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1、(10)申请公布号 CN 104254327 A (43)申请公布日 2014.12.31 CN 104254327 A (21)申请号 201380010765.7 (22)申请日 2013.02.08 12425027.5 2012.02.09 EP 61/644,544 2012.05.09 US A61K 31/196(2006.01) A61K 31/343(2006.01) A61K 31/357(2006.01) A61P 1/04(2006.01) (71)申请人 诺格拉制药有限公司 地址 爱尔兰都柏林 (72)发明人 S巴罗尼 S贝林维亚 F维提 (74)专利代理机构 中国国。
2、际贸易促进委员会专 利商标事务所 11038 代理人 袁泉 (54) 发明名称 治疗纤维化的方法 (57) 摘要 本发明公开部分涉及治疗纤维化的方法, 例 如肝纤维化和 / 或肠纤维化, 该方法包括向有需 要的患者施用有效量的本发明公开的化合物。 (30)优先权数据 (85)PCT国际申请进入国家阶段日 2014.08.25 (86)PCT国际申请的申请数据 PCT/EP2013/052617 2013.02.08 (87)PCT国际申请的公布数据 WO2013/117744 EN 2013.08.15 (51)Int.Cl. 权利要求书 2 页 说明书 27 页 附图 16 页 (19)中华。
3、人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书2页 说明书27页 附图16页 (10)申请公布号 CN 104254327 A CN 104254327 A 1/2 页 2 1. 一种用于预防或治疗纤维化的方法, 该方法包括向有需要的患者施用治疗有效量的 式 A 所示的化合物, 及其药学可接受的盐 : R10选自 H 和 C1-C6烷基 ; R11选自 H、 C1-C6烷基和 -C(O)-C1-C6烷基 ; R5为 H 或 C1-C6烷基。 2. 权利要求 1 所述的方法, 其中所述的化合物由式 A 或 A” 表示 : 3. 权利要求 1 或 2 所述的方法, 其中 R5为甲基、 。
4、乙基、 丙基或异丙基。 4. 权利要求 3 所述的方法, 其中 R5为甲基。 5. 权利要求 4 所述的方法, 其中 R10和 R11均为 H。 6. 权利要求 1 所述的方法, 其中所述的化合物选自下列化合物, 及其药学可接受的盐 : 7. 一种用于预防或治疗纤维化的方法, 该方法包括向有需要的患者施用治疗有效量的 化合物, 其中所述的化合物选自 : 化合物20, 化合物21, 2-甲氧基-3-(4 -氨基苯基)丙酸 ; 2- 乙氧基 -3-(4 - 氨基苯基 ) 丙酸 ( 化合物 39) ; 6- 氨基 -2,2- 二甲基 -4H- 苯并 1,3 二 噁英 -4- 酮 ; 5- 氨基 -N。
5、- 羟基 -2- 甲氧基苯甲酰胺 ; 和 5- 氨基 -2,3- 二氢苯并呋喃 -7- 羧 酸, 及其药学可接受的盐和立体异构体。 8. 权利要求 1-7 的任意一项所述的方法, 其中所述的纤维化为肝纤维化。 9. 权利要求 1-7 的任意一项所述的方法, 其中所述的纤维化为肠纤维化。 10. 权利要求 1-7 的任意一项所述的方法, 其中所述的纤维化选自 : 肾纤维化、 心纤维 化、 心内膜心肌纤维化、 特发性肺纤维化、 髓纤维化、 腹膜后纤维化和 / 或肾源性系统纤维 化。 权 利 要 求 书 CN 104254327 A 2 2/2 页 3 11. 一种用于预防或治疗肝纤维化的方法, 该。
6、方法包括向有需要的患者施用药学有效 量的药学制备物, 该制备物包括 PPAR 试剂, 其中所述的 PPAR 试剂选自 : 化合物 20, 化 合物 21, 2- 甲氧基 -3-(4 - 氨基苯基 ) 丙酸 ; 2- 乙氧基 -3-(4 - 氨基苯基 ) 丙酸 ; 6- 氨 基 -2,2- 二甲基 -4H- 苯并 1,3 二噁英 -4- 酮 ; 5- 氨基 -2,3- 二氢苯并呋喃 -7- 羧酸, 及 其药学可接受的盐和立体异构体。 12. 权利要求 11 所述的方法, 其中所述的药学制备物以口服方式施用。 13. 权利要求 11 或 12 所述的方法, 其中所述的患者为人类。 14. 权利要求。
7、 11-13 的任意一项所述的方法, 其中所述的患者目前正遭受或已经遭受 乙型肝炎或丙型肝炎。 15. 权利要求 11-14 的任意一项所述的方法, 其中所述的患者患有肝硬化。 16. 权利要求 11-13 的任意一项所述的方法, 其中所述的患者还遭受克罗恩病、 炎性肠 病或溃疡性结肠炎。 17. 权利要求 11-17 的任意一项所述的方法, 其中所述的药学制备物包括 2- 甲氧 基 -3-(4 - 氨基苯基 ) 丙酸。 权 利 要 求 书 CN 104254327 A 3 1/27 页 4 治疗纤维化的方法 0001 本申请要求 2012 年 2 月 9 日提交的 EP12425027.5 。
8、和 2012 年 5 月 9 日提交的 U.S.S.N.61/644,544 的优先权, 这些申请均以引用方式全文并入本文。 0002 序列表 0003 本申请包含以文本格式电子提交的序列表, 并在此通过引用将其全部并入本文。 所述文本的拷贝, 产生于 2013 年 5 月 21 日, 名称为 PS966PCT_SL.txt, 大小为 3,284 字节。 背景技术 0004 纤维化通常是由于损伤或长期炎症使得在修复或反应过程中(例如愈合)过多的 纤维结缔组织在器官或组织中形成。纤维化使得受影响的组织硬化和 / 或肿胀, 并减少流 体通过这些组织的流动。结果, 纤维化的组织不能适当地发挥作用。 。
9、0005 例如, 肝纤维化可以描述为对由于例如酒精和 / 或药品滥用、 病毒和寄生虫感染 ( 例如肝炎, 如乙肝或丙肝 )、 非酒精性脂肪性肝炎 (NASH)、 铁和铜过量、 以及自身免疫疾病 所导致的慢性肝损伤而产生的伤口愈合应答。所有的慢性肝病都能导致肝纤维化, 主要导 致慢性病毒性乙型肝炎和酒精性肝病。 肝内源性大麻素系统通过激活不同的信号传递途径 来调节促纤维生成和抗纤维生成作用, 其中所述的信号传递途径不同地影响成纤维发生细 胞的增殖和死亡。经过一段时间, 上述过程可以导致肝硬变, 肝硬变中, 肝脏的功能单位的 结构组织被破坏, 使得血液流过肝脏并使肝脏功能被破坏。 0006 肝脏纤。
10、维化代表了具有世界性重要意义的、 共同的且艰难的挑战。 目前, 对晚期肝 硬化的唯一根治性疗法是移植, 但是即使在发达国家, 可利用的供者器官的数量和潜在接 受者的临床状况限制了该技术的应用。纤维化的发展, 特别是肝硬化 (cirrhosis), 关系到 显著的发病率和死亡率。因此, 非常必要研发可应用于肝脏纤维化的抗纤维化策略。 0007 肾纤维化作为原发性获得性损害而导致显著的发病率和死亡率, 这种损害需要透 析或肾脏移植。纤维化可以在肾单位 ( 肾脏的功能单位 ) 的过滤或重吸收部位发生。纤维 化还可以在心脏中发生, 例如心纤维化可以以心脏瓣膜增厚的形式发生。 0008 肠纤维化为炎性肠。
11、病 (IBD) 的常见的并发症, 炎性肠病可以是有症状的, 并且如 果继发肠狭窄, 则需要手术干预。构成肠纤维化的传统和新的许多机制与慢性炎症有关。 0009 发明概述 0010 例如本发明提供了用于治疗纤维化的方法, 该方法包括向患者给与本文所公开的 化合物。 此外, 本发明还提供了在所述方法中使用的化合物。 例如本发明提供了在有需要或 遭受肝纤维化和 / 或肠纤维化的受试对象或患者中, 预防或治疗肝纤维化和 / 或肠纤维化 的方法, 该方法包括施用治疗和 / 或药学可接受的量的下列化合物、 及其药学可接受的盐 : 0011 说 明 书 CN 104254327 A 4 2/27 页 5 0。
12、012 其中 : 0013 R10选自 H 和 C1-C6烷基 ; 0014 R11选自 H、 C1-C6烷基和 C(O)-C1-C6烷基 ; 0015 R5为 C1-C6烷基。 0016 合适地, 在一些实施方案中, R5可以为 H。 0017 合适地, R10、 R11和 / 或 R5的 C1-C6烷基官能团可以独立地选自 : 甲基、 乙基、 丙基、 戊基和己基。烷基官能团可以是线性的或分支的。甲基和乙基烷基官能团是特别优选的, 并且甲基是最优选的烷基官能团。 0018 合适地, 氮可以在 2 、 3 、 4 或 5 位置与环连接。优选的是, 氮在 3 或 4 的位置 连接。4 位置是最优。
13、选的。 0019 示例性的预期化合物可以包括式 A 和 A” , 其中 R10、 R11和 R5在上文和此处提供 : 0020 0021 合适地, 在一些实施方案中, R5可以为 H。 0022 合适地, R10、 R11和 / 或 R5的 C1-C6烷基官能团可以独立地选自 : 甲基、 乙基、 丙基、 戊基和己基。烷基官能团可以是线性的或分支的。甲基和乙基烷基官能团是特别优选的, 并且甲基是最优选的烷基官能团。在某些实施方案中, R5是甲基、 乙基、 丙基或者为例如甲 基。在某些实施方案中, R5为甲基、 乙基、 丙基或者为例如甲基。 0023 此外, 本发明提供了预防或治疗肝或肠纤维化的方。
14、法, 该方法包括向有需要的受 试对象施用包含PPAR试剂(例如本发明公开的化合物)的药学制备物。 本发明考虑了预 防或治疗肾纤维化、 心纤维化、 心内膜心肌纤维化、 特发性肺纤维化、 髓纤维化、 腹膜后纤维 化和 / 或肾源性系统纤维化的方法, 该方法包括向有需要的患者施用包含 PPAR 试剂 ( 例 如本发明公开的化合物 ) 的药学制备物。例如本发明公开的方法可以包括其中患者为人类 的方法。因此, 本文描述的化合物可以用于治疗和 / 或预防这些疾病 / 状况。 0024 通过考虑以下附图、 发明详述和权利要求, 本公开的这些和其他方面、 以及益处将 变得显而易见。 说 明 书 CN 1042。
15、54327 A 5 3/27 页 6 附图说明 0025 图 1 描绘了在施用 CCl4、 JWH-133 和化合物 34 时, 小鼠的体重演变。 0026 图 2(A) 描绘了 metavir 评分的说明, (B) 描绘了 CCl4、 JWH-133+CCl4和化合物 34+CCl4对肝脏的作用并对各组说明了 metavir 评分。 0027 图 3(A) 描绘了 metavir 评分, (B) 采用了由接受 CCl4、 JWH-133+CCl4和化合物 34+CCl4的小鼠的肝脏的 metavir 评分。 0028 图 4 描绘了 CCl4、 JWH-133+CCl4和化合物 34+CCl。
16、4对 -SMA 和胶原蛋白 -1 的作 用。 0029 图 5 描绘了肠纤维化研究的时间表。 0030 图 6 描绘了化合物 34 对患有肠纤维化的小鼠的结肠的作用。 0031 图 7 描绘了化合物 34 对患有肠纤维化的小鼠的结肠的抗炎作用。 0032 图 8 描绘了化合物 34 对患有肠纤维化的小鼠的结肠的作用。 0033 图 9 描绘了采用对纤维化的主要标志物 ( 胶原蛋白 I-III、 CTGF、 SMAD2/3、 PDGF、 -SMA和TGF-1)的免疫组织化学分析, 化合物34对患有肠纤维化的小鼠的结肠的作用。 0034 图 10 描绘了采用 Western 印迹分析, 化合物 3。
17、4 对患有肠纤维化的小鼠的结肠的 作用。 0035 图 11 示出了在使用 DSS 和 DSS+GED 处理的小鼠中的体重曲线。 0036 图 12 示出了与接受常规水的对照小鼠相比, 在使用 DSS 和 DSS+GED 处理的小鼠的 结肠中, 纤维化的水平。 0037 图 13 描绘了由 DSS 和 DSS+GED 小鼠慢性结肠炎得到的结肠的纤维发现。结肠组 织固定于 4 PFA 中, 并使用 May-Grunwald-Giemsa(H&E) 和马松三色染料对横截面 (4m) 进行染色。 与对照相比, 在粘膜下层和浆膜中, DSS小鼠显示出严重的炎症程度和纤维化, 而 GED处理测定了正常肠。
18、壁结构的恢复。 数据表示为平均值SEM ; *p30 个汇管 (portal tract) 进行定量 (1 切片 ) 评分 (PTF1+PTF2+PTF3+PTF4)。采用该评分证明与未经 治疗的动物的纤维化评分相比, JWH 和 GED 分别降低 14.2和 12.5, 并且 2 种试验分子 的治疗效果似乎相似。 0191 实施例 3 : 肝脏纤维化研究的基因表达分析 0192 通过定量实时 PCR, 根据细胞因子 (IL-1, TNF-) 的基因表达水平以及与纤维 化的机制有关的基因的水平来评价施用化合物 34(GED) 和特异性 CB2 激动剂 (JWH-133) 的 作用。 0193 。
19、使用 Rneasy 试剂盒 (Macherey Nagel,Hoerdt,France), 根据制造商提供的 说明书由肝脏分离总 RNA。使用分光光度法进行 RNA 定量。在使用 20-50 单位的不含 RNase 的 Dnase I(Roche Diagnostics Corporation,Indianapolis,IN,USA) 在 37 下 处 理 30min 之 后, 寡 -dT 引 物 (Roche Diagnostics Corporation,Indianapolis,USA) 用于合成单链 cDNA。使用含有鼠特异性寡核苷酸 ( 参见表 2) 的 SYBR Green Mas。
20、ter Mix(Applera,Courtaboeuf,France)在GeneAmp Abiprism7000(Applera,Courtaboeuf,Fra nce)中定量mRNA。 在各试验中, 包含校准的且无模板的对照。 各样品以3个平行试验运行。 使用 Abiprism7000SDS 软件 (Applera,Courtaboeuf,France) 分析 SYBR 绿染料的强度。所 有结果相对于未受影响的管家基因 - 肌动蛋白归一化。 0194 表 2 0195 0196 在不同组的小鼠中, 细胞因子的基因表达无显著的改变。对于与纤维化的机制有 关的基因而言, 与对照动物 (CG 和 。
21、CIP 组 ) 相比, 在患有纤维化的动物 (CCl4组 ) 中观察到 -SMA 和胶原蛋白 -1 的表达增加。如图 4 和表 3 所示, 与 CCl4组 ( 纤维化对照 ) 相比, 在 GED 和 JWH-133 组小鼠中 -SMA 和胶原蛋白 -1 的水平降低。就胶原蛋白 -1 的水平而言, 与 CCl4小鼠相比, 通过化合物 34 治疗的小鼠组显著降低, 这两组小鼠的胶原蛋白 -1 的值 分别为 42.8114.81,p 0.03 与 75.155.23。这些生物学数据以及在使用化合物 34 治 疗的小鼠中所观察到的组织学改善表明化合物 34 可以具有治疗性的抗纤维化性质。 说 明 书 。
22、CN 104254327 A 21 19/27 页 22 0197 表 3 0198 组胶原蛋白 -1-SMA CCl4138.1234.6865.5122.24 JWH-133+CCl487.5916.9730.074.7 化合物 34+CCl475.155.23,p 0.0342.8114.81 0199 实施例 4 : 肝脏纤维化研究的肝脏血液酶分析 0200 在小鼠的血清中, 根据不同的肝脏生物化学参数 : 肝酶 ( 丙氨酸氨基转移酶 (AST) 和天冬氨酸氨基转移酶 (ALT)、 GT 和碱性磷酸酶, 来评价口服施用化合物 34(GED) 和特 异性 CB2 激动剂 (JWH-133。
23、) 的作用。 0201 如同预期, 在末次施用 CCl4后的 4 天, 在任一组小鼠中未观察到 AST、 ALT 和 Alk P 增多。化合物 34 与任何血液肝脏酶的增多无关, 表明缺乏肝脏毒性。 0202 如同通过组织学和肝脏标示物所评价的那样, 在患有肝脏纤维化 ( 通过重复注射 CCl4所诱导 ) 的小鼠中, JWH-133 和化合物 34 具有相似的抗纤维化的作用。如同预期, JWH 将肝纤维化的损伤降低 14, 并使胶原蛋白 -1mRNA 的肝脏浓度正常。化合物 34 具有相似 的作用, 但不具有肝脏毒性。数据表明化合物 34 可以为具有抗炎和抗纤维化性质的第一化 合物。 0203。
24、 实施例 5 : 肠纤维化的研究 0204 本 实 施 例 描 述 了 用 于 评 价 化 合 物 34 对 肠 纤 维 化 的 作 用 的 实 验。 在 C57bl6 小鼠中诱导慢性结肠炎, 其方法为 5 天内给与溶解于无菌饮用水中的 2.5 DSS(40,000-50,000MW,TdB consultancy AB,Sweden), 其后7天给与常规饮用水, 进行3个 周期。 0205 本研究由 3 个试验组组成 ( 参见表 4) : 对照组、 DSS 对照组、 GED( 化合物 34) 组。 0206 表 4 0207 0208 以最佳剂量(30mM)使用化合物34, 并在第二周期DS。
25、S后每日通过口服填喂法施用 该化合物, 直到实施安乐死为止。通过监测体重, 每周 2 次检查接受 DSS 的小鼠的结肠炎的 发展情况。在第三个周期 DSS 后的一周实施小鼠的安乐死 ( 参加图 5)。死后评价结肠的尺 寸和重量。 0209 实施例 6 : 肠纤维化研究的分析 0210 A. 结肠的重量 / 尺寸比 0211 肠纤维化的特征在于结肠及附属物 (adherence) 的缩短和增厚。结肠的重量 / 尺 说 明 书 CN 104254327 A 22 20/27 页 23 寸比的量度为炎症和纤维化的水平的指示剂。如图 6A 所示, 与仅接受常规水的对照小鼠相 比, 在接受媒介物的 DS。
26、S 小鼠中观察到结肠的重量 / 尺寸比显著增大 124, 它们的比值分 别为 44.986.31(DSS 小鼠 ) 与 20.113.91( 对照小鼠 ), p0.05。这些结果通过 DSS 小 鼠中结肠的显著缩短来显示 ( 图 6B)。化合物 34 使得 DSS 的促纤维化作用降低 34, 从 而导致与接受媒介物的 DSS 小鼠相比, 结肠的重量 / 尺寸比显著降低, 它们的比值分别为 38.137.82( 接受化合物 34 的小鼠 ) 与 44.986.31( 接受媒介物的 DSS 小鼠 )(p0.05) (图6A)。 因此, 所述的化合物减轻了纤维化的形态学迹象(例如结肠的缩短和增厚),。
27、 并降 低了胶原蛋白在结肠中的沉积 ( 图 6B)。 0212 B. 通过组织学评估的炎症水平 0213 取样结肠横向部分的环 ( 死后 ), 并固定于 4福尔马林中, 再包埋于石蜡中用于 组织学分析。使用 May-Grunwald-Giemsa 对切片 (4m) 进行染色并由 2 名研究者盲态进 行多参数组织学评分 (0 至 18)。该染色允许对炎症进行定量。组织学分级 ( 反映了炎症 的水平 ) 是根据粘膜中细胞浸润的强度、 其在粘膜下层的扩张以及上皮损伤的存在情况来 分配的 ( 参见表 5)。 0214 表 5 0215 说 明 书 CN 104254327 A 23 21/27 页 2。
28、4 0216 使用传统的 MGG 染色, 针对各个小鼠结肠在组织性水平下评价炎症的状态。如 同预期, 与接受常规水的对照小鼠相比, 在接受 DSS 的小鼠组中观察到明显的且强烈的 炎症, 它们的值分别为 3.770.80( 接受 DSS 的小鼠 ) 与 0.500.33( 接受常规水的 小鼠 ),p0.05( 参见图 7)。该结果证明 3 个周期的 DSS 诱导了炎症。与仅接受媒介物 的 DSS 小鼠相比, 在接受化合物 34 的 DSS 小鼠中观察到炎症水平显著降低, 它们分别为 2.180.48( 接受化合物的 DSS 小鼠 ) 与 3.770.80( 接受媒介物的 DSS 小鼠 ),p0。
29、.05。 0217 C. 纤维化的水平 0218 C1. 通过天狼猩红染色的评价 0219 将获得的结肠样品迅速在 PBS 中的 10缓冲的福尔马林 (pH7.4) 中固定 3h, 在梯 度乙醇中脱水并包埋在低温融合的石蜡中。对福尔马林固定的结肠组织进行加工, 并使用 天狼猩红染料染色5m厚的石蜡切片以用于组织学分析。 使用x20倍的物镜获得图片。 由 3 名不同的试验者盲态分析各切片, 从而使用 0 至 4 的评分对纤维化的程度进行定量。 0220 与对照小鼠相比, 在 DSS 小鼠的结肠中观察到纤维化的水平显著升高, 它们的值 分别为 2.270.12(DSS 小鼠 ) 与 1.120.0。
30、7( 对照小鼠 )( 参见图 8)。该结果证明通过 3 个周期的DSS诱导的慢性炎症会诱导肠纤维化。 此外, 还证明与仅接受媒介物的DSS小鼠相 比, 对DSS小鼠施用化合物34会降低纤维化的水平(1.6250.15与2.270.12,p0.05)。 0221 C2. 通过马松三色染料进行的评价 0222 马松三色和胶原蛋白染料用于评价结肠纤维化的水平。 将获得的结肠样品迅速在 处于 PBS 中的 10缓冲的福尔马林 (pH7.4) 中固定 3h, 在梯度乙醇中脱水并包埋在低温融 合的石蜡中。将连续的 3m 切片在甲醇和 3过氧化氢溶液中温育 40min, 然后在 PBS 中 漂洗。根据马松三。
31、色阳性的结缔组织染色的强度和程度及组织结构破坏的情况, 将肠纤维 化评分为无、 轻微或严重。 0223 C3. 胶原蛋白水平的评价 0224 就免疫组织化学分析而言, 将由接触得到的组织样本在室温下在新鲜的 4多聚 甲醛 (PFA)/PBS 溶液中固定 3h, 在梯度乙醇系列中脱水并包埋在低温融合的石蜡中。将 3m 厚的切片在甲醇中温育 40min, 然后在 3过氧化氢中温育 5min。将样品与针对如下 的特异性抗体 : I-III 型胶原蛋白 (Abcam)、 结缔组织生长因子 (CTGF)(Abcam)、 血小板衍生 生长因子 (PDGF)、 SMAD2/3( 它们为纤维化的主要标志物 )。
32、 温育过夜。使用 PBS 将样品洗涤 5min, 并与链 霉亲和素 - 生物素 - 过氧化物酶缀合的二抗 (Dako LSAB Corporation,cod K0675,Dako-Cytomation,Milano) 温育。在 PBS 中洗涤 10min 后, 将切片与 3,3- 二氨基联 苯胺 - 四氢氯化物温育 1-3min。 0225 省略一级抗体, 表现免疫反应的特异性。最后使用 Mayer 的苏木精对样品进行染 色并在 Olympus BX51Light Microscope(Olympus,Optical Co.Ltd.,Tokyo,Japan) 下观 察。 0226 在对由 D。
33、SS 和对照小鼠得到的结肠中的胶原蛋白 I-VII 进行免疫组织化学分析 (x20)中, 胶原蛋白I-VII在DSS小鼠的大肠中的染色主要位于粘膜下层和固有肌层的结缔 组织中, 其中观察到胶原蛋白的强染色 ( 参见图 9)。如图 9 所示, 施用化合物 34 与胶原蛋 白染色的降低有关, 表明所述的化合物改善了纤维化并降低了肠纤维化的发展。 0227 除了抗炎作用以外, 施用化合物 34 会快速地减少导致纤维化的分子事件, 并预防 说 明 书 CN 104254327 A 24 22/27 页 25 小鼠中由 DSS 诱导的肠纤维化损伤。 0228 就 Western 印迹分析而言, 将 0.。
34、5cm 冷冻的结肠样品在 RIPA 缓冲剂中匀质化, 其 中所述的RIPA缓冲剂包含50mM Tris HCl pH7.6、 150mM NaCl、 1.5mM MgCl2、 5mM EDTA,1 Triton-X 和 10甘油, 其中补充有 100mM 氟化钠 (NaF)、 2mM 原钒酸钠 (Na3VO4)、 10mM 焦磷 酸钠 (NaPPi)、 1mM 苯基甲基磺酰氟 (PMSF) 和传统的蛋白酶抑制剂混合物 ( 包含 10g/mL 亮肽酶素和抑肽酶 )。 0229 对各样品, 通过 PAGE 分离 30g 蛋白质, 并进行电印迹。将硝酸纤维素膜 (100 纯 ) 与针对 CTGF、 。
35、胶原蛋白 -I 和 GAPDH 的一级抗体 ( 购自 Abcam,Cambridge,UK ; 在 RT 下 以 1:1000 进行 2h) 温育 ( 根据各抗体的特异方案 ), 其中所述的一级抗体稀释于 0.1 TBS-t 中的 5脱脂牛奶中。随后将膜在 TBS-t0.1中洗涤, 并与二级辣根过氧化物酶缀 合的抗体 ( 抗兔和抗小鼠 ; Sigma Aldrich ; 在 RT 下以 1:20000 进行 1h) 温育, 其中所述的 二级抗体稀释于 0.1 TBS-t 中的 5脱脂牛奶中。最后, 使用 SuperSignal West Pico 化 学发光底物 (Thermo Scienti。
36、fi c Pierce,Erembodegem), 根据制造商提供的方案 进行免疫 检测。将膜暴露于放射自显影膜 (Fuji Photo Film Co.,Dusseldorf,Germany)。使用计 算机辅助的密度计和 ImageJ 公共软件 (W.S.,Rasband,ImageJ,U.S.National Institutes of Health,Bethesda,MD ; http:/rsb.info.nih.gov/ij/,19972011)测定目标条带的光 密度。将组织水平表示为光密度 (OD) 单位 / 总蛋白质的数量, 并根据内部对照 GAPDH 进行 归一化, 再将结果表示。
37、为对照组的百分率。 0230 使用 IHC 方法和特异性抗体, 与接受媒介物的结肠炎小鼠相比, 在接受 GED 的 DSS 小鼠的结肠中, 观察到纤维化的主要标志物 ( 胶原蛋白 I-III、 CTGF、 SMAD2/3、 PDGF、 -SMA 和 TGF-1) 减少 ( 参见图 9A-9E)。 0231 使用 Western 印迹方法证明这些结果, 并在整个结肠样品中对不同纤维化的标志 物进行定量 ( 参见图 10)。如表 6 所示, 与仅接受媒介物的结肠炎小鼠相比, 在使用 GED 处理的结肠炎小鼠中, 观察到胶原蛋白 I、 CTGF 和 IL-13 的表达显著减少 ( 胶原蛋白 I : 。
38、90.7519.91 与 284.463.86,p 0.012 ; CTG : 55.7517.53 与 115.116.88,p 0.029 ; IL-13 : 88.8814.01 与 189.528.71,p 0.007)。 0232 表 6 0233 DSSDSS+GEDp -SMA125.419.4597.8815.660.282 胶原蛋白 I 284.463.8690.7519.910.012 CTGF115.116.8855.7517.530.029 IL-13189.528.7188.8814.010.007 TGF-1153.626.25130.528.020.5 0234 。
39、实施例 7 : 肠纤维化的研究 0235 本实施例描述了用于评价化合物 34(GED) 在治疗肠纤维化中的作用的试验。 0236 材料与方法 0237 体外试验 0238 本 研 究 包 括 总 计 60 只 野 生 型 C57BL/6 小 鼠 ( 购 自 Janvier(Le Genest-St-Isle,France)。所有小鼠都饲养在 Lille(France) 的 Pasteur Institute 的 不含特异性病原体的设备中。根据政府指导原则 N 68/609/CEE 实施动物试验。 说 明 书 CN 104254327 A 25 23/27 页 26 0239 慢性结肠炎的诱导 。
40、0240 在 3 个周期 (5 天的 DSS, 7 天的水 ) 中, 通过口服施用处于饮用水中的 2.5 (w/ v)DSS, 在小鼠中诱导慢性结肠炎和纤维化。针对食物和流体的摄取来监测动物, 并在研究 开始时以及此后规律地每 3 天一次对小鼠进行称重。 0241 试验设计 0242 将小鼠随机分为 2 组 : i.DSS 和 ii.DSS+GED。各组由 25 只小鼠组成并与 10 只对 照动物相比, 其中所述的对照动物仅接受水。将 GED(30mg/kg/ 只小鼠 ) 溶解于包含 0.5 羧甲基纤维素钠盐 (CMC ; MW:90,000Da ; Sigma Aldrich) 和 1 Tw。
41、een80 的溶液中, 并通过 口服填喂法每日施用所述的 GED(100l/ 只小鼠 )。在第二个周期开始时施用 GED。 0243 结肠炎过程的评估 0244 每日针对流体的摄取、 体重的变化来观察动物, 并针对结肠炎的迹象 ( 包括体重 的损失、 腹泻、 直肠出血和脱垂 ) 以及系统性炎症的迹象 ( 例如毛发直立、 昏睡和眶周渗出 物 ) 来检查动物。 0245 样品的回收和制备 0246 最后, 在末次DSS周期施用后的7天, 通过在深度CO2麻醉下折颈法处死各组动物, 并实施剖腹手术。观察结肠并快速切除。测量整个结肠 - 直肠的长度, 以及结肠 - 直肠的 末端 8cm 的重量。 02。
42、47 宏观和微观的结肠损伤的评估 0248 由独立的观察者, 在不知道小鼠治疗的情况下, 对宏观的结肠损伤 ( 包括扩张、 厚度和狭窄 ) 进行评分。将由结肠得到的组织样本切开, 并立即冷冻或在室温下在新鲜 的 4福尔马林 (FA)/PBS 溶液中固定 3h, 然后通过标准的程序进行石蜡包埋。将以 3m 横向切片的石蜡包埋组织进行苏木精 / 伊红染色以便评估炎症的程度, 以及马松三色 染色以便更好地评估结缔组织和纤维化。然后, 由 2 名病理学家在 Olympus BX51Light Microscope(Olympus,Optical Co.Ltd.,Tokyo,Japan) 下, 盲态观察。
43、染色的切片, 其中所述 的病理学家进行组织学评分评价 : i. 存在溃疡 (0 无, 1 小溃疡, 2 大溃疡 ) ; ii. 炎症 的程度 (0 无, 1 轻微, 2 中度, 3 重度 ) ; iii. 损伤的深度 (0 无, 1 粘膜下层中 扩张的损伤, 2固有肌层中的损伤, 3浆膜中的损伤) ; iv.纤维化的程度(0无, 1轻 微, 2 中度, 3 重度 )。根据慢性炎症浸润的强度和程度、 杯状细胞的损失及肠壁增厚的 情况来评估肠炎的程度。获得总微观评分作为所有分数的总和 ( 可能的最大评分 10)。 0249 根据三色阳性的结缔组织染色的强度和程度及组织结构的破坏, 将肠纤维化评分 。
44、为无、 轻微或严重。 0250 免疫组织化学 0251 将由结肠得到的组织样本(切开并在室温下在新鲜的4福尔马林(FA)/PBS溶液 中固定 3 小时 ) 在梯度乙醇系列中脱水, 并包埋于低温融合的石蜡中。将 3m 厚的切片在 由甲醇和 3过氧化氢构成的溶液中温育 45min。 0252 将样品与针对以下的特异性抗体 : 平滑肌肌动蛋白 (-SMA,Abcam)、 I-III 型胶原蛋白 (Abcam)、 TGF-1(Abcam)、 结缔组织生长因子 (CTGF)(Abcam)、 pSmad3 和 Smad3(Cell Signaling)、 Smad7(Imgenex) 和 PPAR(Cel。
45、l Signaling) 温育过夜。将样 品用 PBS 洗涤 5min, 并与链霉亲和素 - 生物素 - 过氧化物酶缀合的二级抗体 (Dako LSAB 说 明 书 CN 104254327 A 26 24/27 页 27 Corporation,cod K0675,Dako-Cytomation,Milano) 温育。在 PBS 中进行 10min 洗涤一次 后, 将切片与 3,3- 二氨基联苯胺 - 四氢氯化物温育 1-3min。通过苏木精 - 伊红得到核的对 比染色。省略一级抗体, 表现免疫反应的特异性。最后使用 Mayer 的苏木精染色样品并在 Olympus BX51Light Mi。
46、croscope(Olympus,Optical Co.Ltd.,Tokyo,Japan) 下观察。 0253 Western 印迹分析 0254 切割 0.5cm 冷冻的结肠样品, 并将其在 RIPA 缓冲剂中以机械方式匀质化, 其中 所述的 RIPA 缓冲剂包含 50mM TrisHCl pH7.6、 150 mM NaCl、 1.5mM MgCl2、 5mM EDTA,1 Triton-X 和 10甘油, 其中补充有 100mM 氟化钠 (NaF)、 2mM 原钒酸钠 (Na3VO4)、 10mM 焦磷 酸钠 (NaPPi)、 1mM 苯基甲基磺酰氟 (PMSF) 和传统的蛋白酶抑制剂混。
47、合物 ( 包含 10g/mL 亮肽酶素和抑肽酶 )。 0255 对各样品, 通过 PAGE 分离 30g 蛋白质, 并进行电印迹。将 100纯的硝 酸纤维素膜与针对 TGF-1、 CTGF、 -SMA、 胶原蛋白 -I、 GAPDH 的一级抗体 ( 购自 Abcam,Cambridge,UK ; 在 RT 下 以 1:1000 进 行 2h) 和 针 对 IL-13 的 一 级 抗 体 ( 购 自 Antibodies online ; 在 RT 下以 1:1000 进行 2h) 温育 ( 根据各抗体的特定方案 ), 其 中所述的一级抗体稀释于 0.1 TBS-t 中的 5脱脂牛奶中。随后将膜。
48、在 TBS-t0.1 中洗涤, 并与二级辣根过氧化物酶缀合的抗体 ( 抗兔和抗小鼠 ; Sigma Aldrich ; 在 RT 下以 1:20000 进行 1h) 温育, 其中所述的二级抗体稀释于 0.1 TBS-t 中的 5脱 脂 牛 奶 中。 最 后, 使 用 SuperSignal West Pico 化 学 发 光 底 物 (Thermo Scientifi c Pierce,Erembodegem), 根据制造商提供的方案进行免疫检测。将膜暴露于放射自显影膜 (Fuji Photo Film Co.,Dusseldorf,Germany)。 使用计算机辅助的密度计和ImageJ公共软 件 (W.S.,Rasband,ImageJ,U.S.National Institutes of Health,Bethesda,MD ; http:/ rsb.info.nih.gov/ij/,19972011) 测定目标条带的光密度。将组织水平表示为光密度 (OD)单位/总蛋白质的数量, 并根据内部对照GAPDH进行归一化, 再将结果表示为对照组的 百分率。 0256 体内实验 0257 细胞培养 0258 使 人 类 结 。