种抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器盖上棉塞, 培养基冷 却后即可接种。 0065 (3) 接种胀果甘草下胚轴 0066 接种经常规消毒后的胀果甘草、 光果甘草下胚轴, 进行培养。对照 1 为 (2) 中所述 的不添加抑菌剂的固体培养基 ; 对照2为(2)中所述的不添加抑菌剂的固体培养基, 而且培 养基需要灭菌。每组接种 20 瓶, 每瓶接种 6 个茎段, 共 120 个茎段。抑菌培养基对胀果甘 说 明 书 CN 101455180 B6/9 页 8 草、 光果甘草愈伤组织诱导率和分化率的影响见附表 3。 0067 。
30、实施例四开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化 0068 开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化按照以下步骤进行 : 0069 (1) 抑菌剂的制备 : 0070 按照实施例一中所述的制备方法制备大蒜提取物、 黄连提取物和忍冬叶提取物, 并将三种提取物按照附表 4 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0071 (2) 抑菌培养基的配制 0072 配制 MS 培养基, 于其中加入 1琼脂, 完全溶解后, 添加激素。种子萌发培养基 中添加激素为 6-BA 1.0mg/L, 诱导下胚轴分化培养基中添加激素为 6-BA 0.1mg/L+NAA 0.01mg/L。分别加入 (1。
31、) 中所述的 5 种抑菌剂, 添加量为 15g/L, 配制成抑菌培养基。采用 透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接种。 0073 (3) 刺山柑种子接种 0074 用浓硫酸浸泡刺山柑种子 1h 后, 用清水冲洗干净, 经常规消毒后, 接种于种子萌 发培养基中, 每个处理接种 10 瓶, 每瓶接种 15 粒种子, 共 150 粒种子。当种子萌发后, 切取 下胚轴, 置于分化培养基中, 每组接种 20 瓶, 每瓶接种 6 个茎段, 共 120 个茎段。对照 1 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的培养基 ; 对照 2 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的培养基, 。
32、但是 培养基需要灭菌。抑菌培养基对刺山柑种子萌发和下胚轴分化的影响见附表 4。 0075 实施例五开放式条件下魔芋试管苗的形成和移栽 0076 开放式条件下魔芋试管苗的形成和移栽按照以下步骤进行 : 0077 (1) 抑菌剂的制备 : 0078 按照实施例三中所述的制备方法制备甘草根提取物、 桂花提取物和石蒜提取物, 并将三种提取物按照附表 5 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0079 (2) 抑菌培养基的配制 0080 配制 1L MS 培养基, 于其中加入 1琼脂, 完全溶解后, 添加激素 : 6-BA1.5mg/ L+NAA 0.3mg/L 后, 分别加入 (1) 。
33、中所述的 5 种抑菌剂, 添加量为 15g/L, 配制成抑菌培养 基。采用透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器用保鲜膜封口, 培养基冷却后即可接 种。 0081 (3) 接种魔芋不定芽 0082 接种经常规消毒后的魔芋不定芽, 进行培养, 使之分化形成试管苗。对照 1 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的培养基 ; 对照2为(2)中所述的不添加抑菌剂的培养基, 而且培养 基需要灭菌, 每组接种 20 瓶, 每瓶接种 5 个不定芽, 共 100 个不定芽。 0083 (4) 液体抑菌剂的制备 0084 分别取 (1) 中所述的 5 种抑菌剂, 每种称取 5g 溶于 1L 水中, 搅拌均匀后制得。
34、 5 种 液体抑菌剂, 分别用于试管苗根部的浸泡。 0085 (5) 试管苗的移栽 0086 待不定芽形成粗壮的试管苗后, 将试管苗取出, 用清水将其根部冲洗干净, 再将其 根部分别置于 (4) 中制备的 5 种液体抑菌剂中, 浸泡 30 分钟后, 用清水冲洗干净, 移栽。抑 菌培养基对魔芋试管苗的形成和移栽的影响见附表 5。 0087 实施例六开放式条件下红豆杉外植体诱导形成愈伤组织 说 明 书 CN 101455180 B7/9 页 9 0088 开放式条件下红豆杉外植体诱导形成愈伤组织按照以下步骤进行 : 0089 (1) 抑菌剂的制备 : 0090 按照实施例三中所述的制备方法制备甘草。
35、根提取物、 桂花提取物和石蒜提取物, 并将三种提取物按照附表 6 所述的 5 种比例分别混合, 制备成 5 种抑菌剂。 0091 (2) 抑菌培养基的配制 0092 配制 5 份 1L MS 培养基, 于其中加入 1琼脂, 完全溶解后, 添加激素 : 二氯苯氧乙 酸 0.2mg/L 和 - 萘乙酸 0.5mg/L, 然后分别加入 (1) 中所述的 5 种抑菌剂, 添加量为 8g/ L, 配制成 5 种抑菌培养基。采用透明的塑料杯分装, 将分装好培养基的容器盖上棉塞, 培养 基冷却后即可接种。 0093 (3) 接种红豆杉外植体 0094 接种经常规消毒后的中国红豆杉、 东北红豆杉和曼地亚红豆杉。
36、嫩茎, 进行培养。 对 照 1 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的固体培养基 ; 对照 2 为 (2) 中所述的不添加抑菌剂的 固体培养基, 而且培养基需要灭菌。每组接种 20 瓶, 每瓶接种 6 个茎段, 共 120 个茎段。抑 菌培养基对中国红豆杉、 东北红豆杉和曼地亚红豆杉愈伤组织诱导率的影响见附表 6。 0095 附表 1 开放式条件下魔芋愈伤组织诱导和芽的形成 0096 大蒜、 黄连、 忍冬 叶提取物质量比 污染瓶数 ( 瓶 ) 愈伤组织 诱导率 ( ) 出芽数量 ( 个 ) 100 0 0 1 92 373 20 30 50 4 70 271 40 30 30 2 85 336 6。
37、0 20 20 1 94 375 40 40 20 2 89 358 对照 1 20 0 0 对照 2 1 93 361 0097 附表 2 开放式条件下光果甘草、 胀果甘草和乌拉尔甘草种子萌发 0098 大蒜、 黄连、 忍冬叶 提取物质量比 光果甘草种子 萌发率 胀果甘草种子 萌发率 乌拉尔甘草种子 萌发率 100 0 0 88 97 91 20 30 50 62 71 65 40 30 30 77 79 83 说 明 书 CN 101455180 B8/9 页 10 60 20 20 83 92 88 40 40 20 79 84 81 对照 1 51 75 59 对照 2 89 95 9。
38、3 0099 附表 3 开放式条件下胀果甘草和光果甘草愈伤组织诱导和分化 0100 甘草根、 桂花、 石蒜 提取物质量比 胀果甘草愈伤 组织诱导率 胀果甘草 分化率 光果甘草愈伤 组织诱导率 光果甘草 分化率 100 0 0 97 51 92 43 10 80 10 91 44 88 34 30 20 50 83 38 78 37 60 20 20 97 55 91 46 40 30 30 93 47 89 39 对照 1 0 0 0 0 对照 2 95 49 89 43 0101 附表 4 开放式条件下刺山柑种子萌发及诱导下胚轴分化 0102 大蒜、 黄连、 忍冬叶 提取物质量比 刺山柑种子。
39、 萌发率 下胚轴分化 出芽率 试管苗的 生长情况 100 0 0 33 9苗粗壮浓绿 20 30 50 19 3苗纤细浓绿 40 30 30 28 5苗纤细浓绿 60 20 20 37 11苗粗壮浓绿 40 40 20 33 5苗纤弱 对照 1 15 0无苗 对照 2 36 11苗粗壮浓绿 说 明 书 CN 101455180 B9/9 页 11 0103 附表 5 开放式条件下魔芋试管苗的形成及移栽 0104 甘草根、 桂花、 石 蒜提取物质量比 成苗率 ( ) 试管苗的成活率 ( ) 100 0 0 46 41 10 80 10 33 25 30 20 50 42 36 60 20 20 。
40、43 36 40 30 30 39 33 对照 1 0 0 对照 2 47 38 0105 附表 6 开放式条件下中国红豆杉、 东北红豆杉和曼地亚红豆杉外植体形成愈伤组 织的影响 0106 甘草根、 桂花、 石 蒜提取物质量比 中国红豆杉愈伤 组织诱导率 东北红豆杉愈伤 组织诱导率 曼地亚红豆杉愈 伤组织诱导率 100 0 0 97 91 92 10 80 10 88 86 81 30 20 50 85 88 83 60 20 20 97 92 91 40 30 30 93 95 89 对照 1 0 0 0 对照 2 95 91 89 0107 本发明不仅仅局限于上述具体实施方式, 本领域一般技术人员根据本发明公开的 内容, 可以采用其它多种具体实施方式实施本发明, 因此, 凡是采用本发明的技术方案和思 路, 做一些简单的变化或更改的设计, 都落入本发明保护的范围。 说 明 书 。