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含有心源性因子的组合物和相关方法、细胞,以及所述组合物、方法和细胞的应用.pdf

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  • 文档编号:5475375
  • 上传时间:2019-01-26
  • 格式:PDF
  • 页数:28
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN201310269183.2

    申请日:

    2009.05.20

    公开号:

    CN103340902A

    公开日:

    2013.10.09

    当前法律状态:

    授权

    有效性:

    有权

    法律详情:

    授权|||实质审查的生效IPC(主分类):A61K 35/12申请日:20090520|||公开

    IPC分类号:

    A61K35/12; A61K35/32; A61K38/19; A61P9/10; A61P9/04; C12N5/07(2010.01)I; C12N5/0775(2010.01)I

    主分类号:

    A61K35/12

    申请人:

    梅奥医学教育和研究基金会

    发明人:

    安德烈·泰尔齐奇; 阿塔·贝法尔

    地址:

    美国明尼苏达州

    优先权:

    2008.05.27 US PCT/US2008/064895

    专利代理机构:

    北京三友知识产权代理有限公司 11127

    代理人:

    丁香兰;庞东成

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    内容摘要

    本发明涉及含有心源性因子的组合物,还涉及通过在这些因子的存在下培养初始细胞从而获得细胞的方法,还涉及通过所述方法获得的细胞,以及所述组合物、方法和细胞在制造用于治疗缺血性心肌病、心肌梗塞或心力衰竭的药物中的应用。

    权利要求书

    权利要求书
    1.  一种组合物,所述组合物包含TGFβ-1、BMP4、α-凝血酶、IL-6和视黄酸。

    2.  如权利要求1所述的组合物,所述组合物包含选自由FGF-2、IGF-1、活化素-A、TNF-α、FGF-4、LIF、VEGF-A及其组合组成的组的至少一种化合物。

    3.  如前述权利要求中任一项所述的组合物,所述组合物包含FGF-2、IGF-1和活化素-A。

    4.  如权利要求1所述的组合物,所述组合物不包含选自由TNF-α、FGF-4、LIF和VEGF-A组成的组的至少一种化合物。

    5.  如权利要求1至4中任一项所述的组合物,其中当一种化合物存在于所述组合物中时,其存在量为:所述TGFβ-1以1ng/ml至5ng/ml的量存在,所述BMP4以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述α-凝血酶以0.5单位/ml至5单位/ml的量存在,所述FGF-2以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述IGF-1以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述活化素-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述TNF-α以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述FGF-4以1ng/ml至20ng/ml的量存在,所述IL-6以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述LIF以1单位/ml至10单位/ml的量存在,所述VEGF-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述视黄酸以每ml中0.1μM至1.0μM的量存在。

    6.  如权利要求1所述的组合物,所述组合物包含以组合方式使用的重组TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、活化素-A(5ng/ml)、FGF-2(10ng/ml)、IL-6(100ng/ml)、因子IIa(hα-凝血酶、1U/ml)、IGF-1(50ng/ml)和视黄酸(1μM)。

    7.  如权利要求1至6中任一项所述的组合物,所述组合物包含在培养基中,所述培养基选自由含有胎牛血清、人血清、血小板裂解物及其混合物的培养基组成的组。

    8.  一种由初始细胞获得分化细胞的方法,所述分化细胞以提高水平表达选自由MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4mRNA、Flk-1mRNA、GATA6mRNA、Fog-1mRNA及其组合组成的组的至少一种mRNA,和/或具有选自由Nkx2.5多肽、MEF2C多肽、Tbx-5多肽、FOG-2多肽、GATA-4多肽、MESP-1多肽及其组合组成的组的至少一种多肽,其中所述至少一种多肽与所述分化细胞的细胞核相关,其中所述方法包括在权利要求1至7中任一项的组合物的存在下培养初始细胞。

    9.  如权利要求8所述的方法,其中所述分化细胞表达提高水平的MEF2c mRNA和MESP-1mRNA。

    10.  如权利要求8和9中任一项所述的方法,其中所述初始细胞是间充质干细胞。

    11.  如权利要求10所述的方法,其中所述间充质干细胞是骨髓来源的干细胞。

    12.  如权利要求8至11中任一项所述的方法,其中所述间充质干细胞在细胞表面表达CD90、CD105、CD133、CD166、CD29和CD44,并且在细胞表面不表达CD14、CD34和CD45。

    13.  如权利要求8至12中任一项所述的方法,其中所述分化细胞是心脏修复细胞。

    14.  通过权利要求8至13中任一项所述的方法获得的细胞。

    15.  如权利要求14所述的细胞,其中所述细胞是心脏修复细胞。

    16.  权利要求1至7中任一项所述的组合物在制造用于治疗缺血性心肌病、心肌梗塞或心力衰竭的药物中的应用。

    17.  如权利要求16所述的应用,其中,所述组合物包含选自由FGF-2、IGF-1、活化素-A、TNF-α、FGF-4、LIF、VEGF-A及其组合组成的组的至少一种化合物。

    18.  如权利要求16所述的应用,其中,所述组合物包含FGF-2、IGF-1和活化素-A。

    19.  如权利要求16所述的应用,其中,所述组合物不包含选自由TNF-α、FGF-4、LIF和VEGF-A组成的组的至少一种化合物。

    20.  如权利要求16至19中任一项所述的应用,其中,当一种化合物存在于所述组合物中时,其存在量为:所述TGFβ-1以1ng/ml至5ng/ml的量存在,所述BMP4以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述α-凝血酶以0.5单位/ml至5单位/ml的量存在,所述FGF-2以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述IGF-1以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述活化素-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述TNF-α以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述FGF-4以1ng/ml至20ng/ml的量存在,所述IL-6以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述LIF以1单位/ml至10单位/ml的量存在,所述VEGF-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述视黄酸以每ml中0.1μM至1.0μM的量存在。

    21.  如权利要求20所述的应用,其中,所述组合物还包含α-凝血酶、FGF-2、IGF-1和活化素-A。

    22.  如权利要求21所述的应用,其中,所述组合物包含1U/mlα-凝血酶、10ng/mlFGF-2、50ng/ml IGF-1和5ng/ml活化素-A。

    23.  如权利要求16所述的应用,其中,所述组合物包含以组合方式使用的重组TGFβ-1、BMP4、活化素-A、FGF-2、IL-6、因子IIa、IGF-1和视黄酸。

    24.  如权利要求23所述的应用,其中,所述组合物包含2.5ng/ml重组TGFβ-1、5ng/ml BMP4、5ng/ml活化素-A、10ng/ml FGF-2、100ng/ml IL-6、1U/ml因子IIa、50ng/ml IGF-1和1μM视黄酸。

    25.  如权利要求24所述的应用,其中,所述因子IIa是hα-凝血酶。

    26.  如权利要求16所述的应用,其中,所述组合物包含在培养基中,所述培养基选自由含有胎牛血清、人血清、血小板裂解物及其混合物的培养基组成的组。

    27.  引导心脏修复的细胞群在制造用于治疗哺乳动物的缺血性心肌病、心肌梗塞或心力衰竭的药物中的应用,其中所述引导心脏修复的细胞群通过包括下述步骤的方法获得:(i)在含有TGFβ-1、BMP4、α-凝血酶、IL-6和视黄酸的组合物的存在下培养初始细胞,和(ii)确定来自所述引导心脏修复的细胞群的细胞样品包含这样的细胞:该细胞以提高水平表达选自由MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4mRNA、Flk-1mRNA、GATA6mRNA、Fog-1mRNA及其组合组成的组的至少一种mRNA,和/或具有选自由Nkx2.5多肽、MEF2C多肽、Tbx-5多肽、MESP-1多肽、GATA-4多肽、FOG-2多肽及其组合组成的组的至少一种多肽,其中所述多肽与所述细胞的细胞核相关。

    28.  如权利要求27所述的应用,其中,所述方法包括采用逆转录聚合酶链式反应。

    29.  如权利要求27或28所述的应用,其中,所述引导心脏修复的细胞群适合于通过选自由全身施用、心脏内施用和冠脉内施用组成的组的程序进行施用。

    说明书

    说明书含有心源性因子的组合物和相关方法、细胞,以及所述组合物、方法和细胞的应用
    本申请是分案申请,其原申请的国际申请号为PCT/US2009/044714,国际申请日为2009年5月20日,中国国家申请号为200980118954.X,进入中国国家阶段的进入日为2010年11月24日,国际公开发明名称译文为“利用细胞治疗心脏组织的组合物和方法”。 
    相关申请交叉引用 
    本申请要求于2008年5月27日提交的国际申请PCT/US2008/064895的优先权权益。 
    技术领域
    本发明涉及用于获得和使用心脏细胞的方法和材料。例如,本发明涉及用于向哺乳动物心脏组织提供可作为功能性心肌细胞导入心脏组织的细胞(例如分化心肌祖细胞(cardioprogenitor cell)或心脏修复细胞(cardiopoietic cell))的方法和材料。 
    背景技术
    尽管病人处理不断进步,心血管疾病还是世界范围内发病和死亡的主要因素。与具有高度修复能力的组织相比,心脏组织容易受到无法修复的损伤。因此在临床环境中一直在寻求基于细胞的再生心血管药物。 
    最近出现的干细胞生物学将现有的实践模式的范围由传统的缓解扩展至治愈性修复。通常而言,临床经验基于由自体来源收集并以未改变的状态进行输送的成体干细胞。第一代生物制剂是天然人体干细胞,被认为是易得的细胞类型。已显示出经输送天然人体干细胞使得特定患者得以改善。 
    发明内容
    定义 
    在本说明书的框架范围内,除非有相反指示,以下引号内的术语的定义如下。 
    术语‘hMSCs’指人间充质干细胞。 
    细胞的‘心生成潜力’是指该细胞在注入受损心脏后能成功产生心脏细胞例如心肌的能力。 
    ‘心脏修复细胞’(CP)是指处于由未分化细胞分化的途径中的细胞。“心脏修复细胞”表现出由早期心转录因子Nkx2.5和晚期心转录因子MEF2C的核转位所确定的心分化(Behfar等,Derivation of a cardiopoietic population from human mesenchymal stem yields progeny,Nature Clinical Practice,Cardiovascular Medicine,March2006vol.3supplement1,pages S78–S82)。能观察到心转录因子GATA4的核转位。心脏修复细胞可缺少肌节并缺少肌节蛋白的表达。心脏修复细胞保留自身分裂的能力。因为心脏修复细胞可以分化为心肌细胞,所以也称为“心肌细胞前体”或“心肌细胞祖细胞”。在本文的内容中,心脏修复细胞可来源于人成体间充质干细胞(hMSC)。‘CP-hMSCs’则指那些来源于人成体间充质干细胞的心脏修复细胞。 
    ‘鸡尾酒式混合物’或‘心源性鸡尾酒式混合物’指含有至少两种心源性物质的组合物。 
    ‘心源性物质’是改善细胞的心生成潜力的物质。 
    ‘鸡尾酒式混合物-引导细胞’或‘引导心脏修复的细胞’是已经与鸡尾酒式混合物相接触并进而进入分化的细胞。 
    ‘分化’是较少特化细胞变为更加特化细胞的过程。 
    ‘射血分数’意指在一次心跳中泵出的血液的分数。未限定时,术语射血分数专指左心室的射血分数(左心室射血分数或LVEF)。 
    ‘射血分数变化’指在指定时间后测量的经注射细胞至其梗塞心脏而治疗的动物的心脏的射血分数与注射前测量的射血分数之间的差别。 
    除非另外定义,本文中所使用的技术和科学术语均与本发明所属领域的普通技术人员所通常理解的含义相同。虽然与本文所描述的方法和材料相似或者等价的方法和材料也能用于实现本发明,但适宜的方法和材料如下所述。本文中提到的公报、专利申请、专利和其他参考文献均以参考的方式整体引入。在矛盾的情况下,以本发明说明书包括定义为准。此外,所述材料、方法和实例仅是描述性的,而不具有限制性。 
    本发明涉及包含TGFβ-1、BMP4、α-凝血酶、选自心营养素(Cardiotrophin)和IL-6的化合物、以及选自Cardiogenol C和视黄酸的化合物的组合物。在优选实施方式中,本发明的组合物包含TGFβ-1、BMP4、α-凝血酶、心营养素和Cardiogenol C。本发明的组合物可以包含选自FGF-2、IGF-1、活化素-A(Activin-A)、TNF-α、FGF-4、LIF、VEGF-A及其组合的至少一种化合物。本发明的组合物还可以包含FGF-2、IGF-1和活化素-A。本发明的其他优选组合物包含活化素-A、FGF-2、IL-6、IGF-1和视黄酸。根据替代性实施方式,本发明的组合物可以不包括选自TNF-α、FGF-4、LIF和VEGF-A的至少一种化合物。 
    当在本发明的组合物中存在以下化合物中的一种时,其存在量如下:所述TGFβ-1以1ng/ml至5ng/ml的量存在,所述BMP4以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述心营养素以0.5ng/ml至5ng/ml的量存在,所述α-凝血酶以0.5单位/ml至5单位/ml的量存在,所述Cardiogenol C以50nM至500nM的量存在,所述FGF-2以1ng/ml至10ng/ml的量存在,所述IGF-1以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述活化素-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述TNF-α以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述FGF-4以1ng/ml至20ng/ml的量存在,所述IL-6以10ng/ml至100ng/ml的量存在,所述LIF以1单位/ml至10单位/ml的量存在,所述VEGF-A以1ng/ml至50ng/ml的量存在,所述视黄酸以每ml中0.1μM至1.0μM的量存在。 
    本发明的优选组合物包含以组合方式使用的重组TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、心营养素(1ng/ml)、Cardiogenol C(100nM)。本发明特别优选的组合物包含所述化合物,并还包含α-凝血酶(1U/ml)、FGF-2(10ng/ml)、IGF-1(50ng/ml)和活化素-A(5ng/ml)。 
    本发明的其他优选组合物包含以组合方式使用的重组TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、活化素-A(5ng/ml)、FGF-2(10ng/ml)、IL-6(100ng/ml)、因子IIa(hα-凝血酶、1U/ml)、IGF-1(50ng/ml)和视黄酸(1μM)。 
    优选的是,本发明的组合物包含在培养基中,所述培养基选自含有胎牛血清、人血清、血小板裂解物及其混合物的培养基。 
    本发明还涉及一种由最初的细胞获得分化细胞的方法,所述分化细胞以提高水平表达选自MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4mRNA、Flk-1mRNA、GATA6mRNA、Fog-1mRNA及其组合的至少一种mRNA,和/或具有选自Nkx2.5多 肽、MEF2C多肽、Tbx-5多肽、FOG-2多肽、GATA-4多肽、MESP-1多肽及其组合的至少一种多肽,其中所述至少一种多肽与所述分化细胞的细胞核相关,其中所述方法包括在本发明的组合物的存在下培养初始细胞。在所述方法中,所述分化细胞优选表达提高水平的MEF2c mRNA和MESP-1mRNA。 
    在本发明的优选实施方式中,所述初始细胞是间充质干细胞。这些细胞是骨髓来源的干细胞。它们能在细胞表面表达CD90、CD105、CD133、CD166、CD29和CD44,并且在细胞表面不表达CD14、CD34和CD45。 
    最优选的是,所述分化细胞是心脏修复细胞。 
    本发明另一方面是将分化细胞输送至哺乳动物的方法,其中所述方法包括: 
    (a)确定分化细胞群的细胞样品包含这样的细胞:该细胞以提高水平表达选自MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4mRNA、Flk-1mRNA、GATA6mRNA、Fog-1mRNA及其组合的至少一种mRNA,和/或具有选自Nkx2.5多肽、MEF2C多肽、Tbx-5多肽、MESP-1多肽、GATA-4多肽、FOG-2多肽及其组合的至少一种多肽,其中所述多肽与所述分化细胞的细胞核相关,和 
    (b)向所述哺乳动物施用来自所述分化细胞群的细胞。可以由在本发明的任何一种所述组合物的存在下培养的所述初始细胞获得所述分化细胞群。在具体实施方式中,所述步骤(a)可以包括采用逆转录聚合酶链式反应或采用免疫细胞化学反应。所述施用步骤包括通过选自全身施用、心内施用和冠脉内施用的施用进行所述细胞的施用。 
    本发明的另一个方面是向心脏组织提供心肌细胞的方法,其中所述方法包括向所述心脏组织施用通过与本发明的组合物相接触而得到的所述分化细胞。 
    本发明的一个或多个实施方式的细节在附图和以下描述中进行阐述。本发明的其他特征、目的和优点通过说明书和权利要求书是显而易见的。 
    附图说明
    图1表示在用来源于11名冠状动脉疾病患者的骨髓的天然人间充质干细胞(hMSC)治疗之前和之后以%表示的射血分数变化(ΔEF)。 
    图2是在用DAPI免疫染色后通过共聚焦显微镜获得的,显示了治疗之后未表现出正射血分数变化的患者2(左图)和表现出正射血分数变化的患者9(右图)的心肌转录 因子含量的蛋白表达。 
    图3显示了11名患者的hMSC中两种重要的心肌转录因子mRNA的mRNA表达。 
    图4显示了以任意单位(A.U.)表示的未经处理的天然hMSC(左侧)和用心源性鸡尾酒式混合物处理的CP-hMSC(右侧)中分别为Nkx2.5mRNA、GATA-6mRNA和Fog-1mRNA的心肌转录因子的mRNA表达。 
    图5所示的通过共聚焦显微镜获得的图像显示,与天然hMSC(左侧)相比较,用心源性鸡尾酒式混合物处理的CP-hMSC(右侧)中的Nkx2.5、MEF2C、FOG-2和GATA4多肽的核转位。 
    图6描述了由天然hMSC向“鸡尾酒式混合物引导的”CP-hMSC的渐进转变(于D0天、D5天、D15天和D20天),并最终转化为心肌细胞(CM)。 
    图7显示了天然hMSC和鸡尾酒式混合物引导的心肌细胞的透射电子显微镜超微结构。 
    图8显示了光学显微镜下的鸡尾酒式混合物引导的心肌细胞。 
    图9中左侧第一幅图表示来自于图1各患者的天然hMSC和CP-hMSC的Tbx-5mRNA表达(AU),天然细胞的结果位于直方图右侧,CP细胞的结构位于直方图左侧。位于中间的第二幅图表示MEF2C mRNA表达,位于右侧的第三幅图表示MESP-1mRNA表达。所有患者的天然细胞的平均值和所有患者的CP细胞的平均值在直方图背景中给出。 
    图10表示在用不同量的天然hMSC(十二名患者中的各患者直方图的右侧部分)进行心脏治疗后,与用CP-hMSC,即鸡尾酒式混合物引导的hMSC(CP-hMSC)进行心脏治疗后相比的射血分数变化(Δ射血分数)。 
    图11表示未治疗的(左图)和用心脏修复细胞治疗(右图)的梗塞心脏的超声心动图,显示了经CP-hMSC治疗后好得多的前壁恢复。 
    图12是与图5相似的图,显示了在梗塞心肌膜中注入天然细胞(左侧)和心脏修复细胞(右侧)之后射血分数变化(ΔEF)。假治疗组没有细胞的注入。 
    图13显示了治疗开始的六个月以后用天然hMSC和CP-hMSC治疗的鼠梗塞心脏。动脉瘤和瘢痕在天然hMSC治疗的心脏中未得到修复,而在诱导了重新肌化的CP-hMSC治疗中都得到消解。 
    图14显示了共聚焦解析所揭示的,通过人特异性核纤层蛋白免疫染色验证,在心脏修复hMSC治疗的鼠心肌中,广泛存在对人类物种具有特异性的h-ALU DNA序列为正染色的人源性细胞,所有这些在梗塞对照中均不存在。 
    图15显示了在经心脏修复hMSC治疗的心脏中通过人心肌肌钙蛋白-I和α-辅肌动蛋白共定位来追踪的人源的心肌细胞。在经天然hMSC治疗的心脏中不存在人源的心肌细胞。梗塞前壁内的量化揭示了经天然hMSC治疗的心脏相比经CP-hMSC治疗的心脏中心肌细胞核为3±2%和25±5%,意味着经心脏修复hMSC治疗可增强移植并入。 
    图16包含针对人肌钙蛋白、心室肌球蛋白轻链mlC2V和DAPI染色的天然和CP hMSC的照片。通过经修复的前壁中心室肌球蛋白轻链mlC2V免疫染色对人类肌钙蛋白阳性细胞的进行的对比染色(如图15所示),或者如图17中所示的消解的瘢痕,从而证实了心室细胞表型。 
    图17是针对人肌钙蛋白、心室肌球蛋白轻链mlC2V和DAPI染色的的残余瘢痕的照片。 
    图18包含经CP-hMSC治疗的再生心肌的照片,这证实了堵塞冠状血管远端的血管生成。 
    图19通过心肌脉管系统中人PECAM-1(CD-31)的表达证实了CP-hMSC有助于新血管生成。 
    图20是描绘了在细胞输送之后相对于假治疗组的Δ射血分数(%)对比时间(以月计)的图。跟踪CP-hMSC治疗的长期影响超过1年,或者鼠寿命的三分之一,可换算为25年的人类寿命。相对于假治疗组,天然hMSC的治疗在6个月和12个月时分别显示了5%和2.5%射血分数效果。相比而言,心脏修复hMSC治疗的梗塞小鼠于6个月和12个月时表现出相对于假治疗组25%的显著射血分数提高。 
    图21是描绘了细胞移植后Δ射血分数(%)对比时间(以月计)的图。将梗塞组分类以评价在干预时患有经证实的明显心力衰竭(射血分数<45%)的小组中的效力。尽管治疗前射血分数均相等为35%,但仅有心脏修复hMSC治疗于6个月和12个月时使绝对射血分数提高10%,相比之下在天然hMSC治疗组中射血分数下降5%。 
    图22是描绘了所标明小组的小鼠的存活率(%)的柱状图。在后续400天时,明显心力衰竭小组中,在假治疗组中没有存活者,用天然hMSC进行的治疗经记录有>50% 的死亡率。相反,利用心脏修复hMSC治疗得到>80%的存活率。 
    图23描述了用病理检查和心电图确定的CP-hMSC治疗的安全性。 
    具体实施方式
    本说明书提供了涉及心脏细胞(例如,分化心肌祖细胞)的方法和材料。例如,本说明书提供了具有作为功能性心肌细胞导入心脏组织的能力的细胞,制造这种细胞的方法,制造这种细胞的组合物,以及确定细胞群(例如分化心肌祖细胞)是否包含具有作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力的细胞。本说明书还提供了向心脏组织(例如人心脏组织)提供功能性心肌细胞的方法和材料。 
    本文所提供的分化心肌祖细胞可来自于任何物种,包括但不限于人、猴、马、狗、猫、大鼠或小鼠。例如,分化心肌祖细胞可以是哺乳动物(例如人)分化心肌祖细胞。 
    在一些情况下,本文提供的分化心肌祖细胞具有作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力。 
    可以采用任何适宜的方法获得分化心肌祖细胞。例如,分化心肌祖细胞可来源于干细胞,诸如哺乳动物(例如,人)干细胞。 
    在一些情况下,分化心肌祖细胞可来源于胚胎干细胞。在一些情况下,分化心肌祖细胞可来源于间充质干细胞。间充质干细胞可由任何来源获得。例如,间充质干细胞可由哺乳动物(例如人)组织,如骨髓和骨小梁获得。间充质干细胞可以体外培养。例如,间充质干细胞可以在体外增加数量。间充质干细胞可在细胞表面表达或者不表达多肽标记物。例如,间充质干细胞可在细胞表面表达CD133、CD90、CD105、CD166、CD29和CD44,并且可在细胞表面不表达CD14、CD34和CD45。 
    可以采用任何合适的方法由干细胞(例如间充质干细胞)得到分化心肌祖细胞。例如,可以通过将间充质干细胞与组合物(例如培养基)进行温育从而由所述间充质干细胞得到分化心肌祖细胞。所述组合物可以是含有一种或多种因子的任何合适的组合物。所述因子可以是任何类型的因子,如多肽、类固醇、荷尔蒙和小分子。这些因子的例子包括但不限于TGFβ、BMP、FGF-2、IGF-1、活化素-A、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C。 
    在一个实施方式中,可以采用含有TGFβ、BMP、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C的培养基由干细胞(例如间充质干细胞)得到分化心肌祖细胞。在这些情况下,可以 在使用含有TGFβ、BMP、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C的培养基进行的最初培养期(例如一天或两天)之后,在所述培养基中加入FGF-2、IGF-1、活化素-A或其组合。 
    TGFβ可以是任何具有TGFβ活性的多肽,诸如人TGFβ。例如,TGFβ可以是重组TGFβ或合成TGFβ。在一个实施方式中,TGFβ可以是TGFβ-1。可以使用任何适宜浓度的TGFβ。例如,可以使用1ng/ml至10ng/ml的TGF-β(例如,约2.5ng/ml的TGFβ1)。 
    BMP可以是任何具有BMP活性的多肽,诸如人BMP。例如,BMP可以是重组BMP或合成BMP。在一个实施方式中,BMP可以是BMP4。可以使用任何浓度的BMP。例如,可以使用1ng/ml至20ng/ml的BMP(例如,约5ng/ml的BMP4)。 
    FGF-2可以是任何具有FGF-2活性的多肽,诸如人FGF-2。例如,FGF-2可以是重组FGF-2或合成FGF-2。可以使用任何浓度的FGF-2。例如,可以使用1ng/ml至20ng/ml的FGF-2(例如,约5ng/ml的FGF-2)。 
    IGF-1可以是任何具有IGF-1活性的多肽,诸如人IGF-1。例如,IGF-1可以是重组IGF-1或合成IGF-1。可以使用任何浓度的IGF-1。例如,可以使用10ng/ml至100ng/ml的IGF-1(例如,约50ng/ml的IGF-1)。 
    活化素-A可以是任何具有活化素-A活性的多肽,诸如人活化素-A。例如,活化素-A可以是重组活化素-A或合成活化素-A。可以使用任何浓度的活化素-A。例如,可以使用1ng/ml至50ng/ml的活化素-A(例如,约10ng/ml的活化素-A)。 
    α-凝血酶可以是任何具有α-凝血酶活性的多肽,诸如人α-凝血酶。例如,α-凝血酶可以是重组α-凝血酶或合成α-凝血酶。可以使用任何浓度的α-凝血酶。例如,可以使用0.5单位/ml至10单位/ml的α-凝血酶(例如,约1单位/ml的α-凝血酶)。 
    心营养素可以是任何具有心营养素活性的多肽,诸如人心营养素-1。例如,心营养素可以是重组心营养素或合成心营养素。可以使用任何浓度的心营养素。例如,可以使用0.5ng/ml至10ng/ml的心营养素(例如,约1ng/ml的心营养素-1)。 
    IL-6可以是任何具有IL-6活性的多肽,诸如人IL-6。例如,IL-6可以是重组IL-6或合成IL-6。可以使用任何浓度的IL-6。例如,可以使用100ng/ml至200ng/ml的IL-6。 
    可以使用任何浓度的Cardiogenol C或其可药用盐(例如盐酸Cardiogenol C)。例 如,可以使用10nM至1000nM的Cardiogenol C(例如,约100nM的Cardiogenol C)。 
    视黄酸可以是任何具有视黄酸活性分子,诸如合成视黄酸、天然视黄酸、维生素A代谢物、维生素A的天然衍生物或维生素A的合成衍生物。可以使用任何浓度的视黄酸。例如,可以使用1×10-6μM至2×10-6μM的视黄酸。 
    在一些情况下,可以使用补充有TGFβ-1(例如,2.5ng/ml)、BMP4(例如,5ng/ml)、FGF-2(例如,5ng/ml)、IGF-1(例如,50ng/ml)、活化素-A(例如,10ng/ml)、心营养素(例如,1ng/ml)、α-凝血酶(例如,1单位/ml)和Cardiogenol C(例如,100nM)的含有血清或不含有血清的培养基由干细胞(例如,间充质干细胞)得到分化心肌祖细胞。在一些情况下,所述培养基(例如含有血清或不含有血清的培养基)可含有血小板裂解物(例如,人血小板裂解物)。 
    在一些情况下,用以由间充质干细胞获得分化心肌祖细胞的组合物可含有其他可选的因子,诸如TNF-α、LIF和VEGF-A。 
    TNF-α可以是任何具有TNF-α活性的多肽,诸如人TNF-α。例如,TNF-α可以是重组TNF-α或合成TNF-α。可以使用任何浓度的TNF-α。例如,可以使用5ng/ml至50ng/ml的TNF-α。 
    LIF可以是任何具有LIF活性的多肽,诸如人LIF。例如,LIF可以是重组LIF或合成LIF。可以使用任何浓度的LIF。例如,可以使用2.5ng/ml至100ng/ml的LIF。 
    VEGF-A可以是任何具有VEGF-A活性的多肽,诸如人VEGF-A。例如,VEGF-A可以是重组VEGF-A或合成VEGF-A。可以使用任何浓度的VEGF-A。例如,可以使用5ng/ml至200ng/ml的VEGF-A。 
    本文提供的组合物可含有任意组合的因子。例如,本文提供的组合物可含有TGFβ-1、BMP4、活化素-A、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C。在一些情况下,本文提供的组合物可含有TGFβ-1、BMP4、FGF-2、IGF-1、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C。在一些情况下,本文提供的组合物可含有TGFβ-1、BMP4、FGF-2、IGF-1、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C。在一些情况下,本文提供的组合物可不含有TNF-α、IL-6、LIF、VEGF-A、视黄酸或其任何组合(例如,IL-6、LIF、VEGF-A和视黄酸;LIF、VEGF-A和视黄酸;或TNF-α、IL-6、LIF和VEGF-A)。 
    本文提供的组合物可以采用任何适宜的方法进行制备。例如,可以使用商售因子 制备本文提供的组合物。在一些情况下,本文提供的组合物经制备可包含细胞裂解物(例如血小板裂解物)或来自诸如心肌细胞或TNF-α刺激的内胚层细胞等细胞的条件培养基。例如,可以使用补充有商售因子的血小板裂解物制备本文提供的组合物。在一些情况下,可以使用分离自条件培养基的因子制备本发明提供的组合物。在一些情况下,所述因子可以溶解于培养基,如含有血清或者不含有血清的细胞培养基。 
    可以使用任何合适的方法将干细胞(例如,间充质干细胞)与本文提供的组合物进行温育,从而得到具有作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力的分化心肌祖细胞。例如,间充质干细胞可以与本文提供的组合物共同温育1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45或50天。在一些情况下,本文所提供的用以与间充质干细胞共同温育的组合物可以每天或者每2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45或50天更换。 
    在一些情况下,可以在血清存在或不存在的情况下,将间充质干细胞与本文提供的组合物一起温育。当将干细胞与本文提供的组合物进行温育时,可以采用任何适宜的细胞密度。例如,可以将约1000个至2000个间充质干细胞/cm2(例如,约1500个至2000个细胞/cm2)与本文提供的组合物共同温育,从而得到分化心肌祖细胞。 
    一旦干细胞(例如,间充质干细胞)已经与本文提供的组合物一起温育或相反地与分化因子一起温育,可以监测分化状态以确定所述干细胞是否分化为具有作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力的分化心肌祖细胞。例如,可以收集细胞样品并采用诸如蛋白印迹、荧光激活细胞分选(FACS)、免疫染色、激光共聚焦显微镜和逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)技术(例如,定量RT-PCR)等技术进行评估。在一些情况下,可以选择经发现表达提高水平的MEF2c、MESP-1、Tbx-5、Nkx2.5、GATA6、Flk-1、Fog1和Fog2多肽或mRNA的细胞,以施用到哺乳动物中从而治疗心脏组织。 
    如本文所述,由用含有TGFβ-1、BMP4、FGF-2、IGF-1、活化素-A、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C的血小板裂解物培养的间充质干细胞产生的分化心肌祖细胞的MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA6mRNA、Flk-1或Fog1mRNA的水平,与处理前的间充质干细胞中观察到的水平相比,表现出2至5倍的提高。这些分化心肌祖细胞在进行心肌内、皮下或血管内注射时也表现出作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力,以及与缺血环境和非缺血环境中结构修复均直接相关 的心泵功能改善。活体超声心动图和通过人类特定蛋白染色进行的组织学尸检均证实了功能性益处。还如本文所述,由用含有TGFβ-1、BMP4、FGF-2、IGF-1、活化素-A、心营养素、α-凝血酶和Cardiogenol C的血清培养的间充质干细胞所产生的分化心肌祖细胞的MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA的水平,与处理前的间充质干细胞中观察到的水平相比,表现出5至10倍的提高。 
    这些分化心肌祖细胞在进行心肌内注射(例如,通过心内膜或心外膜途径)、向冠状动脉内注射、灌输到心脏中或者全身施用(例如,皮下施用)时还表现出作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力,以及与缺血环境和非缺血环境中结构修复均直接相关的心泵功能改善。活体心超声和通过人类特定蛋白染色进行的组织学尸检均证实了功能性益处。因此,在施用至哺乳动物之前,可以采用诸如MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA6、Flk-1、Fog1、FOG2或其组合的多肽或mRNA水平提高等释放标准来评估细胞。 
    关于细胞种群中MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA6、Flk-1或Fog(例如对mRNA而言为FOG1,对多肽而言为FOG2)的多肽或mRNA水平,在本文中使用的术语“提高水平”是指高于该多肽或mRNA的基准水平的任何水平。 
    关于细胞种群中MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA6、Flk-1或Fog(例如对mRNA而言为FOG1,对肽而言为FOG2)的多肽或mRNA水平,在本文中使用的术语“基准水平”是指通常在处理前的细胞(例如处理前的间充质干细胞)中发现的水平。例如,MEF2c mRNA基准水平、MESP-1mRNA基准水平、Tbx-5mRNA基准水平、GATA6mRNA基准水平和FOG1mRNA基准水平可以分别是在未用本文提供的组合物处理的或用分化因子处理的间充质干细胞的随机取样中存在的MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA6、Flk-1和FOG1mRNA的平均水平。应当理解的是,在确定特定水平是否为提高水平时,可以采用可比样品的水平。 
    MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA4、GATA6、Flk-1、Fog2或FOG1的多肽和/或mRNA的提高水平可以是任何水平,只要该水平大于相应的基准水平即可。 
    例如,Tbx-5mRNA的提高水平可以比在未经处理的间充质干细胞中观察到的Tbx-5mRNA的基准水平高1.5、2、3、4、5、6、7、8、9、10或更多倍。应注意,基准水平可以是任何量。例如,Tbx-5mRNA的基准水平可以是零。在此情况下,任何大于零的Tbx-5mRNA水平都是提高水平。 
    在一些情况下,鉴别标准可以包括向哺乳动物施用前的细胞显微分析。该显微分析可以包括针对与细胞核相关的转录因子多肽对细胞进行评估。例如,可以在释放进入哺乳动物前,通过与细胞核相关的Nkx2.5、MEF2c、GATA4、MESP-1、FOG2、Tbx-5或其任意组合的存在,而评估适于释放进入哺乳动物的细胞。 
    可以使用任何适宜的方法向心脏组织提供具有作为功能性心肌细胞而并入心脏组织的能力的分化心肌祖细胞。例如,分化心肌祖细胞可以心肌内注射(例如,通过心内膜或心外膜途径)、向冠状动脉内注射、灌输到心脏中或者全身施用(例如,皮下施用)。 
    可以向任何心脏组织提供分化心肌祖细胞。例如,可以向哺乳动物(例如人)心脏组织提供分化心肌祖细胞。在一些情况下,可以向受缺血性心肌病、心肌梗塞或心力衰竭损害的心脏组织提供分化心肌祖细胞。 
    可以向心脏组织施用任何类型的分化心肌祖细胞。例如,可以向心脏组织施用自体或异源分化心肌祖细胞。在一些情况下,可以向心脏组织施用与本文提供的组合物共同温育过的干细胞(例如,间充质干细胞)。 
    可以将干细胞与本文提供的组合物共同温育任意长的时间,然后施用至心脏组织。例如,可以将干细胞与本文提供的组合物共同温育6小时至24小时(例如8、10、12、18或22小时)或者1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45或50天,然后施用至心脏组织。在一些情况下,可以将已经与本文提供的组合物共同温育的干细胞与本文提供的组合物一起施用于心脏组织。 
    可以将干细胞与本文提供的组合物共同温育任意长的时间,然后与本文提供的组合物一起施用至心脏组织。例如,可以将干细胞与本文提供的组合物共同温育6小时至24小时(例如8、10、12、18或22小时)或者1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、30、35、40、45或50天,然后与本文提供的组合物一起施用至心脏组织。 
    在一些情况下,可以在施用至哺乳动物之前评估分化心肌祖细胞以确定它们是否符合具体释放标准。例如,可以利用RT-PCR评估分化心肌祖细胞以确定所述分化心肌祖细胞在施用于哺乳动物之前表达提高水平的MEF2c、MESP-1、Tbx-5、GATA6、Flk-1、Fog(例如对mRNA而言为FOG1,对肽而言为FOG2)或其组合的多肽或 mRNA。 
    在以下实施例中对进一步对本发明进行描述,所述实施例并不限制权利要求书中所述的本发明的范围。 
    实施例 
    随机选择针对缺血性心脏病进行冠状动脉搭桥术的患者进行骨髓采集。他们提供了告知同意书,研究方案也得到相关伦理委员会和动物管理使用委员会的批准。值得注意的是未对患者进行注射而仅仅对小鼠进行了注射。 
    实施例1 
    间充质干细胞来源于抽取自18至45周岁的健康个体的骨盆的后髂嵴的人类骨髓(Cambrex,East Rutherford,New Jersey)。基于流式细胞术分析,所述间充质干细胞表达CD90、CD133、CD105、CD166、CD29和CD44,并且不表达CD14、CD34和CD45。 
    人骨髓来源的间充质干细胞在补充有TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、FGF-2(5ng/ml)、IGF-1(50ng/ml)、活化素-A(10ng/ml)、心营养素(1ng/ml)、α-凝血酶(1单位/ml)和Cardiogenol C(100nM)的血小板裂解物或血清中培养。以约1000个至2000个细胞/cm2的密度在含有血小板裂解物的培养基中4天至10天后,发现所述细胞表达的MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA6mRNA、Flk-1或FOG1mRNA比未经处理的间充质干细胞多2倍至5倍。 
    以约1000个至2000个细胞/cm2的密度在含有血清的培养基中5天至15天后,发现所述细胞表达的MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4mRNA、GATA6mRNA、Flk-1或FOG1mRNA比未经处理的间充质干细胞多5倍至10倍。 
    用于RT-PCR分析的引物对是商购自Applied Biosystems的标准引物。 
    于跳动的心脏内得到的体内结果和随后尸检得到的体外结果均证实所述分化心肌祖细胞具有作为功能性心肌细胞并入心脏组织的能力。经过伴随长轴上的二维M-模式探测的短轴上的超声心动图、多普勒脉冲波分析和12导联心电图的监测,异氟烷麻醉下活体内将心肌祖细胞直接心肌输送至患病心脏改善了心功能。 
    收集的心脏组织在3%多聚甲醛中固定,切片并进行针对人类细胞示踪的免疫探测。在用满足释放标准(即MEF2c mRNA、MESP-1mRNA、Tbx-5mRNA、GATA4 mRNA、GATA6mRNA、Flk-1或FOG1mRNA的提高表达水平)的心肌祖细胞治疗的小鼠中的分析则证实了新生的人类来源心肌细胞和脉管系统,伴随功能改善和瘢痕消解,相比之下,利用未达到释放标准的细胞没能获得益处。 
    为了扩大用于患者自体注射的心脏修复细胞的生产规模,由于免疫荧光耗时、定性并且可能依赖于操作者,因此考虑其他替代方法。一种供选择的方法是实时定量逆转录聚合酶链式反应(RT-qPCR)。该方法更快地(一天之内)给出不依赖于操作者且相对于基准标准定量的结果。此外,当需要对免疫染色样品一个接一个地进行荧光显微评价时,使用96孔板可以通过RT-qPCR一式两份地测试多达48个不同的样品(或条件)。 
    为了鉴别RT-qPCR的适宜标记物,由获得自心脏病患者(n=7)的骨髓样品获得心脏修复细胞。通过针对MEF2C和Nkx2.5的免疫荧光染色评价细胞。由这些细胞提取RNA,通过实时定量PCR测量Nkx2.5和MEF2C的表达。 
    基准标准由来自于相同批但并未在心源鸡尾酒式混合物存在下进行培养的细胞构成。 
    采用双Δ-Ct方法计算结果,将由经处理的细胞获得的数据对由未经处理的细胞得到的数据进行标准化。 
    当与天然细胞相比时,qPCR和免疫荧光(核转位)均将MEF2C鉴别为心脏修复细胞的适宜标记。相反,通过免疫荧光(核转位)于蛋白水平看到的Nkx2.5的定性变化并未初始地转变为相对于未经处理的细胞的RNA水平的定量变化。随后研究了Nkx2.5下游的基因,因为它们的表达的诱导将依赖于Nxk2.5的核转位。这导致将MESP-1、Flk-1和Tbx5鉴别为可用于QPCR鉴别的其他适宜的基因。 
    在胸骨切开术之后的冠状动脉搭桥术过程中获得人骨髓抽出物(15ml至20ml)。骨髓低温保存在基于DMSO的不含有血清的冷冻溶液中。通过将原骨髓置于塑料盘中,并且于12h时洗涤选择粘附细胞从而募集间充质干细胞,并且通过使用CD34-/CD45-/CD133+标记物组的荧光激活细胞分选(FACS)分析进行了确认。细胞于37℃在补充有5%人血小板裂解物的DMEM(Mayo Clinic Blood Bank,Rochester,MN)中培养。 
    在免疫功能不全的裸鼠(Harlan,Indianapolis,IN)中制造心肌梗塞。根据盲法设计,在梗塞后一个月,将悬浮在12.5μl增殖培养基中的总数600,000的天然hMSC或心 脏修复引导的hMSC在显微镜观察下注入左心室前壁上的五个心外膜位点。假治疗组进行相同的手术过程但没有细胞注入。对该慢性梗塞模型进行的骨髓hMSC的心肌注入证实了细胞移植结果的异质性,11个研究个体中仅有2个在超声心动图中改善了射血分数。 
    患者3和9经鉴别为具有高心生成潜力的个体。首先由图1观察到用分别来自于患者3和9的hMSC治疗的小鼠(n=3)中射血分数的变化是显著阳性的,而其他各患者的变化则不是。 
    如图2所示,用共聚焦显微镜在hMSC中观察到心肌转录因子的蛋白表达。代表性地对于所有图,条棒对应于20μm。 
    在3%多聚甲醛中固定并用1%Triton X-100透化,之后以对下述分子特异性的抗体进行免疫染色:MEF2C(1:400,Cell Signaling Technologies,Danvers,MA)、Nkx2.5(1:150,Santa Cruz Biotechnology Inc.,Santa Cruz,CA)、GATA4(Santa Cruz Biotechnology Inc.)、Phospho-AKTSer473(1:100,Cell Signaling Technologies)、Tbx5(1:5000,Abcam,Cambridge,MA)、Mesp-1(1:250,Novus Bio,Littleton,CO)、Fog-2(1:100,Santa Cruz Biotechnology)、肌节蛋白α-辅肌动蛋白(1:500,Sigma-Aldrich)和人特异性肌钙蛋白-I(1:100,Abcam)、mlC2v(1:500,Synaptic Systems,Gottigen,Germany)、Sca-1(1:100,R&D Systems,Minneapolis,MN)、CD-31/PECAM-1(1:500,Beckman Coulter,Fullerton,CA)、α-平滑肌肌动蛋白(Abcam)、人特异性肌钙蛋白-I(1:100,Abcam)、人核纤层蛋白A/C(1:50,Novacastra,New Castle,UK)和Ki67(1:500,Abcam),并进行DAPI染色以使细胞核在用LSM510激光扫描共聚焦显微镜(Carl Zeiss Inc.,Jena,Germany)进行的共聚焦显微术中可见。 
    在DAPI染色下观察到早期心肌转录因子Nkx2.5、Tbx-5和MESP1,晚期心肌转录因子MEF2C。患者2的结果位于左侧,患者9的结果位于右侧。所得图像显示,对于来自患者2的hMSC,心肌转录因子的表达较弱,而对于来自患者9的则较强。这证实了来自患者9的hMSC给出有效治疗益处而来自患者2的hMSC则不能给出有效治疗益处的事实。DAPI提供的颜色为蓝色。 
    在图2中,针对Nkx2.5的第一系列图像显示了对于患者2的hMSC(左图),细胞核仅被DAPI染为蓝色(左图)。还出现了对应于在细胞质中存在的Nkx2.5的弱绿色染色。患者9的相应图像(右图)显示了Nkx2.5在细胞质中以及在细胞核中更高地表 达(绿色)。 
    第二系列图像显示了患者2的心肌转录因子Tbx-5(绿色)和MESP-1(红色),细胞核经DAPI染为蓝色,没有见到绿色或红色,这对应于没有表达TbX-5和MESP-1。对于患者2,细胞质染为红色,细胞核为绿色,这对应于两种心肌转录因子的强表达和Tbx-5核转位至细胞核。 
    第三系列图像给出了与Nkx2.5相似的MEF2C的结果。 
    图3显示了在qPCR中研究的mRNA表达,揭示了对于本研究的11名患者的hMSC的心肌转录因子表达(MEF2C和Tbx-5)。 
    使用TaqMan PCR试剂盒,通过Applied Biosystems7,900HT序列检测系统(Applied Biosystems,Foster City,CA)进行定量聚合酶链式反应(qPCR)。TaqMan基因表达反应在96孔板中温育,并一式三份地进行。循环阈值(CT)定义为荧光超过固定阈值时的循环分数。TaqMan CT值换算为用2–ΔΔCT法确定的相对变化倍数,标准化为GAPDH(P/N435,2662-0506003)表达。 
    评价了表1中所列的基因,它们代表性地具有心肌转录活性。 
    在用含有人重组TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、心营养素(1ng/ml)、α-凝血酶(1U/ml)和Cardiogenol C(100nM)的心源性鸡尾酒式混合物进行5天刺激之前和之后,在mRNA和蛋白水平上评价细胞。患者2和9的hMSC的MEF2C mRNA和Tbx-5mRNA表达(任意单位AU),比任一个其他患者,都要高得多。 
    表1 

    利用经胸廓超声心动图(Sequoia512;Siemens,Malvern,PA and VisualSonics Inc,Toronto,Canada)连续跟踪左心室功能和结构。射血分数(%)计算为[(LVVd-LVVs)/LVVd]×100,其中LVVd是左心室舒张末期容积(μl),LVVs是左心室收缩末期容积(μl)。 
    图4显示了分别对于未经处理的天然hMSC(左侧)和用心源性鸡尾酒式混合物处理的CP-hMSC(右侧)的Nkx2.5mRNA、GATA-6mRNA和Fog-1mRNA的心肌转录因子的mRNA表达,以任意单位(A.U.)表示。在明显的是,每种情况下,采用心源性鸡尾酒式混合物处理的细胞时结果好得多。 
    图5显示了在共聚焦显微镜上获得的图像,该图像显示在用心源性鸡尾酒式混合物处理的天然CP-hMSC中的Nkx2.5、MEF2c、GATA4和FOG-2多肽的核转位。Nkx2.5、MEF2c、GATA4和FOG-2表现为绿色,DAPI为蓝色。在天然hMSC的图像中,没有出现转录因子。浓的绿色指示多肽转位到CP-hMSC的细胞核上(右侧)。 
    图6描述了由天然hMSC向“鸡尾酒式混合物引导的”CP-hMSC的渐进转变(于D0天、D5天、D15天和D20天),并最终转化为心肌细胞(CM)。在D0,细胞核由DAPI染为蓝色。在D5,MEF2C多肽转位至细胞核(绿色)。在D15,存在肌节α-辅肌动蛋白(红色),这表明存在肌节并因此所述细胞明确地进入心肌分化,而不再具有 心脏修复性。在D20,在心肌细胞中存在大量肌钙蛋白-I(终末分化)。 
    图7显示了天然hMSC(左图)和鸡尾酒式混合物引导的心肌细胞(右图)的透射电子显微镜超微结构。为此,细胞在1%血小板裂解物中培养15天。所述心肌细胞表现出线粒体成熟,肌节生成和肌管形成。 
    图8显示了光学显微镜下的鸡尾酒式混合物引导的心肌细胞。通过诱导钙瞬变评估兴奋-收缩系统的成熟。为此,将细胞在5天鸡尾酒式混合物刺激后培养15天,用5μM钙选择性探针氟-4-乙酰氧甲基酯(Molecular Probes,Carlsbad,CA)于37℃加载30分钟,以便使用温控Zeiss LSM510显微镜(Zeiss)进行活体成像,于1Hz刺激期间获取线扫描图像。 
    图9显示了与未经处理的hMSC比较,经处理的hMSC中Tbx-5、MEF2C和MESP-1增加3倍、8倍和8倍。 
    如图10中所示,在梗塞后一个月将满足CARPI标准的CP-hMSC输送至体内,并与天然患者-匹配hMSC相比明显改善射血分数。 
    图11表示未治疗的的梗塞心脏(左图)和用心脏修复细胞治疗的(右图)的梗塞心脏的超声心动图,显示了经CP-hMSC治疗后好得多的前壁恢复。在浅麻醉下(1.5%异氟烷),使用四肢导联心电图术(MP150;Biopac,Goleta,CA)记录心电图。 
    在超声心动图中,与用天然hMSC(n=17)或假治疗组(n=10;图9)记录的边际变化相比,在用CP-hMSC(n=14)治疗后,收缩性在一个月和两个月分别提高15%和20%。在顶图中,冠状动脉结扎后4周和细胞移植前一天(MI后4周–未Tx)的梗塞心脏的超声心动图以M-模式揭示了两个研究组中的运动性差的前壁。中图:细胞移植后4周(细胞Tx后4周),与CP-hMSC治疗组的恢复相比,天然hMSC治疗的心脏表现出前壁保持差的运动性。底图:细胞移植后8周(细胞Tx后8周),与在CP-hMSC治疗的梗塞心脏中强有力的收缩活性相比,天然hMSC治疗的心脏显示出的心肌修复证据依然有限。左图表示胸骨旁(PS)长轴视图,虚线指示2D M-模式捕捉的平面。右图中的箭头指示前壁恢复。 
    图12显示了平均而言,在注入梗塞心肌后的一个月和两个月的后续期,引导的心脏修复hMSC实现了显著的改善。相比而言,天然hMSC或假治疗组对照对射血分数的影响有限。星号和双星号指示了对于两个时间点相对于天然hMSC,p<0.01。 
    在用来源于hMSC的心脏修复细胞治疗的心脏中,功能性改善与3个月和18个 月时对心肌再生的组织病理学评价相关联。在天然hMSC治疗的心脏中保持未得到修复的动脉瘤和瘢痕在诱导了重新肌化的心脏修复hMSC治疗中得以消解(图13)。 
    粗略病理学评价证实了在治疗开始后六个月,与天然hMSC治疗(左图)的梗塞心脏相比,在心脏修复hMSC治疗(CP,右图)的梗塞心脏中左前降(LAD)动脉结扎(心脏上的黄色环)下游的瘢痕得到消解,在横截面上伴有坚实的重新肌化和减弱的再塑。 
    通过在85℃杂交5分钟至10分钟,于37℃温育过夜,随后通过抗荧光素GFP标记的第二检测,使用人ALU-探针(Biogenex,San Ramon,CA)进行针对ALU-DNA的探测。 
    共聚焦解析揭示,过人特异性核纤层蛋白免疫染色验证,在CP-hMSC治疗的鼠心肌中,广泛存在对人类物种具有特异性的ALU DNA序列为正染色的人源性细胞,所有这些在梗塞对照中均不存在(图14)。 
    与假治疗组(左图)相比,在共聚焦显微评价中的心脏修复hMSC治疗的心脏显示了嵌入在小鼠梗塞心肌中的人类细胞核显著的存在,所述细胞核经人h-ALU DNA探针(中图)所染色,通过对人特异性核纤层蛋白抗体的另外染色进一步进行了确证(右图,图14中的插框)。由PBS中超氧合3%多聚甲醛的灌注液固定的心脏制备冰冻心肌部分。条棒表示50μm。 
    图15显示了人特异性肌钙蛋白-I抗体在天然hMSC治疗的心脏(左图)中没有显示染色,相比而言,在心脏修复hMSC治疗的心脏(中图和右图)的前壁中显著染色。 
    此外,如图16所示,人肌钙蛋白-I染色并用mlC2v进行对比染色证实,与心脏修复(底图)hMSC治疗心脏相比,天然(顶图)hMSC治疗心脏由移植并入的人类细胞产生心室心肌。条棒表示20μm(顶图)和50μm(底图)。 
    如图17所示,在来源于hMSC-治疗的心脏的心脏修复的剩余瘢痕中,利用人肌钙蛋白与mlC2V的共定位,能将人干细胞来源的心肌与原有小鼠心肌相区分。条棒表示50μm。 
    在图18中,表面显微术检测到在CP-hMSC-治疗的心脏中结扎LAD(黑色环)远端的血管新生,由右冠状动脉(RCA,左底图)和旋支(右底图)发生。 
    图19显示了来自心脏修复hMSC治疗的心脏的侧枝血管的共聚焦评价,显示了人特异性CD-31(PECAM-1)染色。条棒表示20μm。 
    图20显示了对于用天然hMSC和鸡尾酒式混合物引导(CP)hMSC治疗,在12个 月中,以%表示的相对于假治疗组的射血分数变化的评价。相对于假治疗组,用天然hMSC进行的治疗显示了在6个月和12个月分别为5%和2.5%的射血分数效果。 
    相反,经CP-hMSC治疗的梗塞小鼠于6个月和12个月显示了相对于假治疗组,射血分数有25%的显著改善(图20)。此外,所述梗塞组经分类以评价在干预时患有经证实的明显心力衰竭(射血分数<45%)的小组中的效力。尽管治疗前射血分数均相等为35%,但仅有心脏修复hMSC治疗于6个月和12个月时使绝对射血分数提高10%,相比之下在天然hMSC治疗组中射血分数下降5%(图23)。如图22所示,通过应用带检查的Kaplan-Meier函数确定了相对于天然hMSC治疗组和假治疗组,心脏修复hMSC治疗组具有优异的存活益处。 
    于1年后随访的超声心动图证实了心脏修复(CP)hMSC的效力(图25)。经天然干细胞治疗的心脏的长轴成像揭示了在顶点M-模式评价中最明显的纤维化运动功能减退的前壁(患者11,左图)。相反,CP-hMSC治疗的心脏揭示了整个前壁的强健收缩模式,这反映出引导干细胞疗法的持久益处(患者11,右图)。 
    实施例2 
    用含有以组合方式使用的重组TGFβ-1(2.5ng/ml)、BMP4(5ng/ml)、心营养素(1ng/ml)、Cardiogenol C(100nM)和α-凝血酶(1U/ml)、FGF-2(10ng/ml)、IGF-1(50ng/ml)和活化素-A(5ng/ml)的鸡尾酒式混合物处理干细胞,观察到相似的结果。 
    实施例3 
    用含有以组合方式使用的重组TGF-β1(2.5ng/ml)、BMP-4(5ng/ml)、活化素-A(5ng/ml)、FGF-2(10ng/ml)、IL-6(100ng/ml)、因子IIa(hα-凝血酶,1U/ml)、IGF-1(50ng/ml)和视黄酸(1μM)的鸡尾酒式混合物处理干细胞,观察到相似的结果。 
    其他实施方式 
    应当理解的是,尽管已根据详尽说明对本发明进行了描述,上述说明旨在进行阐述而不是限制本发明的范围,本发明的范围是由所附权利要求所限定的。其他方面、优点和变化均在随附权利要求的范围之内。 

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