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1、(10)申请公布号 CN 103146833 A (43)申请公布日 2013.06.12 CN 103146833 A *CN103146833A* (21)申请号 201310093594.0 (22)申请日 2013.03.22 C12Q 1/68(2006.01) C12N 15/11(2006.01) (71)申请人 何蕾 地址 100853 北京市复兴路 28 号解放军总 医院 (72)发明人 何蕾 贾宁 (54) 发明名称 一种检测小鼠 SEPS1 基因的荧光定量 PCR 试 剂盒 (57) 摘要 本发明公开了一种检测小鼠 SEPS1 基因的荧 光定量PCR的试剂盒。 该试剂盒包。
2、括以下成分 : 特 异性引物、 特异性探针、 标准 DNA 模板、 荧光定量 PCR 反应液、 阴性质控标准品。本发明还公开了一 种检测小鼠 SEPS1 基因表达水平的荧光定量 PCR 试剂盒的使用方法。利用该试剂盒可以快速定量 检测 SEPS1 基因的表达量, 从而检测脓毒症的发 生情况。 (51)Int.Cl. 权利要求书 1 页 说明书 8 页 序列表 1 页 附图 2 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书1页 说明书8页 序列表1页 附图2页 (10)申请公布号 CN 103146833 A CN 103146833 A *CN103146833A。
3、* 1/1 页 2 1. 一种 SEPS1 基因的特异性引物对及特异性探针, 其特征在于, 所述的特异性引物对 其核苷酸序列为SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2, 特异性探针的核苷酸序列为SEQ ID NO.3。 2. 一种检测小鼠 SEPS1 基因的荧光定量 PCR 试剂盒, 其特征在于, 所述试剂盒含有权 利要求 1 所述的特异性引物对和特异性探针, 还包括标准 DNA 模板以及其他常规荧光定量 PCR 试剂。 3.根据权利要求1所述的一种检测小鼠SEPS1基因的荧光定量PCR试剂盒, 还包括 : 标 准 DNA 模板、 阴性质控标准品、 Hot-start Taq DNA 聚。
4、合酶, 其浓度为 2.5U/l, Hot-start Taq DNA 聚合酶的 10buffer, dNTP 混合物, 每种 NTP 浓度为 10mmol/L。 4. 一种小鼠 SEPS1 基因的检测方法, 包括样品 RNA 的提取、 样品 cDNA 的制备、 SEPS1 基 因的扩增。 5. 根据权利要求 4 中所述的检测方法, 其中样品 RNA 的提取、 样品 cDNA 的制备、 SEPS1 基因的扩增的具体步骤包括 : 1) 样品 RNA 的提取 : 按 Trizol 试剂盒说明书提取小鼠肝脏和肺脏的 RNA, 通过凝胶电 泳证明 RNA 的完整性, 用核酸蛋白仪测定 RNA 的浓度和纯。
5、度。 2) 样品 cDNA 的制备 : a) 利用 PCR 管在冰上配制如下体系 : 模板 RNA 1-5g Oligo(dT)18primer1l(0.5g/l) 加 DEPC 水至 12l 轻轻混合, 并短离心 5s ; b)70温育 5min, 冰上冷却 30s, 之后短离心 ; c)PCR 管置于冰上, 再向其中加入 : 5reaction buffer4l RNase inhibitor1l(20U/l) dNTPMix2l(10mmol/l) M-MuLV Reverse Transcriptase1l(20U/l) 加 DEPC 水至 20l, 轻轻混合, 之后短离心 ; d)3。
6、7温育 60min ; e)70温育 10min, 4以结束反应。反转录得到的 cDNA 置于 -20保存。 。 3)SEPS1 基因的扩增 : 以反转录的cDNA为模板进行荧光定量PCR扩增SEPS1基因。 其中模板2l, Hot-start Taq DNA 聚合酶 (2.5U/l)1l, Hot-start Taq DNA 聚合酶的 10buffer5l, dNTP 混 合物 1l, 特异性引物 SEQ ID NO.1, 特异性引物 SEQ ID NO.2, 特异性探针 SEQ ID NO.3 各 1l, 去离子水补齐至 50l。荧光定量 PCR 程序为 : 95 10min 预变性, 接。
7、 45 个循环 : 95 40s, 60 1min。 6. 权利要求 1 的引物和探针在制备检测小鼠 SEPS1 基因试剂盒中的应用。 7. 小鼠 SEPS1 基因或 SEPS1 蛋白在制备检测小鼠脓毒症的试剂盒中的应用。 权 利 要 求 书 CN 103146833 A 2 1/8 页 3 一种检测小鼠 SEPS1 基因的荧光定量 PCR 试剂盒 技术领域 0001 本发明涉及基因检测试剂盒的制备及使用方法。具体而言, 本发明涉及以小鼠 SEPS1 基因的核苷酸序列为基础, 设计特异性的寡聚核苷酸引物和荧光标记探针, 采用实时 荧光定量 PCR 技术组装脓毒症的检测试剂盒, 本发明也涉及其检。
8、测方法。 背景技术 0002 Selenoprotein S1(SEPS1) 是一种新发现的对内质网的应激反应和炎症控制起作 用的基因。近来的研究结果显示 SEPS1 与炎症细胞因子的产生存在直接的联系, 可能在炎 症介导的胰岛素依赖型糖尿病以及一些其他的免疫异常中起主要作用。 0003 许多常见疾病的发生机制都包含了免疫系统的激活, 例如糖尿病, 肿瘤和心血管 疾病。最近的研究显示炎症反应持续作用的结果是导致这些疾病的发生。细胞暴露于应激 条件下会激活免疫, 由此导致循环中促炎症因子水平升高, 这与 SEPS1 基因下调相关。 0004 SEPS1 在保护内质网功能完整性以抵御潜在的代谢应激。
9、中也起重要作用。SEPS1 被分类为一个新的内质网膜蛋白, 参与将错误折叠蛋白质由内质网转运到溶酶体, 在溶酶 体中通过蛋白酶体进行泛蛋白化和降解。SEPS1 同时也参与调节细胞氧化还原平衡并保 护内质网免受氧化应激的有害作用。内质网功能受损时, 损伤导致的不良反应是诱使一 些基因表达, 将导致转录因子 NF-KB 的活化。活化的 NF-KB 进入细胞核, 激活包括编码促 炎性细胞因子在内的基因转录。Kryukov GV, et al.Characterization of mammalian selenoproteomes.Science, 2003, (300) : 1439-1443 0。
10、005 人类 SEPS1 基因位于染色体 15q26.3, 包含 6 个外显子, 编码一个有 189 个氨基 酸的蛋白质。15 号染色体的这个区域以前被认为包含影响炎性疾病的数量性状遗传位点 (quantitative trait loci QTLs), 这些炎性疾病包括胰岛素依赖型糖尿病, Alzheimer s 病和腹部疾病。这样 SEPS1 有可能是炎症相关疾病多样性的功能因素和位置因素。 Zamani, M., Pociot, F., Raeymaekers, P., Nerup, J.& Cassiman, J.J.Linkage of type I diabetes to 15q2。
11、6(IDDM3)in the Danish population.Hum.Genet.1996 98, 491-496 ; Field, L.L., Tobias, R.& Magnus, T.A locus on chromosome 15q26(IDDM3)produces susceptibility to insulin-dependent diabetes mellitus.Nat.Genet.19948, 189-194.。 0006 脓毒症是最古老的疾病之一, 近 50 年来发病率及病死率逐渐升高, 有报道 1979 年 -1999 年问患病率增加了 300, 目前全世界每天约有。
12、 1400 人死于本症。革兰阴性菌 (G-) 感染是引起脓毒症的重要原因之一, G-菌外膜的活性成分内毒素 (endotoxin) 即脂多 糖 (lipop0lysaccharide, LPS) 与巨噬细胞、 内皮细胞等多种细胞膜上相应受体作用后, 启 动胞内信号传导系统, 最终激活核转录因子 -B(nuclear factorB, NF-B), 引起多种 细胞因子和炎症介质 (TNF、 IL-I、 IL-6 等 ) 的表达和释放, 导致血管通透性增加、 体液渗 出和淋巴细胞移行到炎症部位。 机体的这种防御反应有利于清除病原菌, 但如反应过度, 则 会引发 “炎症级联反应或伴有免疫功能的严重抑。
13、制, 即全身炎症反应综合症或代偿性抗 说 明 书 CN 103146833 A 3 2/8 页 4 炎反应综合症 (compensatory anti-inflammatory reaction syndrome, CARS), 表现为脓 毒症, 脓毒性休克甚至多器官功能障碍综合征 (multiple organ dysfunction syndrome, MODS)。 发明内容 0007 本发明的目的是提供一种检测小鼠SEPS1基因表达水平的的荧光定量PCR试剂盒 及使用方法, 该 PCR 试剂盒适合于目前存在市场上的所有类型荧光定量基因扩增仪, 灵敏 度高, 定量快速准确、 稳定性好, 具。
14、有良好的应用前景。 0008 本发明的另一目的是在于提供一种荧光定量 PCR 试剂盒对小鼠脓毒症进行快速 的检测。 0009 为了实现上述目的, 本发明根据 GenBank 提供的小鼠 SEPS1 基因保守序列, 采 用 ABI primer Express 2.0 软件设计探针和引物。特异引物及探针名称及序列为 : 上游引物序列为 SEQ ID NO.1 TGGAGACCGAGAGCCTGCGA, 下游引物序列为 SEQ ID NO.2 CGGCTTGGTCCAGCTGTCTCT, 探针为 : FAM-GCGGGAAGCT CTTGCAGATT-TAMRA。 其中FAM为羧基荧 光素, 是标。
15、记在 5 端荧光基因 ; TAMRA 为荧光染料, 是标记在 3 端的荧光淬灭基团。 0010 本发明还制备了小鼠 SEPS1 基因的阳性对照重组质粒。制备步骤方法如下 : 使 用 TRNzol 试剂抽提脓毒症小鼠肝组织的总 RNA, 接着进行逆转录反应, 反转录体系为 : 上游 引物 SEQ ID NO.1(2mol/L)1l, 5 第一链缓冲液 4l, dNTP 混合物 ( 每种 2.5mmol/ L)4l, 0.1mol/L DTT2l, SuperScript RNase H 逆转录酶 (200U/l)2l。反应条件 为 : 37水浴 60 分钟, 95水浴 3 分钟。将逆转录反应得到。
16、的 cDNA 进行常规 PCR 扩增, PCR 产物检测后切胶回收并纯化, 将纯化产物连接到 PGM-T 克隆载体上, 随后转化到 DH5 感 受态细胞中。通过序列为 SEQ ID NO.1 和 SEQ ID NO.2 的特异性引物筛选阳性克隆。阳 性克隆扩增后提取质粒 DNA, 质粒 DNA 采用 NanoDrop ND-1000 核酸定量仪定量 (NanoDrop Technologies, Wilmington, Delaware) 并做 10 倍系列稀释作为标准品用于标准曲线的制 备。 0011 本发明还制备了一种检测小鼠 SEPS1 基因表达水平的荧光定量 PCR 试剂盒, 组分如下。
17、 : 特异性引物、 特异性探针、 标准 DNA 模板、 荧光定量 PCR 反应液、 阴性质控标 准品。其中所述的特异性引物包括上游引物和下游引物, 上游引物序列为 SEQ ID NO.1 TGGAGACCGAGAGCCTGCGA, 下游引物序列为 SEQ ID NO.2 CGGCTTGGTCCAGCTGTCTCT, 扩增子大 小为 153bp。特异性探针为 SEQ ID NO.3 : 5 FAM-TGCTGGCCAGCTATGGCTGG-TAMRA3 。荧光 定量 PCR 反应液为 Hot-start Taq DNA 聚合酶 (2.5U/l), Hot-start Taq DNA 聚合酶的 1。
18、0buffer 和 dNTP 混合物 ( 每种 10mmol/L)。 0012 本发明还公开了一种检测小鼠 SEPS1 基因表达水平的的荧光定量 PCR 试剂 盒的使用方法如下 : 荧光定量 PCR 体系 : Hot-start Taq DNA 聚合酶 (2.5U/l)1l, Hot-start Taq DNA 聚合酶的 10buffer 5l, dNTP 混合物 ( 每种 10mmol/L)1l, 上 游引物 (10mol/L), 下游引物 (10mol/L), 特异性探针 (5mol/L) 各 1l, 样品 cDNA 5l或标准质粒DNA 2l或阴性质控标准品5l加离子水至50l。 荧光定。
19、量PCR程序 : 5 10min 预变性, 接 45 个循环 : 95 40s, 60 1min。 0013 本发明还检测了本试剂盒灵敏性, 结果显示本试剂盒检测范围为 107-102copies/ 说 明 书 CN 103146833 A 4 3/8 页 5 l, 最小检出浓度为 102copies/l。 0014 通过本发明的样品检测发现本试剂盒阴性检测准确率 95, 阳性准确率为 100。连续 3 次重复实验, 实验结果稳定, 变异系数小于 1.5。 附图说明 0015 图 1 为脓毒症小鼠肝组织 SEPS1 蛋白的变化。 0016 图 2 为脓毒症小鼠肝组织 SEPS1 组织化学检测。。
20、 0017 图 3 为脓毒症小鼠肺组织 SEPS1 组织化学检测。 0018 图 4 是 利 用 阳 性 DNA 片 段 梯 度 稀 释 后 制 备 的 荧 光 定 量 标 准 曲 线 : Y -3.39X+42.7, R 0.993。 具体实施方式 0019 下面结合具体实施例, 进一步阐述本发明。下列实施例中未注明具体条件的实验 方法, 通常按照常规条件或按照厂商所建议的条件。 0020 实施例 1 SEPS1 蛋白在脓毒症小鼠中过表达 0021 1、 脓毒症小鼠动物模型的建立 0022 实验小鼠为巴比 C 小鼠 ( 购自协和医科大学实验动物中心 ), 清洁级, 体重 17 20g。小鼠购。
21、进后在本单位动物实验室饲养 3 天, 室温维持 22 25。 0023 脓毒症小鼠动物模型的建立 : 实验前 12h 小鼠禁食, 自由饮水, 腹腔内注射内毒素 10mg/kg, 单笼饲养。60 只小鼠随机选取对 10 只不注射内毒素, 作为对照组, 其余制作脓毒 症模型。 0024 正常对照组麻醉后活杀, 脓毒症组小鼠腹腔注射内毒素 10mg/kg 后, 分别于 6h、 12h、 24h、 48h 留取标本, 每个时间点不少于 10 只动物。 0025 2、 Western Blot 免疫印迹检测小鼠肝组织 SEPS1 蛋白的表达 0026 1) 组织裂解及蛋白定量 : 肝组织剪碎后置于预冷的。
22、玻璃匀浆器中, 加入预冷的细 胞裂解液后研磨。100mg 组织 /ml 裂解液, 充分裂解, 冰浴 30min, 12000g, 4离心 5min, 吸 取上清(内含胞浆蛋白), 分装, 200-300l每管, 立即置于-20保存(短期保存可4)。 留少许样品进行蛋白质浓度测定。采用 Bradford 考马斯亮蓝法, 通过测量 595nm 处的吸光 度值, 进行蛋白质定量。 0027 2) 凝胶配制 : 配方见分子克隆手册, 分离胶迅速注入玻璃板间隙, 并覆盖一层三 蒸水, 置于室温。待 30min 后, 倒出覆盖层水, 滤纸吸干。灌制积层胶。立即插入梳子。 0028 3) 电泳 : 将蛋白样。
23、品 (20g) 与等体积 2SDS 凝胶上样缓冲液混匀, 在 100水 浴煮沸 3min 以使蛋白质变性。待积层胶聚合完全后, 拔掉梳子上样。电泳在 Tris- 甘氨酸 缓冲液中进行, 所用电压为 : 积层胶 120V, 分离胶 140V。待溴酚兰电泳至凝胶底部终止电 泳, 取下凝胶。 0029 4) 转膜 : 备 6 张 Whatman 3M 滤纸和一张硝酸纤维素膜, 大小与凝胶一致。将硝酸 纤维素膜漂浮于转移缓冲液上, 借毛细作用使之从下向上浸湿后, 把 6 张滤纸与凝胶一起 浸没于缓冲液中室温平衡 30min。安装转移装置, 平放下部电极 ( 阳极 ), 石墨面朝上, 逐张 叠放精确对齐。
24、 3 张浸泡过缓冲液的滤纸, 用玻璃棒作滚筒以挤出所有气泡。然后将硝酸纤 说 明 书 CN 103146833 A 5 4/8 页 6 维素膜精确放在滤纸上, 确保滤纸与膜之间没有气泡。 再将凝胶精确放在膜上。 凝胶左下角 置于膜的标记角上, 戴手套排出所有气泡。把另 3 张浸泡过缓冲液的滤纸放在凝胶上, 同样 确保各层对齐且不留气泡。放置上部电极 ( 阴极 ), 石墨面朝下。连接电源, 阳极 ( 红色 ) 导线连接底部石墨电极。根据凝胶面积按照 0.65mA/cm2 接通电流, 电转移 2h, 完毕后用丽 春红 S 染液证实已将蛋白转移至硝酸纤维素膜上。 0030 5) 纤维素膜的封闭与杂交。
25、 : 封闭硝酸纤维膜的免疫球蛋白结合位点。封闭液为 1TBST 配制的 10的脱脂奶粉溶液, 把硝酸纤维素膜放入可以加热封接的塑料袋中, 根 据滤膜面积按 0.1ml/cm2 加入封闭液, 尽可能排出里面的气泡, 然后封闭袋口, 平放在 37 摇床 1h。取出后, 加入一抗 1 300, 4过夜。剪开塑料袋, 倾去一抗, PBS 漂洗滤膜 3 次, 每次 10min。加入二抗, 工作液浓度 1 1000, 尽可能排出里面的气泡, 然后封闭袋口, 平放 在 37摇床 1h。剪开塑料袋, 倾去封闭液和二抗, PBS 漂洗滤膜 3 次, 每次 10min。发光试 剂显色, X 光片于其上曝光 1mi。
26、n, 冲洗, 扫描成像。 0031 3、 免疫组织化学法检测肝脏和肺脏中 SEPS1 蛋白表达 0032 免疫组化染色步骤 : 0033 1) 石蜡切片脱蜡至水。 0034 2)3 H2O2室温孵育 5 10 分钟, 以消除内源性过氧化物酶的活性。 0035 3) 蒸馏水冲洗, PBS 浸泡 5 分钟 0036 4)5 10正常山羊血清 (PBS 稀释 ) 封闭, 室温孵育 10 分钟。 0037 5) 倾去血清, 勿洗, 滴加一抗 (Anti-SEPS1, Sigma 公司 ), 4过夜。 0038 6)PBS 冲洗, 5 分钟 3 次。 0039 7) 生物素标记二抗 (1 BSA-PBS。
27、 稀释 ), 37孵育 10 30 分钟 ; 0040 8)PBS 冲洗, 5 分钟 3 次。 0041 9) 滴加第二代辣根酶标记链霉卵白素工作液, 37或室温孵育 10 30 分钟。 0042 10)PBS 冲洗, 5 分钟 3 次。 0043 11) 显色剂显色 (DAB 或 AEC)。 0044 12) 自来水充分冲洗, 复染, 封片。 0045 4、 Western Blot 检测脓毒症小鼠肝组织 SEPS1 蛋白表达规律 0046 actin 为内参照。正常对照动物肝组织中有少量 SEPS1 蛋白表达。内毒素攻击导 致的脓毒症小鼠肝脏 SEPS1 蛋白表达显著升高, 并于伤后第 2。
28、4h 达峰值。( 图 1)。 0047 5、 肝脏中 SEPS1 蛋白的表达情况 0048 石蜡切片免疫组化研究结果显示棕黄色为 SEPS1 蛋白表达阳性部位。正常对照动 物肝组织中有少量SEPS1蛋白表达(0h)。 内毒素攻击致脓毒症小鼠肝脏SEPS1蛋白表达逐 渐增高, 并于伤后第 24h 48h 达峰值 (24h), 表现为棕黄色阳性部位增多 ( 图 2)。 0049 6、 肺脏中 SEPS1 蛋白的表达情况 0050 石蜡切片免疫组化研究结果显示棕黄色为 SEPS1 蛋白表达阳性部位。正常对照动 物肺组织中仅有极少量SEPS1蛋白表达(0h)。 内毒素攻击致脓毒症小鼠肺脏SEPS1蛋白。
29、表 达逐渐增高, 并于伤后第 24h 48h 达峰值, 表现为棕黄色阳性部位增多 ( 图 3)。 0051 通过上述研究结果显示, 当小鼠患有脓毒症时, 小鼠肝组织和肺组织的 SEPS1 蛋 白表达量较正常小鼠肝组织和肺组织的 SEPS1 蛋白表达量显著升高。由于 SEPS1 蛋白的表 说 明 书 CN 103146833 A 6 5/8 页 7 达量是由 SEPS1 基因的表达水平控制的, 因此我们可以通过检测 SEPS1 基因的表达量作为 诊断脓毒症的一个指标。 0052 实施例 2 一种检测小鼠 SEPS1 基因的荧光定量 PCR 试剂盒的制备 0053 1、 小鼠 SEPS1 基因的荧。
30、光定量 PCR 试剂盒组成 0054 0055 0056 其中, Hot-start Taq DNA 聚合酶及 10buffer 购自天时代公司, dNTP 混合物购 自 Promega 公司。 0057 2、 引物设计与探针合成 0058 根 据 GenBank 提 供 的 小 鼠 SEPS1 基 因 保 守 序 列, 采 用 ABI primer Express 2.0 软件设计探针和引物。特异引物及探针名称及序列为 : 上游引物序列为 SEQ ID NO.1TGGAGACCGAGAGCCTGCGA, 下游引物序列为 SEQ ID NO.2 0059 CTGGATGC ATGTATGATG。
31、TG, 探针为 : 5 FAM- 0060 TGCTGGCCAGCTATGGCTGG-TAMRA3 。其中 FAM 为羧基荧光素, 是标记在 5 端荧光基 因 ; TAMRA 为荧光染料, 标记在 3 端, 荧光淬灭报告基团的同时, TAMRA 自身会在更高波长处 发射荧光。上述序列和探针由 Invitrogen 公司合成。 0061 3、 小鼠 SEPS1 基因的阳性对照重组质粒的制备 0062 按照说明书, 使用 TRNzol 试剂 ( 购自 Invitrogen 公司 ) 抽提脓毒症小鼠肝组织 的总RNA, 接着进行逆转录反应, 反转录体系为 : 上游引物SEQ ID NO.1(2mol。
32、/L)1l, 5 第一链缓冲液 4l, dNTP 混合物 ( 每种 2.5mmol/L)4l, 0.1mol/L DTT2l, SuperScript RNase H 逆转录酶 (200U/l)2l( 购自 Invitrogen 公司 ) 反应条件为 : 37水浴 60 分 钟, 95 3 分钟。 0063 将逆转录反应得到的 cDNA 进行常规 PCR 反应, 反应体系和条件如下 : 10Ex Taq buffer 10ul, dNTP Mixture( 各 2.4mM)4ul, Sequence NO.1(10pmol)4ul, Sequence 说 明 书 CN 103146833 A 。
33、7 6/8 页 8 NO.2(10pmol)4ul, cDNA(0.1-2ug)5ul, Ex Taq DNA聚合酶0.5ul, 双蒸水补齐至100ul。 反应 条件为 94预变性 5min ; 94变性 50s, 50退火 50s, 72延伸 50s, 35cycles ; 最后 72 延伸 10min。 0064 取样5l, 对PCR扩增的产物进行琼脂糖凝胶电泳检测, 进行切胶回收并纯化(回 收使用试剂盒 : EZ-10Spin Column DNA Gel Extraction Kit), 将纯化产物连接到PGM-T克 隆载体, 随后转化到 DH5 感受态细胞中。通过序列为 SEQ ID。
34、 NO.1 和 SEQ ID NO.2 的特 异性引物筛选阳性克隆。阳性克隆扩增后提取质粒 DNA, 质粒 DNA 采用 NanoDrop ND-1000 核酸定量仪定量 (NanoDrop Technologies, Wilmington, Delaware) 并做 10 倍系列稀释作 为标准品用于标准曲线的制备 ( 标准质粒浓度范围在 109-101copies/l)。 0065 4、 定量标准曲线的建立 0066 将构建好的重组质粒测定稀释后, 计算拷贝数 /ml, 10 倍倍比稀释成 109-101 拷贝 /ml 浓度梯度, 每个浓度平行加入 3 个反应管同时进行荧光定量扩增, 反应在。
35、 BIO-RAD CFX(Bio-Rad Laboratories USA) 实时荧光定量 PCR 仪上进行, 50l 反应体 系 包 括 : Hot-start Taq DNA 聚 合 酶 (2.5U/l)1l, Hot-start Taq DNA 聚 合 酶 的 10buffer7l, dNTP 混合物 1l, 特异性引物 SEQ ID NO.1, 特异性引物 SEQ ID NO.2, 特异性探针各 1l, 去离子水补齐至 50l。反应程序为 : 95 10min 预变性, 接 45 个循 环 : 95 40s, 60 1min。无菌水用于阴性对照, 重复 3 次, 反应结束后计算机自动绘。
36、制标 准曲线, 检测结果由 Bio-Rad CFX Manager 软件和 Excel 进行数据分析, 得到标准曲线 : Y -3.39X+42.7, R 0.993( 图 4), 起始模版在 107-103拷贝 /ml 时线性较好。 0067 5、 阴性对照的制备 0068 使用 RNA 抽提试剂盒 ( 北京百泰克生物技术有限公司 ) 抽提正常对照组小鼠肝组 织中的 RNA, 进行逆转录反应, 得到 cDNA, 作为阴性对照。通过扩增管家基因 GAPDH( 引物购 自 TAKARA 公司 ) 检测该 cDNA 的完整性, PCR 产物电泳结果明显, 该 cDNA 完整, 可用作阴性 对照。 。
37、0069 6、 敏感性实验 0070 取重组质粒按比例稀释为 105、 104、 103、 102、 10、 1 个拷贝 /ml, 进行荧光定量 PCR, 以检测为阳性的最低浓度为该方法的检测灵敏度。本研究所建立的方法检测范围为 107-102copies/l, 最小检出浓度为 102copies/l。 0071 实施例 3 小鼠 SEPS1 基因的检测方法 0072 一种小鼠 SEPS1 基因的检测方法, 包括样品 RNA 的提取、 样品 cDNA 的制备、 SEPS1 基因的扩增, 其具体步骤如下 : 0073 1 样品 RNA 的提取 0074 按 Trizol 试剂盒说明书提取小鼠肝脏。
38、和肺脏的 RNA, 通过凝胶电泳证明 RNA 的完 整性, 用核酸蛋白仪测定 RNA 的浓度和纯度。采用上海华舜生物工程有限公司总 RNA 抽提 试剂盒子提取。主要操作步骤如下 : 0075 (1) 用细胞裂解液 BL 裂解组织细胞, 离心取上层细胞。在上层细胞中加入 1ml 的 Trizol, 用带针头的一次性注射器抽打裂解物 10 次, 室温 5 分钟。 0076 (2) 静置 5 分钟后, 加入 200l 的氯仿, 用力颠倒离心管混匀后, 室温静置使之分 层, 12000g 离心 5 分钟, 小心移取水相至 1.5ml 的离心管中。 说 明 书 CN 103146833 A 8 7/8 。
39、页 9 0077 (3) 加入等体积的异丙醇, 彻底混匀后, 取出 750l 移入吸附柱, 离心 30 秒, 倒掉 收集管中的液体, 将吸附柱移入同一收集管中, 将剩余的全部将入吸附柱中, 离心 30 秒。倒 掉收集管中的液体, 将吸附柱移入同一个收集管中。 0078 (4)加入500L RP液, 离心30秒。 倒掉收集管中的液体, 将吸附柱移入同一收集 管中。 0079 (5) 将 500l 的 W3 液, 静置 1 分钟, 离心 15 秒。 0080 (6) 将吸附柱移入一个干净的收集管中, 加入 500l W3 液, 离心 15 秒。 0081 (7) 倒掉收集管中的液体, 再将吸附柱移。
40、入同一收集管中, 离心 1 分钟。 0082 (8) 将吸附柱放入另一个干净的 1.5ml 的离心管中, 在吸附膜中央加入 50l 纯 水, 室温静置 1 分钟后, 离心 1 分钟。将 RNA 贮存于 -70。 0083 (9) 总 RNA 完整性鉴定 : 取 2l RNA 样品在 1.5琼脂糖凝胶电泳 (80v, 15min), 分出区带后, EB 染色, 紫外灯下观察电泳区带。 0084 (10) 用核酸蛋白仪测定 RNA 的浓度和纯度 0085 2 样品 cDNA 的制备 0086 RNA的反转录使用试剂盒(MMLV First Strand cDNA Synthesis Kit), 其。
41、中RNase Inhibitor 及 M-MuLV Reverse Transcriptase 需置于冰上, 其他试剂 ( 如 5Reaction Buffer, dNTP Mix, Oligo-p(dT)18 Primer) 室温融化。试验操作时必须戴一次性 PE 手套。 RNA 试验相关的器材必须防止 RNase 的污染。所有试剂融化后置于冰上, 使用前进行短离 心。具体步骤如下 : 0087 1. 利用 PCR 管在冰上配制如下体系 : 0088 模板 RNA 1-5g 0089 Oligo(dT)18primer 1l(0.5g/l) 0090 加 DEPC 水至 12l 0091 轻。
42、轻混合, 并短离心 5s ; 0092 2.70温育 5min, 冰上冷却 30s, 之后短离心 ; 0093 3.PCR 管置于冰上, 再向其中加入 : 0094 5reaction buffer 4l 0095 RNase inhibitor 1l(20U/l) 0096 dNTPMix2l(10mmol/l) 0097 M-MuLV Reverse Transcriptase 1l(20U/l) 0098 加 DEPC 水至 20l, 轻轻混合, 之后短离心 ; 0099 4.37温育 60min ; 0100 5.70温育 10min, 4以结束反应。反转录得到的 cDNA 置于 -2。
43、0保存。 0101 3SEPS1 基因的扩增 0102 荧光定量 PCR 50l 反应体系包括 : cDNA 模板 2l, Hot-start Taq DNA 聚合酶 (2.5U/l)1l, Hot-start Taq DNA聚合酶的10buffer7l, dNTP混合物1l, 特异性 引物 SEQ ID NO.1, 特异性引物 SEQ ID NO.2, 特异性探针各 1l, 去离子水补齐至 50l。 荧光定量PCR程序为 : 9510min预变性, 接45个循环 : 9540s, 601min, 采用NanoDrop ND-1000 核酸定量仪扩增 SEPS1 基因 (NanoDrop Te。
44、chnologies, Wilmington, Delaware)。 说 明 书 CN 103146833 A 9 8/8 页 10 0103 实施例 4 样本检测 0104 腹腔注射内毒素 10mg/kg 建立脓毒症模型的小鼠 20 只, 分别于 6h、 12h、 24h、 48h 留取小鼠的肝组织, 同时取 10 只正常小鼠的肝组织, 使用 RNA 抽提试剂盒提取小鼠肝脏 RNA, 进行逆转录反应, 逆转录反应的体系和条件同上, 进行荧光定量PCR反应(反应体系和 反应条件同上 ), 设置 6 个时间, 每个时间 4 个平行, 以重组质粒为阳性对照, 正常小鼠肝脏 组织的cDNA为阴性对照。
45、, 水为空白对照, 结果显示脓毒症小鼠肝脏SEPS1基因在24h和48h 表达量最大。其中, 6h SEPS1 基因的表达量是阴性对照的 3 倍, 12h SEPS1 基因的表达量是 阴性对照的 14 倍, 24h SEPS1 基因的表达量骤增是阴性对照的 86 倍, 48h SEPS1 基因的表 达量是阴性对照的 102 倍。 0105 腹腔注射内毒素 10mg/kg 建立脓毒症模型的小鼠 20 只, 分别于 6h、 12h、 24h、 48h 留取小鼠的肺组织, 同时取 10 只正常小鼠的肺组织, 使用 RNA 抽提试剂盒提取小鼠肺脏 RNA, 进行逆转录反应, 逆转录反应的体系和条件同上。
46、, 进行荧光定量PCR反应(反应体系和 反应条件同上 ), 设置 6 个时间, 每个时间 4 个平行, 以重组质粒为阳性对照, 正常小鼠肺组 织的 cDNA 为阴性对照, 水为空白对照, 结果显示脓毒症小鼠肺脏 SEPS1 基因的表达量和肝 脏的表达趋势一致, 也是在24h和48h表达量最大。 其中, 6h SEPS1基因的表达量是阴性对 照的 4 倍, 12h SEPS1 基因的表达量是阴性对照的 19 倍, 24h SEPS1 基因的表达量骤增是阴 性对照的 102 倍, 48h SEPS1 基因的表达量是阴性对照的 121 倍。 0106 通过对上述 10 个正常小鼠的肝脏和肺组织共 2。
47、0 份样品, 和 20 个脓毒症小鼠的 肝脏和肺组织共 40 个样品检测中, 结果显示 20 个正常小鼠组织样品中有 1 个为假阳性, 40 个脓毒症小鼠样品全为阳性, 所以本试剂盒阴性检测准确率达到 95, 阳性准确率达到 100。连续 3 次重复实验, 实验结果稳定, 变异系数小于 1.5, 表明该试剂盒检测方法稳 定可行, 重复性好。 0107 上述实施例为本发明较佳的实施方式, 但本发明的实施方式并不受上述实施例的 限制。 说 明 书 CN 103146833 A 10 1/1 页 11 0001 序 列 表 CN 103146833 A 11 1/2 页 12 图 1 图 2 说 明 书 附 图 CN 103146833 A 12 2/2 页 13 图 3 图 4 说 明 书 附 图 CN 103146833 A 13 。