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1、(10)申请公布号 CN 102864129 A (43)申请公布日 2013.01.09 CN 102864129 A *CN102864129A* (21)申请号 201210350762.5 (22)申请日 2011.09.08 201110266082.0 2011.09.08 C12N 7/01(2006.01) C12N 15/85(2006.01) A61K 39/145(2006.01) A61P 31/16(2006.01) C12R 1/93(2006.01) (71)申请人 中国农业科学院上海兽医研究所 地址 200241 上海市闵行区紫月路 518 号 (72)发明人 。
2、李泽君 滕巧泱 (74)专利代理机构 上海大邦律师事务所 31252 代理人 周东萍 (54) 发明名称 高效表达 HA 蛋白的重组流感病毒及其制备 方法和应用 (57) 摘要 本发明公开了一种 PR8 重组流感病毒, 该重 组流感病毒含有 H10 亚型流感病毒的 HA 和 / 或 NA基因、 含有PR8病毒的6个内部基因(PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之 一含有以下突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上 具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 。
3、G132A 点突 变。本发明还公开了上述 PR8 重组流感病毒的制 备方法和应用。 本发明通过构建重组质粒、 共转染 细胞和SPF鸡胚扩增得到的PR8重组流感病毒, 能 高效表达HA蛋白和/或NA基因, 可用于大规模制 备流感疫苗。 (62)分案原申请数据 (51)Int.Cl. 权利要求书 1 页 说明书 21 页 附图 2 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书 1 页 说明书 21 页 附图 2 页 1/1 页 2 1. 一种 PR8 重组流感病毒, 其特征在于, 其含有 H10 亚型流感病毒的 HA 和 / 或 NA 基 因、 含有 PR8 病毒的 。
4、6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二 者之一含有以下突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变。 2. 一种制备权利要求 1 所述的 PR8 重组流感病毒的方法, 其特征在于, 包括以下步骤 : 构建分别包含 H10 亚型流感病毒的 HA 和 NA 基因的重组质粒 ; 构建包含 PR8 病毒突变基因片段的重组质粒, 该 PR8 病毒突变基因片段选自下述突变 的 NS 或 NP 基因片。
5、段 : 编码含有 E67S、 或 E74S、 或 NS2E67/74S 点突变的 NS2 蛋白的 PR8 病 毒 NS 基因片段, 编码含有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 PR8 病毒 NP 基因片段 ; 将上述H10亚型流感病毒的HA基因的重组质粒和NA基因的重组质粒, 与上述包含PR8 病毒突变基因片段的重组质粒、 以及分别包含 PR8 病毒 PA、 PB1、 PB2、 M、 NP 或 NS 内部基因 的质粒按相应组合一起转染 293T 细胞, 培养转染后的细胞 ; 将培养的细胞上清接种于鸡胚, 在孵化器内培养合适时间后, 收获鸡胚尿囊液, 检测该 尿囊液的血凝性, 如果有血凝活性,。
6、 并且经过序列分析确定没有非预期突变后, 即获得 PR8 重组流感病毒。 3. 权利要求 1 所述的 PR8 重组流感病毒在制备流感疫苗中的应用。 4. 一种疫苗, 其特征在于, 包含权利要求 1 所述的 PR8 重组流感病毒。 权 利 要 求 书 CN 102864129 A 2 1/21 页 3 高效表达 HA 蛋白的重组流感病毒及其制备方法和应用 0001 本申请是申请日为 2011 年 9 月 8 日, 申请号为 201110266082.0, 发明名称为 “高 效表达 HA 蛋白的重组流感病毒及其制备方法和应用” 的发明申请的分案申请。 技术领域 0002 本发明属于生物技术领域, 。
7、涉及到疫苗的生产领域, 具体地, 是涉及到一种高效表 达 HA 蛋白的重组流感病毒及其制备方法和应用。 0003 技术领域 0004 流感是由正粘病毒科流感病毒属 A 型流感病毒引起的一种急性、 高度接触性传染 病, 高致病性禽流感被国际动物卫生组织确定为A类疫病。 流感病毒根据基质蛋白(Matrix protein, M) 的不同可以分为 A、 B、 C 三型。根据流感病毒血凝素 (Hemagglutinin, HA) 和神 经氨酸酶 (Neuraminidase, NA) 抗原性的差异, 又可将流感病毒分为不同的亚型, A 型流感 病毒根据HA划分为16个亚型, 根据NA划分为9个亚型。 。
8、流感病毒具有高度传染性, 可通过 飞沫传播, 因此它能在短期内突然发生, 迅速蔓延, 造成不同程度的流行, 甚至世界大流行。 1983-1984 年, 美国宾州的高致病性禽流感暴发, 造成 1700 万家禽死亡, 损失近 6500 万美 元。2003 年年底, 亚洲多个国家和地区暴发了高致病性的禽流感。禽流感的暴发, 使 1 亿 多只家禽死亡或被扑杀, 部分国家禽肉产量和销售量急剧下降, 价格下跌, 禽肉及其制品进 出口暂时中止 ; 此外, 家禽养殖业、 饲料行业和旅游业也都受到不利的影响。据粮农组织估 计, 由此遭受的损失至少为 5 亿美元。此外, 许多亚型的禽流感病毒具有跨宿主传播至人的 。
9、能力, 因而, 该病的暴发也同时危害着社会公共安全。二十世纪爆发了三次流感的大流行, 分别是1918年西班牙流感(H1N1)、 1957年亚洲流感(H2N2)和1968年香港流感(H3N2), 其 中最大规模的流行为西班牙流感。该流感疫病造成全球 2000 万人的死亡, 超过第一次世界 大战死亡人数, 列全球所有传染病死亡的第一位。 0005 流感病毒的基因组由单股, 负义 RNA 片段组成 .。A 型流感病毒分为 8 个片段, 编 码 11 种功能蛋白, 片段 1、 2、 3 分别编码三个聚合酶蛋白 PB2、 PB1 和 PA ; 片段 4 编码血凝素 HA ; 片段 5 编码核衣壳蛋白 N。
10、P ; 片段 6 编码神经氨酸酶 NA ; 片段 7 编码基质蛋白 M1 和离子 通道 M2 ; 片段 8 编码非结构蛋白 NS1 和 NS2。其中 HA 和 NA 是流感病毒最主要的两种表面 糖蛋白, HA 蛋白是流感病毒最重要的保护性抗原。 0006 目前, 各国对动物和人流感的预防控制采取了不同的措施, 但是疫苗接种仍然是 预防流感的最佳选择, 因此研制有效的流感疫苗对于控制流感流行具有极其重要的意义。 全病毒灭活疫苗是目前应用最广泛的疫苗, 该疫苗安全性好, 不会出现毒力返强和变异的 危险, 能够经受同种亚型流感病毒的攻击。目前已上市的流感疫苗基本都是使用鸡胚培养 制备, 国内外使用鸡。
11、胚培养疫苗已经有 50 年历史。由于鸡胚生产流感疫苗需要消耗大量的 鸡胚, 鸡胚带有潜在污染可能, 而且培养周期过长, 不易于扩大产量, 不利于应对大规模的 流感爆发。 为此, 世界卫生组织、 美国政府等都鼓励发展细胞培养技术替代目前的鸡胚培养 技术来生产流感疫苗。为加快细胞培养流感疫苗技术的开发, 美国政府决定投资 11 亿美元 资助葛兰素史克、 edImmune、 诺华、 DynPort、 Solvay 和巴斯德 6 个主要的流感疫苗开发新技 说 明 书 CN 102864129 A 3 2/21 页 4 术。在 2007 年, 全球最大的生物制药公司之一诺华宣布其人用流感疫苗 Optaf。
12、lu 上市, 成 为唯一获批 ( 欧盟批准 ) 的人用细胞培养流感疫苗, 是 50 年流感疫苗生产史最重大的创新 之一。 0007 无论采用鸡胚法和大规模细胞制备法获得病毒, 重要的影响因素便是疫苗种毒本 身是不是高产量的病毒株。 A/Puerto Rico/8/34(PR8)是一株鸡胚适应病毒株, 是目前在鸡 胚上高产株之一, 疫苗研制中常常将 PR8 的 6 个内部基因与流行毒株的 HA 和 NA 基因重组 (6+2 模式 ), 将重组病毒作为疫苗株来提高病毒滴度。为了进一步提高 PR8 的病毒滴度, 满 足在流感大暴发时, 巨大的疫苗需求量, 科研人员进行了大量的研究, 通过优化病毒基因。
13、来 提高病毒株产量。 研究发现该流感病毒一些蛋白的某个氨基酸位点对该病毒的增殖能力具 有重要的影响, 如 PB2 上 360 位的酪氨酸 (Tyr) 和 NS1 上 55 位的谷氨酸 (Glu) 也起到一定 作用。 发明内容 0008 本发明的目的之一, 在于提供一种 PR8 突变重组流感病毒, 该重组流感病毒可高 效表达 HA 蛋白, 适用于大规模生产流感疫苗。 0009 实现上述目的技术方案如下 : 0010 一种 PR8 重组流感病毒, 其含有 H1 亚型流感病毒的 HA 和 / 或 NA 基因、 含有 PR8 病毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基。
14、因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以 下突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点 突变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变, 所述 H1 亚型流感病毒是除 PR8 病毒以 外的 H1 亚型流感病毒 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ 。
15、ID.NO : 24-27 所示 )。 0011 一种PR8重组流感病毒, 其含有H3亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有PR8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A。
16、 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0012 一种PR8重组流感病毒, 其含有H4亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有PR8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具。
17、有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0013 一种PR8重组流感病毒, 其含有H5亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有PR8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 说 明 书 CN 102864129 A 4 3/21 页 5。
18、 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0014 一种PR8重组流感病毒, 其含有H6亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有P。
19、R8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 。
20、SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0015 一种PR8重组流感病毒, 其含有H7亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有PR8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G。
21、132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0016 一种PR8重组流感病毒, 其含有H9亚型流感病毒的HA和/或NA基因、 含有PR8病 毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以下 突变位点 : NS 基因编码的 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突 变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 (。
22、 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0017 一种 PR8 重组流感病毒, 其含有 H10 亚型流感病毒的 HA 和 / 或 NA 基因、 含有 PR8 病毒的 6 个内部基因 (PB1, PB2, PA, NP, M, NS 基因 ), 其中 NS 和 NP 基因或二者之一含有以 下突变位点 : NS 基因编码的。
23、 NS2 蛋白上具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突变、 或 E67S/E74S 点 突变, NP 基因编码的 NP 蛋白上具有 G132A 点突变 ( 编码具有 E67S 点突变、 或 E74S 点突 变、 或 E67S/E74S 点突变的 NS2 蛋白的 NS 基因, 以及编码具有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 NP 基因, 其核酸序列分别如 SEQ ID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 其氨基酸序列如 SEQ ID.NO : 24-27 所示 )。 0018 本发明的另一目的是提供制备上述 PR8 重组流感病毒的方法。 0019 实现该目的的技术方案如下 : 002。
24、0 一种制备上述 PR8 重组流感病毒的方法, 包括以下步骤 : 0021 构建分别包含 H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H7、 H9、 H10 亚型流感病毒的 HA 和 NA 基因的重 组质粒 ; 0022 构建包含 PR8 病毒突变基因片段的重组质粒, 该 PR8 病毒突变基因片段选自下述 说 明 书 CN 102864129 A 5 4/21 页 6 突变的NS或NP基因片段 : 编码含有E67S、 或E74S、 或NS2E67/74S点突变的NS2蛋白的PR8 病毒 NS 基因片段, 编码含有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 PR8 病毒 NP 基因片段 ; 0023 将上。
25、述各亚型流感病毒的 HA 基因的重组质粒和 NA 基因的重组质粒, 与上述包含 PR8 病毒突变基因片段的重组质粒、 以及分别包含 PR8 病毒 PA、 PB1、 PB2、 M、 NP 或 NS 内部基 因的质粒按相应组合一起转染 293T 细胞, 培养转染后的细胞 ; 0024 将培养的细胞上清接种于鸡胚, 在孵化器内培养合适时间后, 收获鸡胚尿囊液, 检 测该尿囊液的血凝性, 如果有血凝活性, 并且经过序列分析确定没有非预期突变后, 即获得 PR8 重组流感病毒。 0025 在本发明的具体实施例中, 制备上述 PR8 重组流感病毒的方法, 包括以下步骤 : 0026 ( 一 )、 构建重组。
26、质粒 : 0027 A、 获得 H1、 H3、 H4、 H5, H6、 H7、 H9、 H10 亚型流感病毒的 HA 和 NA 基因 ; 0028 获得 H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H7、 H9、 H10 亚型流感病毒的 HA 和 NA 基因的方法为 : 0029 分别抽提 H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H9 和 H10 亚型流感病毒的总 RNA ; 0030 分别以总 RNA 为模板, 反转录合成 H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H9、 H10 亚型流感病毒的 cDNA ; 0031 以获得的 cDNA 为模板, 分别用 SEQ ID.NO : 13 和 SEQ。
27、 ID.NO : 14 以及 SEQ ID.NO : 11 和 SEQ ID.NO : 12 为上下游引物, 分别扩增出 H1、 H3、 H4、 H6、 H9、 H10 亚型流感病毒的 HA 基因和 H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H9、 H10 亚型流感病毒的 NA 基因 ; 0032 以H5亚型流感病毒的cDNA为模板, 用突变H5HA碱性裂解位点的引物SEQ ID.NO : 15 和 SEQ ID.NO : 13、 及引物 SEQ ID.NO : 16 和 SEQ ID.NO : 14 分别扩增, 再用 SEQ ID.NO : 13 和 SEQ ID.NO : 14 引物进行 P。
28、CR 融合扩增, 获得含有低致病性禽流感毒株碱性裂解位点 的 H5N1 亚型流感病毒的 HA 基因 ; 0033 所述 H7 亚型流感病毒的 HA 和 NA 基因的制备为 : 人工合成 H7 亚型流感病毒的 NA 基因和含有低致病性禽流感毒株碱性裂解位点的 HA 基因, 并用 SEQ ID.NO : 13 和 SEQ ID.NO : 14 和 SEQ ID.NO : 11 和 SEQ ID.NO : 12 为上下游引物, 分别进行扩增, 分别扩增出 H7 亚型流感病毒的 HA 基因和 NA 基因。 0034 B、 分别获得编码含有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 PR8 病毒 NP 基因片。
29、段和编码含有 E67S、 或 E74S、 或 NS2E67/74S 点突变的 NS2 蛋白的 PR8 病毒 NS 基因片段 ; 0035 优选地, 所述分别获得编码含有 G132A 点突变的 NP 蛋白的 PR8 病毒 NP 基因片段 和编码含有 E67S、 或 E74S、 或 NS2E67/74S 点突变的 NS2 蛋白的 PR8 病毒 NS 基因片段的制 备为 : 0036 以含有 PR8 病毒 NP 基因的重组质粒为模板, 分别用引物 SEQ ID.NO : 7 和 SEQ ID.NO : 6 以及引物 SEQ ID.NO : 5 和 SEQ ID.NO : 8 在 Pfx DNA 聚合。
30、酶的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段 PCR 产物为模板, 以 SEQ ID.NO : 7 和 SEQ ID.NO : 8 为引物, 进行第二次 PCR 扩 增融合, 获得点突变 G132A 的 PR8 病毒 NP 基因片段 ; 0037 以 PBD-PR8NS 重组质粒为模板, 分别用引物 SEQ ID.NO : 9 和 SEQ ID.NO : 2 以及引 物 SEQ ID.NO : 1 和 SEQ ID.NO : 10 在 Pfx DNA 聚合酶的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段 PCR 产物为模板, 以 SEQ ID.NO : 9 和 SEQ ID.NO : 10 为引物。
31、, 进行第二次 PCR 融合, 获得编码 含有 E67S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段 ; 说 明 书 CN 102864129 A 6 5/21 页 7 0038 以PBD-PR8NS重组质粒为模板, 分别用引物SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 4以及SEQ ID.NO : 3 和引物 SEQ ID.NO : 10 在 Pfx DNA 聚合酶的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段 PCR 产物为模板, 以SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 10为引物, 进行第二次PCR融合, 获得编码含有 E74S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段 。
32、; 0039 以上述的编码含有 E67S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段为模板, 分别用引物 SEQ ID.NO : 9 和 SEQ ID.NO : 4 以及引物 SEQ ID.NO : 3 和 SEQ ID.NO : 10 在 Pfx DNA 聚合酶 的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段 PCR 产物为模板, 以 SEQ ID.NO : 9 和 SEQ ID.NO : 10 为 引物, 进行第二次 PCR 融合, 获得编码同时含有 E74S 和 E74S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因 片段 ; C、 制备重组质粒 : 分别将获得的编码含有 G132A 点突变的 NP 。
33、蛋白的 PR8 病毒 NP 基 因片段和编码含有 E67S、 或 E74S、 或 NS2E67/74S 点突变的 NS2 蛋白的 PR8 病毒 NS 基因片 段和上述获得的 HA 和 NA 基因经过酶切、 连接及转化, 获得相应的重组质粒 ; 所述重组质粒 为以下中的一种以上 : PBD-(H1)HA、 PBD-(H1)NA ; PBD-(H3)HA、 PBD-(H3)NA ; PBD-(H4)HA、 PBD-(H4N2)NA ; PBD-(H5)HA、 PBD-(H5)NA ; PBD-(H6)HA、 PBD-(H6)NA ; PBD-(H7)HA、 PBD-(H7) NA ; PBD-(H。
34、9)HA、 PBD-(H9)NA ; PBD-(H10)HA、 PBD-(H10)NA ; PBD-PR8NS-NS2E67/74S、 PBD-PR8NS-NS2E67S、 PBD-PR8NS-NS2E74S、 PBD-PR8NP-G132A、 PBD-PR8PB1、 PBD-PR8PB2、 PBD-PR8PA、 PBD-PR8NP、 PBD-PR8M、 PBD PR8NS(Zejun Li, et al.JVI, 2005, 79(18) : 12058-12064)。 0040 ( 二 )、 制备 PR8 重组流感病毒 : 将上述获得的重组质粒按照相应组合, 转染于 293T细胞 ; 转染。
35、后的细胞上清用TPCK-Trypsin处理后, 接种SPF鸡胚, 培养 ; 收获鸡胚尿囊 液, 获得上述的 PR8 重组流感病毒。 0041 本发明的另一目的是上述 PR8 重组流感病毒的应用。 0042 具体技术方案如下 : 0043 上述任一所述的 PR8 重组流感病毒在制备流感疫苗中的应用。 0044 本发明的发明人发现当 PR8 病毒株的 NS2 蛋白第 67 位氨基酸由 E 突变为 S(E67S 点突变 ), 或 NS2 蛋白第 74 位氨基酸由 E 突变成 S(E74S 点突变 ), 或 NS2 蛋白第 64 和 74 位氨基酸同时由 E 突变成 S(E67S/E74S 点突变 )。
36、, 病毒突变株在鸡胚上的增殖能力明显提 高。此外, NP 蛋白的第 132 位氨基酸由 G 突变为 A 时 (G132A 点突变 ), 突变体的病毒株在 细胞上的增殖能力明显提高。利用这些高增殖能力突突病毒的内部基因和不同亚型 (H1、 H3、 H4、 H5、 H6、 H7、 H9、 H10) 流感病毒进行人工重组, 获得本发明所述的高效表达 HA 抗原的 重组病毒, 这些重组病毒可用于大规模制备流感疫苗。 附图说明 0045 下面结合附图和具体实施方式对本发明作进一步详细的说明。 0046 图 1 重组 PR8 突变病毒及重组 PR8 病毒在鸡胚上的血凝活性。 0047 图 2 重组 PR8。
37、 突变病毒及重组 PR8 病毒在细胞上的血凝活性。 具体实施方式 0048 实施例 1 重组质粒的构建与鉴定 0049 1、 引物设计 说 明 书 CN 102864129 A 7 6/21 页 8 0050 设计流感病毒PR8的NS和NP的突变引物 ; 流感病毒12bp反转录引物、 A型流感的 通用引物、 H5 和 H7HA 裂解位点突变引物由本实验室设计。上述引物具体的序列见表 1( 本 发明中所用到的引物序列, 具体见表 1), 均由上海 Invitrogen 公司合成。 0051 2、 两点定点突变 0052 采用两步 PCR 方法对预期突变氨基酸位点的核苷酸进行突变。首先以 PBD-。
38、PR8NP 为模板, 分别用BSPQI-NP-forward和PR8-NP-400R以及PR8-NP-387F和BSPQI-NP-reverse 为上下游引物, 在 Pfx DNA 聚合酶 (Invitrogen) 的作用下分别进行 PCR 扩增。PCR 获得的 两个片段, 通过胶回收试剂盒回收。以回收的两段 PCR 产物为模板, 以 BSPQI-NP-forward 和 BSPQI-NP-reverse 为引物, 进行第二次 PCR 融合。如此获得编码 G132A 点突变的 NP 蛋 白的 NP 基因片段。PCR 扩增程序为 94预变性 5min, 进入以下循环, 94变性 45s, 53退。
39、 火 45s, 72延伸 1min-1min45s, 运行 30 个循环, 最后再 72延伸 10min。反应结束后, PCR 产物在 1琼脂糖凝胶上进行电泳实验。 0053 用 同 样 的 方 法, 利 用 表 1 中 NS2 突 变 引 物 : PR8-NS2-193F、 PR8-NS2-204R, PR8-NS2-215F、 PR8-NS2-224R和NS基因扩增引物 : BSPQI-NS-forward和BSPQI-NS-reverse 分别获得含有 NS2 E67S、 E74S 和 NS2E67/74S 点突变的 NS 基因 PCR 扩增产物。 0054 具体如下 : 以PBD-PR。
40、8NS重组质粒为模板, 分别用引物SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 2 以及引物 SEQ ID.NO : 1 和 SEQ ID.NO : 10 在 Pfx DNA 聚合酶的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段PCR产物为模板, 以SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 10为引物, 进行第二次PCR融合, 获 得编码含有 E67S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段 ; 0055 以PBD-PR8NS重组质粒为模板, 分别用引物SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 4以及SEQ ID.NO : 3 和引物 SEQ ID.NO : 10 在 。
41、Pfx DNA 聚合酶的作用下分别进行 PCR 扩增 ; 以两段 PCR 产物为模板, 以SEQ ID.NO : 9和SEQ ID.NO : 10为引物, 进行第二次PCR融合, 获得编码含有 E74S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段 ; 0056 以上述的编码含有 E67S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段模板, 分别用引物 SEQ ID.NO : 9 和 SEQ ID.NO : 4 以及引物 SEQ ID.NO : 3 和 SEQ ID.NO : 10 在 Pfx DNA 聚合酶的作 用下分别进行PCR扩增 ; 以两段PCR产物为模板, 以SEQ ID.NO : 9和SE。
42、Q ID.NO : 10为引物, 进行第二次 PCR 融合, 获得编码同时含有 E74S 和 E74S 定点突变 NS2 蛋白的 NS 基因片段。 0057 3、 HA 和 NA 基因的 PCR 扩增 0058 HA 和 NA 基 因 来 源 于 不 同 亚 型 的 流 感 病 毒 (HxNy, 代 表 H1N1、 H3N2、 H4N2、 H5N1、 H6N4、 H7N7、 H9N2、 H10N8 亚 型 流 感 病 毒 )。 除 H7N7 亚 型 流 感 外, 其 他 病 毒 用 Trizol(Invitrogen) 抽提总 RNA。 0059 用 反 转 录 试 剂 盒 (TakaRa),。
43、 根 据 其 说 明 书, 用 12bp 引 物 5-AGCAAAAGCAGG-3(表1)为特异性引物, 合成cDNA第一链。 以获得的cDNA的第一链为 模板, 用 BSPQI-HA-forward、 BSPQI-HA-reverse 和 BSPQI-NA-forward、 BSPQI-NA-reverse 为上下游引物 ( 含有 BspQI 酶切位点, 如表 1), 分别扩增出片段的 H1N1、 H3N2、 H4N2、 H6N4、 H9N2、 H10N8 亚型流感病毒的 HA 和 H1N1、 H3N2、 H4N2、 H5N1、 H6N4、 H9N2、 H10N8 亚型流感病 毒的 NA 基。
44、因。PCR 扩增程序为 94预变性 5min, 进入以下循环, 94变性 45s, 53退火 45s, 72延伸 1min45s, 运行 30 个循环, 最后再 72延伸 10min。反应结束后, PCR 产物在 1.0琼脂糖凝胶上进行电泳验证。 说 明 书 CN 102864129 A 8 7/21 页 9 0060 抽提获得 H5N1 亚型流感病毒 HA 基因后, 用突变 H5HA 碱性裂解位点的下游 引物 H5-reverse 和 BSPQI-HA-forward、 突变碱性裂解位点的上游引物 H5-forward 和 BSPQI-HA-reverse 分别进行 PCR 扩增, 再用 B。
45、SPQI-HA-forward、 BSPQI-HA-reverse 引物进 行融合PCR。 PCR扩增程序为94预变性5min, 进入以下循环, 94变性45s, 53退火45s, 72延伸 1min45s, 运行 30 个循环, 最后再 72延伸 10min。反应结束后, PCR 产物在 1.0 琼脂糖凝胶上进行电泳验证。 获得含有低致病性禽流感毒株碱性裂解位点的H5的HA基因。 0061 在本研究中人工合成了 H7N7 流感病毒的 NA 基因和含有低致病性禽流感毒株碱 性裂解位点的 HA 基因, 并用 BSPQI-HA-forward、 BSPQI-HA-reverse 和 BSPQI-N。
46、A-forward、 BSPQI-NA-reverse 为上下游引物 ( 含有 BspQI 酶切位点, 如表 1), 分别进行了 PCR 扩增。 PCR 扩增程序为 94预变性 5min, 进入以下循环, 94变性 45s, 53退火 45s, 72延伸 1min45s, 运行 30 个循环, 最后再 72延伸 10min。反应结束后, PCR 产物在 1.0琼脂糖凝 胶上进行电泳验证。 0062 4、 PCR 产物的割胶回收 0063 电泳结束后在紫外光下从凝胶上切下目的 DNA 片段的琼脂糖凝胶, 用 DNA 快速回 收试剂盒回收 DNA。具体方法如下 : 在紫外灯下切下含有目的 DNA 。
47、的琼脂糖凝胶, 放入一无 菌的 1.5ml 的 EP 管中, 加入 3 倍凝胶体积 (100mg 100ul 体积 ) 的 Buffer DE-A( 凝胶 液), 混合均匀后于75加热, 间断混合(2-3min), 直至凝胶块完全熔化(约6-8min)。 加入 0.5个Buffer DE-A体积的Buffer DE-B(结合液), 混合均匀 ; 当回收的DNA片段小于400bp 时, 加入 1 个凝胶体积的异丙醇。将混合液转移到 DNA 制备管中, 12000g 离心 1min, 倒掉 收集管中的废液。将制备管置回收集管中, 加入 500ul Buffer W1( 洗涤液 ), 12000g 。
48、离 心 30s, 弃掉收集管中的废液。将制备管置回收集管中, 加入 700ul Buffer W2( 去盐液 ), 12000g 离心 1min, 弃掉收集管中的废液, 以同样的方法再洗一次。将制备管置回收集管 中, 12000g空离1min。 最后将制备管置于洁净的1.5ml EP管中, 在制备膜中央加入30ul 的去离子水, 室温静置 1min, 12000g 离心 1min 洗脱 DNA, 置于 -20保存备用。 0064 5、 酶切、 连接及转化 0065 上述PCR纯化产物与PBD载体(Zejun Li, et al.JVI, 2005, 79(18) : 12058-12064) 。
49、分别用 BSPQI 限制性内切酶进行消化, 用胶回收试剂盒回收目的片段与 PBD 质粒的酶切产 物, 然后用 T4 连接酶将酶切后的 PCR 产物与酶切处理的 PBD 载体进行连接。连接产物转化 于感受态细胞JM109(上海索莱生物科技有限公司), 无菌条件下涂布于含Amp的LB固体培 养基上, 37培养 8-20h。 0066 6、 重组质粒的鉴定 0067 挑取 LB 固体培养基上的单个菌落, 放入加有约 3ml 含 Amp 的 LB 液体培养基的试 管中, 37振荡培养 10h。将菌液用碱性抽提法抽提的质粒, 用 PCR 方法进行验证。鉴定为 阳性的质粒进行序列测定, 用 DNAstar 序列分析软件进行序列分析, 确定序列正确无误。分 别如 SEQID.NO : 20-23 所示的核酸序列, 或其氨基酸序列为 SEQ ID.NO : 24-27。此外, 各个 亚型的 HA 和 NA 基因的序列经核实也是正确的。 0068 表 1 NS。