一种基于光敏生物高分子负载酶制备生物传感器的方法技术领域
本发明涉及高分子材料与电化学传感器领域，特别是涉及一种通过光敏生物高分
子实现对生物催化酶的有效负载，并将其用于制备酶生物传感器的方法。
背景技术
酶作为一种生物催化剂，具有反应速度快、反应条件温和及高选择性等特点。但在
实际使用过程中，多数酶对环境较为敏感，在高温、强酸、强碱、紫外线、热、金属盐等外界条
件的影响下，酶的二级、三级结构发生改变，导致酶失去活性，从而丧失了其功能性。
酶生物传感器作为一种研究最为广泛的生物传感器，是将酶作为生物敏感基元，
通过各种物理、化学信号转换器捕捉目标物与敏感基元之间的反应所产生的与目标物浓度
成比例关系的可测信号，实现对目标物定量测定的分析仪器。酶生物传感器主要组成部分
是感受器(固定化酶)和换能器。作为生物敏感基元的感受器(固定化酶)是整个生物传感器
的技术核心。感受器的制备包括选择最佳的载体材料以及在载体上固定化酶。换能器可以
感知酶与待测物质特异性结合产生的微小变化，并把这种变化转变成其他可以记录的信
号，如：电信号、热信号以及密度、质量等性质的变化。与传统分析方法相比，酶生物传感器
具有独特的优点：(1)选择性高，能够直接在复杂试样中进行测定；(2)反复多次使用；(3)响
应快；(4)体积小，可实现在线监测；(5)成本低，便于推广普及。
在酶生物传感器的构建过程中，酶的固定化(enzyme immobilization)是影响传
感器性能的关键步骤。酶的固定化是指采用有机或无机固体材料作为载体，将酶包埋起来
或束缚、限制于载体的表面和微孔中，使其仍具有催化活性，并可回收及重复使用的酶化学
方法与技术。与游离酶相比，固定化酶在保持其高效专一及温和的酶催化反应特性的同时，
又克服了游离酶的不足，呈现出贮存稳定性高、分离回收容易、可多次重复使用、操作连续
可控、工艺简便等一系列优点。固定化酶的性能取决于固定化酶所使用载体材料的性质和
固定化方法，而酶的固定化程度直接决定酶生物传感器的检测性能。
传统酶固定化技术有化学法和物理法两大类。化学法包括交联法、共价结合法，是
将酶通过化学键连接到天然的或合成的高分子载体上，使用偶联剂通过酶表面的基团将酶
交联起来，而形成相对分子质量更大、不溶性的固定化酶的方法。物理方法包括结晶法、分
散法、物理吸附法、离子结合法、包埋法等。通过物理法固定酶的优点在于酶不参加化学反
应，其整体结构保持不变，酶的催化活性可得到更好的得以保留。然而，由于物理固定手段
的结合作用通常为非共价键作用，从而易于在贮存和使用中造成酶的渗漏。因此，如何充分
利用天然高分子载体、纳米技术、膜技术等来固定酶，必定会成为研究的热点。
天然生物高分子如壳聚糖、海藻酸钠等，由于其来源广泛、具有较强的亲和性且具
有优异的生物相容性，因此被广泛用于酶的负载。由于生物高分子通常是生物可降解的，其
在工业上应用也可以实现可持续性。对生物高分子进行共价改性赋予其更丰富的功能性，
将使得天然高分子在生物医用材料、生物电子器件领域有极为广泛的应用前景。
大分子自组装是指大分子间通过非共价键作用而自发形成热力学稳定且具有明
确有序结构的聚集体的过程。自组装的驱动力包括具有可逆性和选择性的氢键、静电作用、
亲疏水作用、范德华力、金属配位等非共价键作用以及能够可逆形成和破坏的共价键作用
力。通过静电自组装技术可实现对大分子蛋白如酶的稳定负载，制得聚合物-酶自组装聚集
体，这种自组装聚集体能够有效地实现对酶的负载。然而，目前通过自组装制备光敏性生物
高分子-酶自组装纳米粒子，并将其用于构造酶生物传感器尚未见报道。
发明内容
针对现有技术存在的上述问题，本发明旨在提供一种基于光敏生物高分子负载酶
制备自组装复合纳米粒子并将其用于构建酶生物传感器的制备方法。本发明中采用的光敏
生物高分子具有良好的生物相容性和蛋白亲和性，所构建的自组装纳米粒子能有效提高酶
的负载量，而通过光交联能有效增强酶在传感器基质表面的固定效果，从而抑制酶的渗漏。
本发明所采用的技术操作简便，所构建的传感器对于待分析物具有灵敏度高、特异性强、稳
定性好等优点。
本发明的技术方案如下：
一种基于光敏生物高分子负载酶制备生物传感器的方法，光敏生物高分子的制
备、载酶自组装纳米粒子的制备、酶生物传感器的构建的具体步骤如下：
(1)光敏生物高分子的制备
将生物大分子、引发剂、小分子光敏单体依次逐滴加入反应溶剂中，在0℃～100℃
下反应12h～48h，使生物大分子与光敏单体反应完全；将所得反应物溶液用沉淀剂沉淀后
转入透析袋透析1～14d以除去未反应的单体及引发剂；将纯化后的聚合物溶液进行冷冻干
燥得到光敏生物大分子；
所述生物大分子为聚谷氨酸、壳聚糖、葡聚糖、肝素、软骨素、透明质酸、海藻酸钠、
淀粉、纤维素的任一种；
所述引发剂为1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC﹒HCl)、N-羟基琥
珀酰亚胺(NHS)、二环己基碳二亚胺(DCC)、1-羟基苯并三唑(HOBT)、三苯基膦(TPP)、4-二甲
氨基吡啶(DMAP)中的一种或几种；
所述小分子光敏单体为无毒的4-甲基伞形酮、7-羟基香豆素、4-羟基香豆素、7-氨
基-4-甲基香豆素、3-氯-7-羟基-4-甲基香豆素、7-氨基-4-甲基香豆素-3-乙酸、丙烯酸羟
乙酯、丙烯酸缩水甘油酯、丙烯酰氯、甲基丙烯酸羟乙酯、甲基丙烯酸缩水甘油酯、甲基丙烯
酸酐、甲基丙烯酰胺、邻苯二甲酸酐、甲基丙烯酰氧乙基异氰酸酯、N-羟甲基丙烯酰胺、聚乙
二醇二丙烯酸酯、肉桂酸、肉桂酸衍生物、羟基肉桂酸、衣康酸、咖啡酸、鞣酸、脱氢枞酸、松
香酸、海松酸、呋喃衍生物。
(2)载酶自组装纳米粒子的制备
在常温下，将酶溶液逐滴加入到1～10倍其体积的光敏性生物高分子溶液中，持续
搅拌使酶与生物高分子通过静电或氢键作用自组装形成复合纳米粒子，将所得载酶自组装
纳米粒子溶液通过孔隙800nm的针式过滤器，得到粒径均匀分布复合纳米粒子，4℃下保存；
所述酶为辣根过氧化物酶(HRP)、乳酸氧化酶(LOx)、葡萄糖氧化酶(GOx)、胆固醇
酶、脂肪酶、漆酶、酪氨酸酶、胆碱酯酶、有机磷水解酶、硝酸还原酶、亚硝酸盐还原酶、高氯
酸盐还原酶、脲酶、碳酸酐酶中的一种或多种；
所述酶溶液浓度为0.01～10mg/mL,所述光敏性生物高分子溶液浓度为0.01～
100mg/mL,所述自组装的反应溶液pH值为2～9，所述反应时间为2h～24h。
(3)酶生物传感器的构建
向步骤(2)所述载酶自组装纳米粒子溶液中添加无机导电纳米粒子后搅拌至混合
均匀，通过滴涂或电泳沉积的方法将混合溶液修饰在传感电极表面，随后通过紫外光交联
以增强涂层的稳定性得到稳定的复合生物传感膜，室温自然干燥，制得酶生物传感器；
所述无机导电纳米粒子为金纳米粒子、银纳米粒子、碳纳米管、石墨烯中的一种或
几种的组合。所述无机导电纳米粒子添加量为质量分数0.01％～10％；
所述电极为金电极、铂电极、玻碳电极、柔性电极、丝网印刷电极；
所述电极在使用前需经预处理，预处理的方法为：将电极抛光至镜面，依次用无水
乙醇、超纯水、无水乙醇分别超声3min清洗电极表面，氮气吹干电极；
所述滴涂方法为移取5～100μL载酶复合纳米粒子与无机导电纳米粒子的混合溶
液滴涂于电极表面，室温下自然干燥，形成复合传感涂层，制得酶生物传感器；
所述电泳沉积方法为将电极浸入大分子复合胶束溶液中，施加与复合胶束荷电相
反的恒电位，使载酶复合纳米粒子与无机导电纳米粒子共沉积在电极表面形成胶束粒子
膜；电沉积工艺条件为：电沉积电压大小0.1V～10V，电沉积时间10s～600s；
所述紫外光交联条件为选用的光源波长为320～480nm，光强为5-100mW/cm3,紫外
光照时间为0.5～60min。
本发明有益的技术效果在于：
1、本发明采用光敏性生物高分子与酶的自组装制备载酶复合纳米粒子，制备条件
温和，操作简便，而且生物高分子具有较好的生物相容性，能有效实现对酶的高效负载并保
持酶的活性。
2、本发明采用紫外光交联以增强涂层的稳定性，具有固化条件温和、反应效率高
等优点，交联后的聚合物网络能显著增强酶在传感器基材表面的固定效果，从而防止酶在
使用中的渗漏，所制备的传感器具有优异的稳定性与检测性能。
3、本发明酶生物传感器制备与操作简单，可避免传统检测方法的辐射危害、背景
噪音信号大、繁琐复杂、分析时间长、仪器贵重和需要专业操作人员等缺点。
4、本发明将自组装技术、电化学传感技术与光交联固化技术结合可构建新型、多
样化电化学传感器，有望广泛应用于食品安全、生物医药及环保监测等领域。
5、本发明酶生物传感器可以实现对食品添加剂、环境污染物的在线、实时、快速、
准确检测，具有广泛的研究和实际应用价值。
附图说明
图1：本发明的载酶自组装纳米粒子的制备方法示意图；
图2：本发明实施例1中载酶自组装纳米粒子的透射电镜图；
图3：本发明实施例2中制得酶生物传感器的数码照片图；
图4：本发明实施例3中制得酶生物传感器检测双氧水的线性关系图；
具体实施方式
下面结合附图和实施例，对本发明进行具体描述。应当理解，以下实施例仅为本发
明的优选实施例，以便更好地理解本发明，因而不应视为限定本发明的范围。
实施例1
一种基于光敏生物高分子负载酶制备生物传感器的方法，包括如下具体步骤：
(1)光敏生物高分子的制备
将生物大分子壳聚糖(CS)、引发剂1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐、
小分子光敏单体咖啡酸(CA)依次逐滴加入1％醋酸溶液中，在0℃下反应48h，使生物大分子
与光敏单体反应完全；将所得反应物溶液用沉淀剂乙醇沉淀后转入透析袋透析3d以除去未
反应的单体及引发剂；将纯化后的聚合物溶液进行冷冻干燥得到光敏生物大分子CS-CA；
(2)载酶自组装纳米粒子的制备
在常温下，将0.1mg/mL葡萄糖氧化酶(GOx)溶液逐滴加入等体积的0.5mg/mL光敏
生物大分子CS-CA溶液中，调节溶液pH为5.0，持续搅拌反应2h使酶与生物高分子通过静电
或氢键作用自组装形成复合纳米粒子GOx@CS-CA，将所得载酶自组装纳米粒子溶液通过孔
隙800nm的针式过滤器，得到粒径均匀分布复合纳米粒子，4℃下保存。载酶复合自组装纳米
粒子的透射电子显微镜图片如图2所示，可以看出，自组装纳米粒子为球形结构，粒径约为
60～80nm。
(3)酶生物传感器的构建
向步骤(2)所述载酶自组装纳米粒子溶液中添加0.01％银纳米粒子后搅拌至混合
均匀，通过电泳沉积(沉积电压-1.0V，沉积时间5min)的方法将混合溶液修饰在金电极表
面，随后通过紫外光照2min以增强涂层的稳定性得到稳定的复合生物传感膜，室温自然干
燥，制得酶生物传感器。
实施例2
一种基于光敏生物高分子负载酶制备生物传感器的方法，包括如下具体步骤：
(1)光敏生物高分子的制备
将生物大分子葡聚糖(Dex)、引发剂1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐
和4-二甲氨基吡啶、小分子光敏单体肉桂酸(CINN)依次逐滴加入二甲亚砜溶剂中，在60℃
下反应5h，使生物大分子与光敏单体反应完全；将所得反应物溶液用沉淀剂乙醇沉淀后转
入透析袋透析7d以除去未反应的单体及引发剂；将纯化后的聚合物溶液进行冷冻干燥得到
光敏生物大分子Dex-CINN；
(2)载酶自组装纳米粒子的制备
在常温下，将1.0mg/mL乳酸氧化酶(LOx)溶液逐滴加入5倍其体积的5mg/mL光敏生
物大分子Dex-CINN溶液中，调节溶液pH为8.0，持续搅拌反应24h使酶与生物高分子通过静
电或氢键作用自组装形成复合纳米粒子LOx@Dex-CINN中，将所得载酶自组装纳米粒子溶液
通过孔隙800nm的针式过滤器，得到粒径均匀分布复合纳米粒子，4℃下保存。
(3)酶生物传感器的构建
向步骤(2)所述载酶自组装纳米粒子溶液中添加1％的碳纳米管后搅拌至混合均
匀，移取10μL混合溶液滴涂修饰在柔性丝网印刷电极表面，随后通过紫外光照20min以增强
涂层的稳定性得到稳定的复合生物传感膜，室温自然干燥，制得酶生物传感器。所制得酶传
感器的数码照片如图3所示，可以看出，载酶自组装纳米粒子和碳纳米管混合溶液成功修饰
在丝网印刷电极表面。
实施例3
一种基于光敏生物高分子负载酶制备生物传感器的方法，包括如下具体步骤：
(1)光敏生物高分子的制备
将生物大分子聚谷氨酸(PGA)、引发剂1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸
盐和4-二甲氨基吡啶、小分子光敏单体甲基丙烯酸羟乙酯(HEMA)依次逐滴加入二甲亚砜溶
剂中，在25℃下反应24h，使生物大分子与光敏单体反应完全；将所得反应物溶液用沉淀剂
乙醇沉淀后转入透析袋透析14d以除去未反应的单体及引发剂；将纯化后的聚合物溶液进
行冷冻干燥得到光敏生物大分子PGA-HEMA；
(2)载酶自组装纳米粒子的制备
在常温下，将10mg/mL辣根过氧化物酶(HRP)溶液逐滴加入10倍其体积的100mg/mL
光敏生物大分子PGA-HEMA溶液中，调节溶液pH为7.0，持续搅拌反应12h使酶与生物高分子
通过静电或氢键作用自组装形成复合纳米粒子HRP@PGA-HEMA，将所得载酶自组装纳米粒子
溶液通过孔隙800nm的针式过滤器，得到粒径均匀分布复合纳米粒子，4℃下保存。
(3)酶生物传感器的构建
向步骤(2)所述载酶自组装纳米粒子溶液中添加1％的石墨烯与10％的金纳米粒
子后搅拌至混合均匀，移取100μL混合溶液滴涂在柔性的丝网印刷电极表面，随后通过紫外
光照60min以增强涂层的稳定性得到稳定的复合生物传感膜，室温自然干燥，制得柔性酶生
物传感器。
测试例：
基于光敏聚合物PGA-HEMA固定辣根过氧化物酶制备生物传感器双氧水的电化学
检测
将实施例3制备好的生物传感器浸入0.01M的磷酸盐缓溶液(pH 7.4)中，以每滴20
μL将0.01mM的双氧水溶液逐滴加入到磷酸盐缓冲液中，以该酶生物传感器为工作电极，饱
和甘汞电极为参比电极，铂丝电极为对电极，在上海辰华CHI660A电化学工作站上，采用计
时电流法进行测定。
通过测试催化氧化电流随双氧水滴加量的变化即可得到相应的线性关系曲线，从
而实现对双氧水的检测。检测结果如图4所示，由图4可以看出，所制备的酶生物传感器对5
×10-6～3×10-3M浓度范围的双氧水具有良好的线性响应性，最低检测限达到2.94×10-6M。