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一种治疗II型糖尿病或代谢综合征的复方药物组合物.pdf

  • 上传人:大师****2
  • 文档编号:5396654
  • 上传时间:2019-01-09
  • 格式:PDF
  • 页数:18
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN201410271356.9

    申请日:

    2014.06.17

    公开号:

    CN104001177A

    公开日:

    2014.08.27

    当前法律状态:

    授权

    有效性:

    有权

    法律详情:

    授权|||实质审查的生效IPC(主分类):A61K 45/00申请日:20140617|||公开

    IPC分类号:

    A61K45/00; A61K31/225; A61P3/10; A61P3/00; A61K31/198(2006.01)N; A61K31/165(2006.01)N

    主分类号:

    A61K45/00

    申请人:

    中国药科大学

    发明人:

    傅继华; 李涛; 郭可可; 曲伟; 李鑫; 安闪闪; 马少欣

    地址:

    211198 江苏省南京市龙眠大道639号

    优先权:

    专利代理机构:

    南京苏科专利代理有限责任公司 32102

    代理人:

    孙立冰

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    内容摘要

    本发明涉及医药领域,具体涉及一种治疗II型糖尿病或代谢综合征的复方药物组合物,更具体地,公开了一种5-羟色胺2受体拮抗剂沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂组合的复方药物组合物,本发明的复方药物组合物可用于改善胰岛素抵抗从而治疗II型糖尿病和代谢综合征。

    权利要求书

    权利要求书
    1.  一种复方药物组合物,含有药物活性成分和药学上可接受的载体,其中药物活性成分由沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂组成。

    2.  权利要求1的复方药物组合物,其中5-羟色胺合成抑制剂为对氯苯丙氨酸、卡比多巴或苄丝肼。

    3.  权利要求1的复方药物组合物,其中沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂的重量比为15:1~1:15。

    4.  权利要求2的复方药物组合物,其中沙格雷酯和对氯苯丙氨酸的重量比为12:1~1:2。

    5.  权利要求4的复方药物组合物,其中沙格雷酯和对氯苯丙氨酸的重量比为4:1。

    6.  权利要求2的复方药物组合物,其中沙格雷酯和卡比多巴的重量比为9:1~1:2。

    7.  权利要求6的复方药物组合物,其中沙格雷酯和卡比多巴的重量比为3:1。

    8.  权利要求2的复方药物组合物,其中沙格雷酯和苄丝肼的重量比为8:1~1:3。

    9.  权利要求8的复方药物组合物,其中沙格雷酯和苄丝肼的重量比为2:1。

    10.  权利要求1至9中任一项的复方药物组合物用于制备治疗II型糖尿病或代谢综合征的药物的用途。

    说明书

    说明书一种治疗II型糖尿病或代谢综合征的复方药物组合物
    技术领域
    本发明涉及医药领域,具体涉及5-羟色胺2受体拮抗剂沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂组合的复方药物组合物,本发明的复方药物组合物可用于改善胰岛素抵抗从而治疗II型糖尿病和代谢综合征。
    背景技术
    胰岛素抵抗(Insulin resistance,IR)是指“各种原因使胰岛素促进细胞摄取和利用葡萄糖的效率下降,机体代偿性的分泌过多胰岛素产生高胰岛素血症,以维持血糖的稳定”这种现象。一个具有正常代谢的人,胰岛素是在进食后由胰腺内的胰岛β细胞分泌的,它传递信号给体内的胰岛素感应组织,使细胞膜表面产生葡萄糖转运体(Glucose transporter,GLUT)吸收葡萄糖从而降低血糖浓度。IR的主要发生组织为肝脏、脂肪组织和骨骼肌。细胞发生IR时,正常水平的胰岛素无法诱导这些细胞产生足够的GLUT,从而完成正常的葡萄糖吸收功能。为了对此进行补偿,胰岛需释放更多的胰岛素,以使足够的细胞GLUT被激发来吸收葡萄糖。因此IR的主要原因是“细胞对胰岛素的敏感性降低,胰岛素诱导细胞内GLUT转运到细胞膜上从而增加葡萄糖吸收的能力下降”。其病变的本质是细胞内的,某种原因使细胞GLUT表达能力下降,GLUT基因或蛋白表达下降,从而降低了细胞在胰岛素刺激下吸收利用葡萄糖的能力,从而出现IR。
    多种原因可导致IR,如肥胖、长期高血糖、高游离脂肪酸血症、高糖皮质素血症、妊娠和体内胰岛素拮抗激素增多等。但公认的,肥胖是导致IR最主要的原因,尤其是向中性肥胖;而高糖皮质素血症、高游离脂肪酸血症可能是肥胖导致IR的直接原因。与IR直接相关的疾病主要有两种:2型糖尿病(Diabetes mellitus type2,DM-II)和代谢综合征metabolic syndrome,MS)。DM-II占糖尿病患者90%以上,病人的主要表现就是肥胖和IR,机体胰岛素相对缺乏,只有病情恶化、后期的DM-II病人才因为胰岛被破坏出现胰岛素的绝对缺乏。MS为多种代谢成分异常聚集的病理状态,是一组复杂的代谢紊乱症候群,是导致糖尿病、心脑血管疾病(动脉粥样硬化、中风、冠心病)的危险因素,目前认为其集簇发生的核心是IR。临床上,诊断MS的主要标准有:腹型肥胖(即向中性肥胖)、IR、高脂血症(高甘油三酯血症、高低密度脂蛋白及低高密度脂蛋白血症)。因此,改善机体对胰岛素的敏感性,降低IR成为治疗DM-II、MS的首选。双胍类(如二甲双胍)和噻唑烷二酮类(如罗格列酮和吡格列酮)是临床常用的增 加胰岛素敏感性、改善IR的药物。
    IR检测的最常用方法:
    Ⅰ.HOMA-IR指数 HOMA-IR指数全称为“稳态模型胰岛素抵抗指数”,这是衡量机体IR最常用的方法,方法简单、结论可靠。测量空腹血糖和空腹胰岛素浓度,计算HOMA-IR指数(HOMA-IR=空腹血糖×空腹胰岛素÷22.5),实验时通过与正常对照组比较来确定IR;
    Ⅱ.尿糖量测定 如果血糖浓度足够高(超过肾糖阈),可在尿液中检测到葡萄糖(这是糖尿病名称的来由)。单位时间内人或动物排出的尿液中葡萄糖含量的多少,可反映IR及糖尿病的严重程度,尿糖量越高表明IR及糖尿病越严重。
    IR实际上是细胞代谢紊乱的一种表现。IR时,机体细胞的糖代谢、脂代谢都出现紊乱,尤其在脂肪细胞、肝细胞和骨骼肌细胞,这种能量代谢的紊乱特别明显,导致脂肪细胞分泌一些激素样因子紊乱(如瘦素、抵抗素分泌增加,脂联素分泌减少),肝细胞脂质沉积、炎症因子产生增加等,骨骼肌细胞对葡萄糖的利用效率降低等。但导致IR的本质原因目前是不清楚的,虽然发现糖皮质素、游离脂肪酸、一些炎症因子(如肿瘤坏死因子α)可直接导致细胞产生IR、抑制GLUT的细胞内表达,但它们是通过什么途径、怎样改变细胞内的代谢通路及信号通路从而导致IR的?是否存在一种共同的作用特点?目前并未弄清。我们的研究发现,糖皮质素、游离脂肪酸导致IR时存在共同的作用特点:引起肝细胞、脂肪细胞及骨骼肌细胞5-羟色胺合成或受体表达发生改变;通过逆转细胞的5-HT系统改变能够阻断这些因素导致的IR。
    5-羟色胺(5-hydroxy tryptamine,5-HT)也叫血清素,是一种存在于外周和中枢的小分子物质,5-HT的生理功能复杂,至今未完全弄清。
    Ⅰ.5-HT的合成 分两步,第一步:色氨酸在色氨酸羟化酶(tryptophan hydroxylase,TPH)的催化下转变为5-羟色氨酸(TPH可分为两个亚型:TPH1和TPH2,TPH1存在于外周,TPH2存在于中枢);第二步:5-羟色氨酸在芳香族氨基酸脱羧酶(aromatic aminoacid decarboxylase,AADC)的催化下转变为5-HT。因此,可分别通过抑制TPH或AADC实现对5-HT合成的抑制。
    对氯苯丙氨酸(parachlorophenylalanine或p-chlorophenylalanine,pCPA),别名:DL-4-氯苯丙氨酸、DL-对氯苯丙氨酸等,分子式:C9H10ClNO2,是TPH抑制剂,无临床应用报导。
    卡比多巴(Cabidoba,CDP),分子式:C10H14N2O4。
    苄丝肼(Benserazide,BSA),别名:三羟基丝氨酰肼、色拉肼、丝氯酰肼、羟苄丝肼,分子式:C10H15N3O5。
    CDP和BSA都是AADC抑制剂,临床用于帕金森氏病的辅助治疗,它们的共同作用特点是外周脱羧酶抑制剂,不易进入中枢,仅抑制外周左旋多巴转化为多巴胺,使循环中左旋多巴含量增加,也可抑制5-羟色氨酸转化为5-HT,使合成5-HT的细胞产生5-HT减少。CDP和BSA也没有用于改善IR,从而治疗DM-II或MS的研究报导。
    Ⅱ.5-HT受体 5-HT受体(5-HT receptor,5-HTR)存在于细胞膜上,属于膜受体,5-HT受体亚型复杂,现已发现有7大类受体存在,即5-HT1-7R,5-HT1,4,5R主要分布在中枢,5-HT2,3,6,7R主要分布在外周。这7类受体又被进一步分为若干个亚型。5-HT2R可被分为5-HT2AR、5-HT2BR和5-HT2CR。外周和中枢均有分布的是5-HT2A,2BR,5-HT2CR主要存在于中枢神经系统,肝脏、骨骼肌、内脏脂肪组织分布有5-HT2A,2BR。具有选择性阻断5-HT2R的药物不多,已知沙格雷酯属于选择性5-HT2R拮抗剂。
    沙格雷酯(Sarpogrelate,SAR)是一种专一性5-HT2R阻断剂,分子:C24H31NO6。临床应用中,SAR可抑制由5-HT增强的血小板凝集及抑制血管收缩作用等,临床用于改善慢性动脉闭塞症所引起的溃疡、疼痛以及冷感等缺血性诸症状。虽然临床有SAR治疗糖尿病性并发症下肢动脉硬化闭塞症的报导,但没有可以改善IR的研究报导。
    发明内容
    本发明公开了一种5-羟色胺2受体拮抗剂沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂组合的复方药物组合物,该组合物具有协同改善胰岛素抵抗从而可用于治疗II型糖尿病和代谢综合征。
    所述的5-羟色胺合成抑制剂优选对氯苯丙氨酸、卡比多巴或苄丝肼。
    沙格雷酯和5-羟色胺合成抑制剂的重量比优选15:1~1:15。
    沙格雷酯和对氯苯丙氨酸的重量比更优选为12:1~1:2。
    沙格雷酯和卡比多巴的重量比更优选为9:1~1:2。
    沙格雷酯和苄丝肼的重量比更优选为8:1~1:3。
    我们在研究中发现:
    Ⅰ.肝细胞及脂肪细胞均存在5-HT合成系统(TPH1,AADC)。糖皮质激素类药物--地塞米松(dexamethasone,DEX)或脂肪酸(油酸,oleic acid,OA)刺激在导致肝细胞产生IR时(GLUT受体表达被下调),同时也存在5-HT合成系统被上调、细胞内5-HT含量增加;在DEX导致大鼠发生IR的实验中,同时观察到肝脏及内脏脂肪TPH1、AADC表达被上调、5-HT含量升高,即两种组织中5-HT合成增加;
    Ⅱ.肝细胞、脂肪细胞及骨骼肌细胞均存在5-HT2A,2BR表达,体外培养肝细胞用DEX或 OA刺激,或动物实验用DEX刺激建立IR动物模型时,三种组织5-HT2A,2B受体表达均被明显上调,并同步地出现IR症状。
    Ⅲ.体外细胞培养实验时,用DEX或OA刺激建立肝细胞IR模型,5-HT合成抑制剂—pCPA、CDP、BSA,5-HT2R阻断剂--SAR均可明显抑制DEX或OA导致的GLUT基因表达被下调,而SAR与pCPA或CDP或BSA联用,则使GLUT被进一步上调,显示出协同效应。
    Ⅳ.动物实验研究时,用DEX刺激建立IR动物模型,用SAR+pCPA、SAR+CDP、SAR+BSA按两种药物不同的重量配比组成不同的复方对模型进行治疗。结果表明,DEX导致的IR(高血糖、高血胰岛素浓度,HOMA-IR指数升高,明显的尿糖含量)被明显逆转,表现为:血糖、血胰岛素浓度降低,HOMA-IR指数减小,尿液中葡萄糖含量减少。并且,SAR+pCPA、SAR+CDP、SAR+BSA三种复方按药物一定的重量配比,对治疗IR显示出明显的协同作用,联合用药能明显提高药物疗效。其中,SAR+pCPA复方产生协同作用疗效的药物重量比为:12:1~1:2时效果更佳;SAR+CDP复方产生协同作用疗效的药物重量比为:9:1~1:2时效果更佳;SAR+BSA复方产生协同作用疗效的药物重量比为:8:1~1:3时效果更佳。并且,所选SAR+pCPA复方,以重量配比为4:1的复方疗效最好;所选SAR+CDP复方,以重量配比为3:1的复方疗效最好;所选SAR+BSA复方,以重量配比为2:1的复方疗效最好。
    综上所述,用沙格雷酯与5-羟色胺合成抑制剂如对氯苯丙氨酸或卡比多巴或苄丝肼在一定的重量比范围内组成复方,对改善胰岛素抵抗有明显的协同作用,可用于因胰岛素抵抗引起的2型糖尿病或代谢综合征的治疗。
    本发明的复方药物组合物通过添加药学上可接受的载体制备成适合临床使用的剂型,如片剂、胶囊、液体制剂等。所述药学上可接受的载体如崩解剂、稀释剂、粘合剂、润滑剂等。
    下面通过实施例对本发明的复方药物组合物做进一步的药效学实验结果的阐述。
    附图说明
    图1是DEX或OA对体外培养肝细胞TPH1、AADC、5-HT2AR、5-HT2BR基因表达的影响(A)及DEX或OA刺激对体外培养肝细胞5-HT含量的影响(B)(N=3)
    图2是在DEX导致的体外培养肝细胞GLUT2基因表达下调模型,SAR、pCPA、CDP、BSA治疗可逆转这种下调,而SAR与pCPA、CDP、BSA联合用药则进一步加大这种逆转效应(A),在OA导致的肝细胞GLUT2基因表达下调模型,这种效应也存在(B)(N=3)
    图3是在DEX导致肝细胞5-HT含量升高时,用pCPA、CDP、BSA治疗可明显抑制这种效应,而SAR没有抑制作用,且SAR与pCPA、CDP、BSA联合给药也没有协同作用(A), 在OA导致肝细胞5-HT含量升高时,也存在这种效应(B)(N=3)
    图4是大鼠连续给DEX15天后肝脏、脂肪组织TPH1、AADC蛋白表达明显上调(骨骼肌未见TPH1、AADC表达)(A)及大鼠连续给DEX15天后肝脏、脂肪组织5-HT含量明显升高,而用pCPA、CDP、BSA治疗时则5-HT含量明显降低(B)(N=6)
    图5是大鼠连续给DEX15天后肝脏、脂肪组织、骨骼肌5-HT2AR、5-HT2BR基因表达明显上调
    图6是大鼠连续给DEX15天后肝脏GLUT2、脂肪组织及骨骼肌GLUT4基因表达明显下调,用SAR、pCPA、CDP、BSA治疗明显上调GLUT2、GLUT4基因表达
    具体实施方式
    实施例1
    肝细胞体外细胞培养研究
    “肝细胞5-HT合成系统、5-HT2A,2B受体基因表达、GLUT基因表达,在DEX或OA刺激时的改变;及抑制5-HT合成或阻断5-HT2A,2B受体(5-HT2A,2BR)时对DEX或OA导致的IR的改善作用”研究结果。
    1.1实验方法
    (1)细胞培养
    大鼠BRL-3A肝细胞株体外培养,实验在细胞传代之10-20代时完成。细胞培养在37℃、含5%CO2的培养箱中,用含10%胎牛血清的PRMI-1640培养基培养,并用青霉素/莲霉素联合抗菌。细胞接种浓度5×105个/瓶,培养24小时后待细胞增殖达到70-80%瓶底面积时可进行给药。分别用地塞米松(DEX)或油酸(OA)刺激建立IR细胞模型。DEX刺激IR模型给药分组:对照组—正常培养基培养,DEX刺激模型组—培养基中加入30μM/L DEX,pCPA组--培养基中加入30μM/L DEX及25μM/L pCPA,CDP组-培养基中加入30μM/L DEX及25μM/LCDP,BSA组-培养基中加入30μM/L DEX及25μM/L BSA,SAR治疗组--培养基中加入30μM/LDEX及25μM/L SAR,SAR与pCPA联合给药组--培养基中加入30μM/L DEX及25μM/LSAR+25μM/L pCPA,SAR与CDP联合给药组--培养基中加入30μM/L DEX及25μM/LSAR+25μM/L CDP,SAR与BSA联合给药组--培养基中加入30μM/L DEX及25μM/LSAR+25μM/L BSA;OA刺激IR模型给药分组:对照组—正常培养基培养,OA刺激模型组—培养基中加入200μM/L OA,pCPA组--培养基中加入200μM/L OA及25μM/L pCPA,CDP组-培养基中加入200μM/L OA及25μM/L CDP,BSA组-培养基中加入200μM/L OA及25μM/L BSA,SAR治疗组--培养基中加入200μM/L OA及25μM/L SAR,SAR与pCPA联合给药组--培养基中加入200μM/L OA及25μM/L SAR+25μM/L pCPA,SAR与CDP联合给药组--培养基中加入200μM/L OA及25μM/L SAR+25μM/L CDP,SAR与BSA联合给药组--培养基中加入200μM/L OA及25μM/L SAR+25μM/L BSA。所有实验组培养48小时后用裂解液裂解细胞,所得溶液可进行进一步实验,用于细胞内物质含量检测及PCR试验。
    (2)给药剂量
    地塞米松(DEX)--30μM/L
    对氯苯丙氨酸(pCPA)--25μM/L
    卡比多巴(CDP)--25μM/L
    苄丝肼(BSA)--25μM/L
    沙格雷酯(SAR)--25μM/L
    油酸(OA)--200μM/L
    1.2实验指标检测方法
    (1)细胞5-HT含量检测
    酶联免疫法(ELISA)检测5-HT含量。
    (2)TPH1、AADC、5-HT2A,2B受体、GLUT2基因表达检测
    肝细胞相关因子基因表达:逆转录PCR技术检测TPH1、AADC、5-HT2A,2B受体(5-HT2AR,5-HT2BR)、GLUT2基因(mRNA)表达。其中,肝细胞GLUT为GLUT2。引物:
    THP1 上游引物5'ACTGCGACATCAACCGAGAA3'
    下游引物5'GGCTAACCCTGACAGGAAAT3'
    AADC 上游引物5’AGAACTGACCTAACCGAAGC3’
    下游引物5’CAGACCAACCCGAGGATGAC3’
    5-HT2AR 上游引物5'GGATTTACCTGGATGTGC3'
    下游引物5'TGGATGGACCGTTGGAAG3'
    5-HT2BR 上游引物5'CAGCAGCAGAGGAAATGA3'
    下游引物5'ATCCAGGGAAATGGCACA3'
    GLUT2 上游引物5'GGTGTTGCTGGATAAGTTCA3'
    下游引物5'AGGATTCGAGTTAAGAGGGA3'
    内参GAPDH 上游引物5'TATCGGACGCCTGGTTAC3'
    下游引物5'TGCTGACAATCTTGAGGGA3';
    1.3实验结果
    所有数据统计学检测用组间Student-t检测,p<0.05表示有明显统计学差异,p<0.01表示有非常明显统计学差异。下列所有图中数据用均值±标准差表示,N=3;*p<0.05,**p<0.01与对照组比较;$p<0.05,$$p<0.01与DEX或OA刺激模型组比较;#p<0.05,##p<0.01联合用药与SAR单用药比较;&p<0.05,&&p<0.01联合用药与pCPC或CDP或BSA单用药比较。
    (1)DEX刺激或OA刺激导致肝细胞IR时存在明显的5-HT合成增加及5-HT2A,2BR表达上调
    结果见图1。可见,正常肝细胞存在5-HT合成酶TPH1、AADC基因表达,并且检测到5-HT含量,还检测到5-HT2A,2BR基因表达;DEX刺激或OA刺激后,肝细胞5-HT合成增加—5-HT含量增加、TPH1、AADC、5-HT2A,2BR基因表达被上调。提示肝细胞在DEX或OA刺激时,5-HT合成系统被激活、5-HT2A,2BR被上调。
    (2)SAR与pCPA、CDP、BSA联用对改善DEX或OA导致的肝细胞IR具有协同作用
    SAR、pCPA、CDP、BSA单独给药均可明显逆转DEX或OA刺激导致的肝细胞GLUT2基因表达下调;SAR与pCPA、CDP、BSA联合用药的疗效更加明显,显示出明显的协同增效作用,GLUT2的基因表达相对量已接近对照组。结果见图2。
    对DEX或OA导致的肝细胞5-HT含量升高,pCPA、CDP、BSA均有抑制作用,使肝细胞内5-HT含量下降。SAR没有这种作用,且SAR与pCPA、CDP、BSA联合给药也没有协同作用。结果见图3。
    结果表明,肝细胞5-HT合成增加及5-HT2A,2BR表达上调是DEX或OA导致肝细胞IR时的共同特点,可能是导致IR的共同原因;通过抑制细胞的5-HT合成,或通过阻断5-HT2A,2B受体,可独立地改善DEX或OA导致的肝细胞IR;当同时抑制5-HT合成及阻断-HT2A,2B受体时,则对DEX或OA导致的肝细胞IR的改善效应有协同作用。
    实施例2
    动物实验研究—DEX导致的大鼠IR及糖尿病模型
    比较SAR与pCPA、CDP、BSA联合给药,及各自单独给药对DEX致大鼠IR及糖尿病模型的治疗作用,从而验证SAR与pCPA、CDP、BSA联合给药对IR及糖尿病治疗的协同效应。
    2.1实验方法
    (1)动物处理
    108只雄性Wistar大鼠随机分为18组(每组6只):对照组,IR模型组,IR模型SAR治疗组,IR模型SAR+pCPA复方治疗组(SAR:pCPA按不同重量配比的4种复方),IR模型pCPA治疗组,IR模型SAR+CDP复方治疗组(SAR:CDP按不同重量配比的4种复方),IR模型CDP治疗组,IR模型SAR+BSA复方治疗组(SAR:BSA按不同重量配比的4种复方),IR模型BSA治疗组。动物笼养于普通鼠笼,保持室温24±2℃、光照控制保证12h明、暗条件,普通水喂养,连续给药15天。
    实验中,SAR+pCPA复方按不同重量配比的四种复方为:
    SAR+pCPA-1—SAR:pCPA=12:1; SAR+pCPA-2—SAR:pCPA=4:1;
    SAR+pCPA-3—SAR:pCPA=1:1; SAR+pCPA-4—SAR:pCPA=1:2。
    实验中,SAR+CDP复方按不同重量配比的四种复方为:
    SAR+CDP-1—SAR:CDP=9:1; SAR+CDP-2—SAR:CDP=3:1;
    SAR+CDP-3—SAR:CDP=1:1; SAR+CDP-4—SAR:CDP=1:2。
    实验中,SAR+BSA复方按不同重量配比的四种复方为:
    SAR+BSA-1—SAR:BSA=8:1; SAR+BSA-2—SAR:BSA=2:1;
    SAR+BSA-3—SAR:BSA=1:1; SAR+BSA-4—SAR:BSA=1:3。
    (2)给药剂量
    对照组—皮下注射(s.c.)生理盐水0.50ml/kg/次,并经口给药(p.o.)0.5%羧甲基纤维素钠(CMC-Na)溶液5.0ml/kg/次;
    IR模型组—s.c.DEX0.75mg/kg/次,并同时p.o.CMC-Na5.0ml/kg/次;
    IR模型药物治疗组—s.c.DEX0.75mg/kg/次,并同时p.o.各组药物,所有给药组给药剂量均相同为:20.0mg/kg/次。
    各药物用0.5%CMC-Na混悬,浓度相同均为:4.0mg/ml;DEX s.c.给药容积为0.50ml/kg/次,各组药物p.o.给药容积为5.0ml/kg/次;每天给药两次,上下午各给药一次。
    (3)HOMA-IR指数计算
    连续给药第15天,各组动物首先禁食(不禁水)12小时,然后取血,测空腹血糖、空腹胰岛素浓度,计算HOMA-IR指数(HOMA-IR=空腹血糖×空腹胰岛素÷22.5)。
    (4)尿糖含量检测
    连续给药第15天,最后一次给药前禁食约7小时,然后各组按要求分别给以DEX及相应药物,给药后迅速将动物放入代谢笼中,自由饮水,收集给药后5小时内尿量,测量尿液中葡萄糖浓度,计算5小时内尿液中葡萄糖含量。
    连续给药15天后动物禁食12小时,麻醉,取血、取肝脏、取内脏脂肪组织及取大腿部 骨骼肌,以检测血清及组织相关生化指标。
    2.2实验指标检测方法
    (1)血清及组织生化指标检测
    ELISA法检测血清、肝脏、脂肪组织5-HT水平,ELISA法检测血清胰岛素浓度,分光光度法检测血糖浓度、尿糖含量。
    (2)GLUT2、GLUT4、5-HT2A,2B受体基因表达检测
    肝脏、脂肪组织及骨骼肌相关因子基因表达:逆转录PCR技术检测GLUT2、GLUT4基因(mRNA)表达。其中,GLUT2存在于肝细胞,GLUT4存在于脂肪细胞及骨骼肌。5-HT2AR、5-HT2BR、GLUT2、内参GAPDH引物物同细胞实验,GLUT4引物如下:
    GLUT4上游引物5'TCCAGGATGAAGGAAACAGC3'
    下游引物5'GCGAGGCAAGGCTAGATTTT3'。
    (3)TPH1、AADC蛋白表达检测
    肝脏、脂肪组织及骨骼肌TPH1、AADC蛋白表达检测:Western blot法。采用细胞膜蛋白抽提试剂盒提取细胞膜蛋白,通过SDS-PAGE凝胶电泳对不同分子量大小的蛋白进行分离后,电转将所需分子量的蛋白转移到PVDF膜上,转膜结束后对膜进行封闭2小时。取出PVDF膜,分别用TPH1、AADC、ATP1A1蛋白抗体(一抗)孵育PVDF膜,于4℃过夜;再用对应的辣根酶标记二抗对PVDF膜进行孵育2小时。加入化学发光液反应后,将PVDF膜放入Tanon5200成像系统进行曝光显影检测。
    2.3实验结果
    所有数据统计学检测用组间Student-t检测,p<0.05表示有明显统计学差异,p<0.01表示有非常明显统计学差异。下列所有图中数据用均值±标准差表示,N=6;*p<0.05,**p<0.01与对照组比较;$p<0.05,$$p<0.01与DEX模型组比较;#p<0.05,##p<0.01联合用药与SAR单用药比较;&p<0.05,&&p<0.01联合用药与pCPC或CDP或BSA单用药比较。
    (1)DEX致大鼠IR模型中,肝脏、内脏脂肪及骨骼肌5-HT合成系统—TPH1、AADC蛋白表达的改变
    结果见图4。可见,正常大鼠肝脏、内脏脂肪存在TPH1、AADC蛋白表达,但骨骼肌未见表达;在DEX导致大鼠IR及糖尿病时,肝脏及脂肪组织两种酶的蛋白表达明显上调。相应地检测到两种组织中5-HT含量明显升高,用pCPA或CDP或BSA抑制5-HT合成后5-HT含量明显降低。
    (2)DEX致大鼠IR模型中,肝脏、内脏脂肪及骨骼肌5-HT2A,2BR基因表达的改变
    结果见图5。正常大鼠肝脏、内脏脂肪及骨骼肌存在5-HT2A,2BR基因表达;在DEX导致大鼠IR时,三种组织5-HT2A,2BR基因表达明显上调。
    (3)抑制5-HT合成或阻断5-HT2A,2BR,对DEX致大鼠IR模型肝脏、内脏脂肪及骨骼肌GLUT基因表达的影响
    结果见图6。在DEX致大鼠IR模型中,肝脏GLUT2,内脏脂肪及骨骼肌GLUT4基因表达明显下调;用SAR、pCPA、CDP、BSA治疗明显上调GLUT2、GLUT4。
    (4)SAR+pCPA复方对DEX导致的IR的治疗作用研究结果
    结果见表1。DEX致IR模型中,动物空腹血糖浓度、空腹血胰岛素浓度均明显升高,HOMA-IR指数明显升高,且收集5小时内排出的尿液可检测到大量葡萄糖含量,提示出现严重的IR及糖尿病症状。用相同给药剂量的SAR,pCPA,SAR+pCPA四种复方:SAR+pCPA-1、SAR+pCPA-2、SAR+pCPA-3、SAR+pCPA-4对DEX导致的IR进行治疗,均能明显降低血糖浓度、血胰岛素浓度及HOMA-IR指数,并且明显减少5小时内排出的尿糖量;复方SAR+pCPA-2、SAR+pCPA-3治疗均显示其降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数及减少尿糖量作用明显好于SAR或pCPA单独治疗,提示产生明显的协同效应;复方SAR+pCPA-1治疗的降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数及减少尿糖量作用明显好于pCPA治疗,与SAR治疗比较虽然没有差异但也有更好的疗效趋势;复方SAR+pCPA-4治疗的降血胰岛素及减少尿糖量作用明显好于pCPA治疗,降血糖、减小HOMA-IR指数作用也显示出比pCPA治疗有更好的疗效趋势,且其疗效与SAR治疗相当。结果提示,SAR与pCPA组成一定比例的复方,对治疗IR有明显的协同作用,按重量配比,SAR:pCPA的比例范围为:12:1~1:2,本实验中以4:1复方(SAR+pCPA-2)疗效最好。
    表1大鼠连续给DEX15天后,以及用SAR、SAR+pCPA四种复方、pCPA治疗后,空腹血糖浓度、空腹胰岛素浓度、HOMA-IR指数及5小时内尿糖量检测结果


    注:各给药组给药剂量相同,均为20.0mg/kg.次,一天两次,上下午各一次
    $$:P<0.01,与对照组比较;         *:P<0.05,**:P<0.01,与模型组比较;
    #:P<0.05,##:P<0.01,与SAR组比较; &:P<0.05,&&:P<0.01,与pCPA组比较
    (5)SAR+CDP复方对DEX导致的IR的治疗作用研究结果
    结果见表2。用相同给药剂量的SAR,CDP,SAR+CDP四种复方:SAR+CDP-1、SAR+CDP-2、SAR+CDP-3、SAR+CDP-4对DEX导致的IR进行治疗,均能明显降低血糖浓度、血胰岛素浓度及HOMA-IR指数,并且明显减少5小时内排出的尿糖量;复方SAR+CDP-2、SAR+CDP-3治疗均显示其降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数及减少尿糖量作用明显好于SAR或pCPA单独治疗,提示产生明显的协同效应;复方SAR+CDP-1治疗的降血胰岛素及减少尿糖量作用明显好于CDP治疗,减少尿糖量作用也明显好于SAR治疗,降血糖、减小HOMA-IR指数作用与SAR、CDP单独治疗比较虽然没有差异但也有更好的疗效趋势;复方SAR+CDP-4治疗的减少尿糖量作用明显好于CDP治疗,降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数作用与SAR、CDP单独治疗相当或有更好的疗效趋势。结果提示,SAR与CDP组成一定比例的复方,对治疗IR有明显的协同作用,按重量配比,SAR:CDP的比例范围为:9:1~1:2,本实验中以3:1复方(SAR+CDP-2)疗效最好。
    表2大鼠连续给DEX15天后,以及用SAR、SAR+CDP四种复方、CDP治疗后,空腹血糖浓度、空腹胰岛素浓度、HOMA-IR指数及5小时内尿糖量检测结果


    注:各给药组给药剂量相同,均为20.0mg/kg.次,一天两次,上下午各一次
    $$:P<0.01,与对照组比较;         *:P<0.05,**:P<0.01,与模型组比较;
    #:P<0.05,##:P<0.01,与SAR组比较; &:P<0.05,&&:P<0.01,与CDP组比较
    (6)SAR+BSA复方对DEX导致的IR的治疗作用研究结果
    结果见表3。用相同给药剂量的SAR,BSA,SAR+BSA四种复方:SAR+BSA-1、SAR+BSA-2、SAR+BSA-3、SAR+BSA-4对DEX导致的IR进行治疗,均能明显降低血糖浓度、血胰岛素浓度及HOMA-IR指数,并且明显减少5小时内排出的尿糖量;复方SAR+BSA-2、SAR+BSA-3治疗均显示其降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数及减少尿糖量作用明显好于SAR或BSA单独治疗,提示产生明显的协同效应;复方SAR+BSA-1治疗的减少尿糖量作用明显好于CDP或SAR单独治疗,降血糖、降血胰岛素浓度、减小HOMA-IR指数作用与SAR治疗比较疗效相当或有更好的疗效趋势,降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数作用与BSA治疗比较有更好的疗效趋势;复方SAR+BSA-4治疗的减少尿糖量作用明显好于BSA治疗且与SAR治疗比较有更好的疗效趋势,降血糖、降血胰岛素、减小HOMA-IR指数作用与SAR治疗相当且比BSA治疗有更好的疗效趋势。结果提示,SAR与BSA组成一定比例的复方,对治疗IR有明显的协同作用,按重量配比,SAR:BSA的比例范围为:8:1~1:3,本实验中以2:1复方(SAR+CDP-2)疗效最好。
    表3大鼠连续给DEX15天后,以及用SAR、SAR+BSA四种复方、BSA治疗后,空腹血糖浓度、空腹胰岛素浓度、HOMA-IR指数及5小时内尿糖量检测结果

    注:各给药组给药剂量相同,均为20.0mg/kg.次,一天两次,上下午各一次
    $$:P<0.01,与对照组比较;         *:P<0.05,**:P<0.01,与模型组比较;
    #:P<0.05,##:P<0.01,与SAR组比较; &:P<0.05,&&:P<0.01,与BSA组比较。

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