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一种基因拷贝数的定量检测方法.pdf

  • 上传人:狗**
  • 文档编号:5047523
  • 上传时间:2018-12-08
  • 格式:PDF
  • 页数:23
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  • 摘要
    申请专利号:

    CN201210090061.2

    申请日:

    2012.03.30

    公开号:

    CN102618646A

    公开日:

    2012.08.01

    当前法律状态:

    终止

    有效性:

    无权

    法律详情:

    未缴年费专利权终止IPC(主分类):C12Q 1/68申请日:20120330授权公告日:20140820终止日期:20170330|||授权|||实质审查的生效IPC(主分类):C12Q 1/68申请日:20120330|||公开

    IPC分类号:

    C12Q1/68

    主分类号:

    C12Q1/68

    申请人:

    南方医科大学

    发明人:

    周万军; 徐湘民

    地址:

    510515 广东省广州市白云区沙太南路1023号

    优先权:

    专利代理机构:

    广州嘉权专利商标事务所有限公司 44205

    代理人:

    谭英强

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    内容摘要

    本发明公开了一种基因拷贝数的定量检测方法,包括如下步骤:分别设计目的基因和参比基因扩增序列的引物、荧光探针,及目的基因扩增序列的封闭探针;样本检测:以待检DNA样本作为模板,对目的基因和参比基因进行多重TaqMan荧光定量PCR反应,并以已知目的基因拷贝数的DNA样本为对照样本,分别记录Ct值;结果分析。本发明能直接定量检测功能基因的拷贝数,直接反映受检基因是否有缺失、缺失的数目、以及多拷贝(CNVs),从而实现基因缺失和基因多拷贝的同步快速检测,本发明方法灵敏度高,只需普通的荧光定量PCR仪就能完成基因缺失和基因多拷贝的同步快速检测,通过实验也证实本发明的方法准确可靠。

    权利要求书

    1.一种基因拷贝数的定量检测方法,包括如下步骤:1)分别选取目的基因、参比基因的扩增序列;2)分别设计目的基因和参比基因扩增序列的引物、荧光探针,及目的基因扩增序列的封闭探针,封闭探针包括上游封闭探针和下游封闭探针;3)样本检测:以待检DNA样本作为模板,对目的基因和参比基因进行多重TaqMan荧光定量PCR反应,并以目的基因拷贝数已知的DNA样本为对照样本,分别记录Ct值;4)结果分析:计算待检样本目的基因的拷贝数相对定量值,判断分析检测样本目的基因的拷贝数。2.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:封闭探针的3’末端经过修饰失去了延伸能力。3.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:目的基因的引物、封闭探针分别与目的基因的结合位点相同。4.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:目的基因、参比基因的引物的5’末端分别引入了4~7 bp与基因组模板非互补的碱基序列。5.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:封闭探针比目的基因的引物的Tm值高3~5℃。6.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:扩增序列为一段GC含量40~60%、长度70~150bp的DNA序列,且与基因非扩增区无同源序列。7.根据权利要求2所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:封闭探针的3’末端经Spacer C3修饰。8.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:进行多重TaqMan荧光定量PCR反应时,先预扩增3~5个循环,再进行实时荧光定量检测。9.根据权利要求8所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:预扩增的变性温度为94~96℃,退火温度为52~55℃;实时荧光定量检测的变性温度为90~92℃,退火温度为60~62℃。10.根据权利要求1所述的基因拷贝数的定量检测方法,其特征在于:参比基因为待检DNA样本所属物种基因组中的一种看家基因。

    说明书

    一种基因拷贝数的定量检测方法

    技术领域

    本发明属于分子生物学技术领域,涉及一种基因拷贝数的定量检测方法。

    背景技术

    近年来的研究发现,基因拷贝数变异(copy number variants, CNVs) 和单核苷酸多态性(SNPs)一样,是分子进化和遗传多态性的重要遗传标志,也是某些疾病的发病分子基础,当前越来越多的CNVs被发现并提交到相应的分子生物学数据库。

    就分子机制而言,CNVs的实质是一段DNA序列的拷贝数变化。某一个体的一套基因组DNA中,正常情况下某等位基因的拷贝数为2个,如果两条染色体上的此基因均缺失则拷贝数为0,如果其中1条染色体上缺失则拷贝数为1,如果其中1条染色体上于此基因序列后又有1段此基因序列则拷贝数为3(常称之为多拷贝),如果2条染色体均出现此基因的重复序列,则拷贝数为4等。由于基因拷贝数的差异,往往直接导致所编码蛋白表达量及表达水平的变化,从而导致一系列的生物学效应。就人类而言,CNVs不仅可以为人类进化研究提供信息,且CNVs所导致的生物学效应,涉及到药物敏感性、药物治疗靶点、疾病的发病机制分析、疾病诊断标志物、疾病治疗疗效评估等众多领域,因此,基因CNVs检测有着非常重要的实际意义。

    基因拷贝数变异可分为基因缺失和基因多拷贝。当前的检测技术方案主要为针对基因缺失及多拷贝分别进行检测与分析,也就是采用一套技术方案检测基因缺失,采取另一套技术方案检测基因多拷贝。目前,检测基因缺失的主要技术是跨越断裂点PCR(gap-PCR)技术;检测基因多拷贝的技术报道较少,比较典型的为采用长片段PCR扩增检测基因三联体(如珠蛋白基因α1和/或α2)。最近,MLPA技术(多重连接探针扩增技术Multiplex ligation-dependent Probe amplification)的开发与应用,虽然能同时检测基因缺失和基因多拷贝,但其检测成本高、操作繁琐、需要特殊的仪器设备等技术限制,不适合常规使用。因此,开发一种准确稳定、简单实用,能同时检测基因缺失和基因多拷贝的常规技术与方法,是当前的迫切需要。

    生物体基因组中的看家基因(house-keeping gene,如哺乳动物的β肌动蛋白基因、甘油醛-3-磷酸脱氢酶基因等),已证实其没有拷贝数变异,即1套基因组中,其无论在什么情况下都是2个拷贝。根据定量PCR的技术原理,结合基因缺失和基因多拷贝的拷贝数变化规律,可以获知:当HKG和受检功能基因的均为正常的2个拷贝,且2个PCR反应的扩增效率均为100%,则两者扩增达到一定产物量的循环数相等,即Ct值相等,Ct值差异为0;如果功能基因缺失了1个,则其扩增达一定产物量较HKG多1个循环,即Ct值差异为1;如果功能基因为3个拷贝,则其扩增达一定产物量较HKG少0.27个循环,即Ct值差异为-0.27;如果功能基因完全缺失(拷贝数为0),就不会有其扩增曲线及Ct值。

    根据上述规律,结合目前广泛应用的多重TaqMan实时定量PCR技术,通过体系优化及调整,其分析灵敏度可达到的Ct值差异为0.8~1.0,故能准确检测功能基因0、1、2拷贝,但不能准确分析Ct值差异仅为0.27的3个拷贝,故多重TaqMan实时定量PCR技术也存在一定的局限性。因此,如果能发明有效的技术与方法,使功能基因缺失和多拷贝所导致的Ct值差异增大,以达到定量PCR技术的灵敏度有效范围,也就能应用定量PCR技术实现基因缺失和多拷贝的同时快速检测。

    发明内容

    本发明的目的在于提供一种基因拷贝数的定量检测方法。

    本发明所采取的技术方案为:

    一种基因拷贝数的定量检测方法,包括如下步骤:

    1)  分别选取目的基因、参比基因的扩增序列;

    2)  分别设计目的基因和参比基因扩增序列的引物、荧光探针,及目的基因扩增序列的封闭探针,封闭探针包括上游封闭探针和下游封闭探针;

    3)  样本检测:以待检DNA样本作为模板,对目的基因和参比基因进行多重TaqMan荧光定量PCR反应,并以目的基因拷贝数已知的DNA样本为对照样本,分别记录Ct值;

    4)  结果分析:计算待检样本目的基因的拷贝数相对定量值,判断分析检测样本目的基因的拷贝数。

    优选的,封闭探针的3’末端经过修饰失去了延伸能力。

    优选的,目的基因的引物、封闭探针分别与目的基因的结合位点相同。

    优选的,目的基因、参比基因的引物的5’末端分别引入了4~7bp与基因组模板非互补的碱基序列。

    优选的,封闭探针比目的基因的引物的Tm值高3~5℃。

    优选的,增加封闭探针3’末端与目的基因的结合位点,使封闭探针比目的基因的引物的Tm值高3~5℃。

    优选的,扩增序列为一段GC含量40~60%、长度70~150bp的DNA序列,且与基因非扩增区无同源序列。

    优选的,封闭探针的3’末端经Spacer C3修饰。

    优选的,进行多重TaqMan荧光定量PCR反应时,先预扩增3~5个循环,再进行实时荧光定量检测。

    优选的,预扩增的变性温度为94~96℃,退火温度为52~55℃;实时荧光定量检测的变性温度为90~92℃,退火温度为60~62℃。

    优选的,参比基因为待检DNA样本所属物种基因组中的一种看家基因。

    本发明在进行多重TaqMan荧光定量PCR反应前,需先对多重TaqMan荧光定量PCR反应体系进行优化,优化的步骤如下:

    1)      优化体系中目的基因和参比基因的引物、荧光探针、缓冲液、Taq酶、镁离子、dNTPs、模板DNA的浓度,使多重TaqMan荧光定量PCR体系中各单重PCR反应的扩增效率达95~100%。 

    2)      优化体系中目的基因的封闭探针浓度,使多重TaqMan荧光定量PCR体系的Ct值比未加封闭探针的Ct值高1.0~1.5。

    由于看家基因在群体中无拷贝数变异现象,故将看家基因作为参比基因。

    本发明的技术方案中的要求及方法原理如下:

    (1)初始模板封闭的技术策略:本发明设计的封闭探针,能与部分初始模板的目的基因扩增序列位点结合,由于封闭探针的3’末端经过修饰失去了延伸能力,故封闭探针能将部分初模板封闭,使其在PCR反应中不能扩增。而目的基因的封闭探针、引物与目的基因的结合位点相同,故封闭探针、引物与模板竞争性结合,封闭探针与模板结合后目的基因不扩增,引物与模板结合后目的基因能正常扩增,这样就导致目的基因和内参基因不能等比例扩增,以至于扩大了目的基因和参比基因Ct值之间的比值,扩大了受检样本初始模板拷贝数差异。

    (2)封闭探针的设计原则及通用要求:本发明所采用的封闭策略,是基于封闭探针和引物对初始模板的竞争性结合和选择性封闭,因此,封闭探针和引物所结合的模板DNA序列基本一致,所以引物和封闭探针的DNA序列也基本一致,这是关于封闭探针设计的第一个通用要求;其次,封闭的目的是使一部分初始模板在PCR反应中不能扩增,也就是封闭探针与模板的结合不会导致扩增反应,因此,封闭探针的结构也就不同于引物,必须阻止其在PCR反应中发生3’端的延伸,也就是于封闭探针3’末端进行修饰,如Spacer C3标记等,以阻止其3’端延伸,这是关于封闭探针设计的第二个通用要求;另外,封闭探针的Tm值须稍高于扩增引物3~5℃,以保证在退火过程中,封闭探针稍先与初始模板结合以达到封闭目的,为满足这一要求,可增加封闭探针3’ 末端与目的基因的结合位点,即增加封闭探针3’末端与目的基因互补的碱基序列,这是封闭探针设计的第三个通用要求。

    (3)反应体系中封闭探针加入量的确定:封闭探针量过多则使有效扩增模板太少而影响定量PCR反应的敏感性与稳定性,封闭探针量太少则不能达到定量检测的灵敏度的Ct值差异要求。本发明的技术方案中,首先对多重TaqMan荧光定量PCR体系进行优化调整,使各PCR反应的扩增效率均基本达到100%,然后再调整所加入的封闭探针量,采用的具体方法是在反应体系中加入DNA样本量和扩增引物浓度不变的情况下,分别加入不同浓度的封闭探针,定量检测结果可以观察到,随着封闭探针浓度的增加,目的基因定量PCR的Ct值增高,以未加封闭探针反应体系的Ct值为标准,Ct值增高1.0~1.5的封闭探针浓度为合适浓度。

    (4)短片段目的序列嵌套PCR预扩增设计:为保证定量PCR的分析灵敏度达到Ct值差异0.8~1.0,除对体系组份的常规优化外,本发明采用了短片段目的序列嵌套PCR预扩增设计,以确保检测体系的特异性、敏感性、稳定性和准确性,其具体的技术要求是:PCR扩增序列少于150bp,上下游引物5’端分别引入4~7bp基因组模板非互补碱基,先于高变性温度结合低退火温度预扩增3~5个循环,以合成下一步荧光定量检测的人工模板序列;再于低变性温度给合高退火温度进行实时荧光定量检测。这种设计,采用短片段扩增,可明显提高PCR体系扩增效率和敏感性;低变性温度给合高退火温度可保证定量检测的模板为预扩增所合成的人工模板序列,减少与待检样本基因组DNA其它序列的非特异性扩增而提高体系的特异性、稳定性和准确性。

    (5)样本检测设置要求及数据分析模式:根据定量PCR技术原理,如果2个PCR反应的扩增效率均为100%,且初始模板拷贝数相同,则两者扩增达到一定产物量所需的循环数相同,即Ct值相同。然而,在实际检测中,由于仪器荧光读取性能及阈值设定的差异,会导致2个PCR反应的Ct值不相等,但是,在同一仪器、同一批试剂和同一批检测反应中,两者之间的差异为一恒定值。因此,在每一批样本检测时,以待检目的基因拷贝数已知的正常标本为对照样本,取1~2份对照样本与待检样本同样条件下进行多重PCR检测,结合文献报道的2-??Ct相对定量数据分析模式(Kenneth J,et al. METHODS. 2001;25: 402–408.),以对照样本的1~2个PCR反应的Ct值差异(?Ct)为标准,将待检样本的?Ct与其比较,计算两?Ct间的差异值(??Ct),最后计算待检样本目的基因拷贝数相对定量值:2-??Ct,该值即为:待检样本目的基因相对于内参基因拷贝数的倍数,故可得到目的基因的拷贝数,但由于实际检测中因为操作过程及仪器本身的误差,得到的数值近似等于理论值,具体的计算公式如下:

    待检样本(或对照样本)目的基因?Ct=Ct_目的基因-Ct_参比基因

    待检样本目的基因??Ct=?Ct_待检样本-?Ct_对照样本

    待检样本目的基因拷贝数相对定量值:2-??Ct。

    本发明的有益效果是:

    本发明能直接定量检测功能基因的拷贝数,直接反映受检基因是否有缺失、缺失的数目、以及多拷贝(CNVs),从而实现基因缺失和基因多拷贝的同步快速检测,本发明方法灵敏度高,只需普通的荧光定量PCR仪就能完成基因缺失和基因多拷贝的同步快速检测,通过实验也证实本发明的方法准确可靠。

    本发明采用初始模板封闭策略,在检测体系中加入一定量目的基因封闭探针,利用探针、引物与扩增模板的竞争性结合,将一部分初始模板封闭,使其在PCR反应中不能扩增,使功能基因缺失和多拷贝所导致的Ct值差异增大。

    本发明采用多重TaqMan实时荧光定量PCR技术,以短片段扩增子设计方式,经过对核酸模板的选择性封闭及扩增子模板预扩增,能定量检测样本中基因组目的基因拷贝数。

    附图说明

    图1是不同封闭探针浓度的小鼠SRY基因定量PCR检测Ct值变化图;

    图2是小鼠SRY基因CNVs封闭前后?Ct及2-??Ct值对比分析图;

    图3是不同封闭探针浓度的α1、α2基因定量PCR检测Ct值变化图。

    具体实施方式

    下面结合具体的实施例对本发明作进一步的说明,但并不局限如此。

    实施例1  小鼠SRY质粒载体基因拷贝数的检测

    本实施方案选择小鼠SRY基因质粒载体为检测对象,应用本发明同时检测基因缺失和基因多拷贝的方法,检测SRY基因拷贝数,通过对基因拷贝数结果的分析,以观察本方法用于检测目的基因缺失及多拷贝的可行性与有效性,尤其是封闭探针的封闭效果观察。

    选择依据及代表性:

    采用基因克隆技术,将一段约400bp的小鼠SRY基因序列,一段约400bp的小鼠看家基因β-Actin,连接至T载体环状DNA序列中,分别作为目的基因和参比基因的检测对象。所构建的T载体,经转化、增菌、分离、纯化后,采用紫外分光光度法检测其浓度及纯度。由于所采用的载体相同,克隆的片段长度基本一致,所以,根据其浓度配制成目的基因与参比基因拷贝数比例为0:1、0.5:1、1:1、1.5:1、2:1的基因拷贝数已知样本,其对应的则是目的基因0拷贝(缺失2个)、1拷贝(缺失1个)、2拷贝(正常)、3拷贝(多拷贝)、4拷贝(多拷贝);然后,根据本发明所建立的检测方法进行目的基因拷贝数定量检测,以验证本方法的可行性与有效性。

    实验步骤:

    1、目的基因和参比基因扩增序列的选择

    以小鼠SRY基因为目的基因、小鼠β-Actin(β肌动蛋白)为参比基因,按本发明的技术策略要求,选取扩增序列:

    SRY基因的扩增序列见SEQ ID NO. 1,β-Actin基因的扩增序列见SEQ ID NO. 2。

    2、引物、荧光探针、封闭探针设计

    按本发明方法,设计相应的引物、荧光探针、封闭探针,包括特异性扩增SRY的上下游引物,上下游封闭探针和荧光探针,β-Actin基因的上下游引物和荧光探针,各引物、探针序列见表1。表中,引物5’末端的小写字母为与基因组模板非互补的碱基序列,封闭探针3’端的小写字母为增加的与基因组模板互补的碱基序列,使SRY封闭探针比SRY引物的Tm值高4℃。

    3、双重TaqMan荧光定量PCR体系优化

    经过一系列的优化、调整及扩增效率评价,所确定的双重TaqMan荧光定量PCR反应优化体系如表2所示,本方案用的是质粒DNA,所以于体系中加入鲑鱼精以构建包含多种DNA序列的基质环境。优化PCR扩增反应条件:95℃预变性5min,94℃ 30sec+58℃ 30sec+ 52℃ 30sec、3个循环,90℃ 20sec+60℃ 1min、35个循环,于60℃退火步骤末采集荧光信号。PCR扩增条件中,94℃为预扩增的变性温度,“58℃ 30sec”为封闭探针杂交封闭过程,52℃为预扩增的退火温度。所使用的仪器为Strategene MX3005p五通道荧光定量PCR仪,双重TaqMan荧光定量PCR反应体系中各单重PCR反应的扩增效率为95~100%。

    4、样本检测

    按2-??Ct值基因拷贝数相对定量数据分析模式要求,及本发明的技术策略,在每一轮PCR检测的样本中,以SRY与β-Actin基因拷贝数比例为1:1的样本作为对照样本,取4份与待检样本在同样条件下进行多重PCR检测,其中2份的数据计算对照样本,另外的则作为质控样本,应用上述已优化的反应体系及反应条件进行检测,记录检测Ct值。

    5、结果分析

    根据定量检测所获得的Ct值,按下述公式进行计算:

    待检样本(或对照样本)目的基因?Ct=Ct_目的基因-Ct_参比基因

    待检样本目的基因??Ct=?Ct_待检样本-?Ct_对照样本

    待检样本目的基因拷贝数相对定量值:2-??Ct。

    实验结果:

    1、不同封闭探针浓度的封闭效果(封闭探针浓度优化):

    本实施例中,在反应体系中所加入基因组DNA样本量和扩增引物浓度不变的情况下,分别加入不同浓度的封闭探针,结果显示,随着封闭探针浓度的增加,目的基因定量PCR分析的Ct值增高(见表3和图1)。Ct值增高,则直接反映定量分析的模板数减少,也就证实了封闭探针封闭了一部分原始模板,使其在PCR反应中不能扩增,导致了定量分析的模板数减少而Ct值增高。本实验中,当加入0.2 pmol/20ul封闭探针量时,其Ct值增高幅度为1.26,此即封闭探针合适浓度。

    2、小鼠SRY基因CNVs样本封闭前后2-??Ct值比较:

    本实施例中,将小鼠β-Actin基因和SRY基因质粒载体,按比例配制成0.5:1、1:1、1:1.5、1:2的已知拷贝数比例样本;然后采用本方案所建立的,包含和未含封闭探针的检测体系,同时进行检测,对比分析定量分析的?Ct值及2-??Ct值。实验结果显示(见表4和图2),目的基因封闭后,其定量检测Ct值增高,因此与参比基因相比较的?Ct值大;基于正常对照样本的数据分析2-??Ct值,目的基因1拷贝封闭后较未封闭稍有减小(表4斜体字部分);目的基因3拷贝和4拷贝封闭后较未封闭明显增高(表4下划线部分)。

    结果统计的数据显示,经过封闭后,SRY基因拷贝数为1、2、3、4的?Ct值分别为3.60-4.05、2.40-2.43、1.49-1.56、0.85-0.94,不同拷贝数之间的差异值均大于1.0,达到定量PCR的灵敏度要求。

    实施例2   人类α珠蛋白基因的基因拷贝数检测

    本实施方案选择人类α珠蛋白基因为检测对象,应用所发明的同时检测基因缺失和基因多拷贝的方法,检测其拷贝数,通过对基因拷贝数结果的分析,以观察本方法用于检测目的基因缺失及多拷贝的可行性与有效性,尤其是方法的准确性与稳定性。

    选择依据及代表性:

    α珠蛋白基因的CNVs在人类基因组中很常见,有研究认为这种现象是人类进行化过程中与疟疾的自然选择相关。α珠蛋白基因缺失和多拷贝,均可导致所编码α珠蛋白表达降低可增高,而导致一系列的生物学性状:基因缺失导致α珠蛋白表达减少而导致α-地贫,基因多拷贝导致α珠蛋白表达增加而加重β-地贫症状。另外,α珠蛋白基因簇中,α1和α2这两个基因为高GC含量,且高度同源,其编码的多肽链完全相同,基因结构中,两者的X、Y、Z盒的DNA序列基本相同,仅在第二内含子及3’端非翻译区有些区别,而且还存在α2与α1基因在缺失情况下的形成融合基因的情况,这种情况在哺乳动物的基因组DNA序列中并不少见。并且,目前α珠蛋白基因缺失检测的常规方法为gap-PCR技术,尚存在难以克服的假阳性及假阴性技术瓶颈;而对于多拷贝的检测,则必须另外进行检测,且基本上只局限于α珠蛋白基因三联体的分析。根据上述以α珠蛋白基因DNA序列的特殊性与代表性,和拷贝数变化为本质的分子机制,以及以判断功能基因拷贝数为最终目标的分子生物学检测基本策略,说明所选择的研究靶点具有典型的代表性,满足所发明技术方案的实施及验证。因此,本实施例以人类α珠蛋白基因的CNVs检测为研究靶点,应用所发明的“基因组拷贝数检测的荧光定量PCR技术方案”,实现同一体系同步检测α珠蛋白基因缺失及多拷贝,验证了此技术方案的可行性与有效性,为此技术方案广泛用于基因组DNA拷贝数定量检测提供理论指导及应用参考。

    实验步骤:

    1、目的基因和参比基因扩增序列的选择

    以人的α1和α2珠蛋白基因为目的基因、人的β-Actin(看家基因,β肌动蛋白)为参比基因,按本发明的技术策略要求,选取扩增序列:

    α1珠蛋白基因的扩增序列见SEQ ID NO. 11,α2珠蛋白基因的扩增序列见SEQ ID NO. 12,β-Actin基因的扩增序列见SEQ ID NO. 13。

    2、引物、荧光探针、封闭探针设计

    按本发明方法,设计相应的引物、荧光探针、封闭探针,包括特异性扩增α1和α2珠蛋白基因的上、下游引物,上、下游封闭探针和荧光探针,β-Actin基因的上、下游引物和荧光探针,各引物、探针序列见表5。表中,α1的封闭探针比引物的Tm值高3~4℃,α2的封闭探针比引物的Tm值高3~4℃。表中,引物5’末端的小写字母为与基因组模板非互补的碱基序列,封闭探针3’端的小写字母为增加的与模板互补的碱基序列,使SRY的封闭探针比SRY的引物Tm值高3~4℃。

    3、三重TaqMan荧光定量PCR体系优化调整

    经过一系列的优化、调整及扩增效率评价,所确定的三重TaqMan荧光定量PCR反应优化体系如表6所示;优化PCR扩增条件为95℃预变性8min,94℃30sec+58℃30sec+52℃30sec、3个循环,90℃20sec+60℃1min、35个循环,于60℃退火步骤末采集荧光信号。PCR扩增条件中,94℃为预扩增的变性温度,“58℃ 30sec”为封闭探针杂交封闭过程,52℃为预扩增的退火温度。所使用的仪器为Strategene MX3005p五通道荧光定量PCR仪,三重TaqMan荧光定量PCR反应体系中各单重PCR反应的扩增效率均为95~100%。

    4、样本检测

    按2-??Ct值基因拷贝数相对定量数据分析模式要求,及本发明的技术策略,在每一轮PCR检测的样本中,以α珠蛋白基因拷贝数已知(一般情况下选择α1和α2珠蛋白基因拷贝数均为2的正常标本)的gDNA标本作为对照样本,取3~4份与待检样本在同样条件下进行多重PCR检测,其中2份作为对照样本,另外的则作为质控样本,应用上述已优化的反应体系及反应条件进行检测,记录检测Ct值。

    5、结果分析

    计算公式同实施例1。

    实验结果:

    1、不同封闭探针浓度的封闭效果(封闭探针浓度优化):

    本实施例中,在反应体系中所加入基因组DNA样本量和扩增引物浓度不变的情况下,分别加入不同浓度的封闭探针,结果显示,随着封闭探针浓度的增加,目的基因定量PCR分析的Ct值增高(见表7和图3)。Ct值增高,则直接反映定量分析的模板数减少,也就证实了封闭探针封闭了一部分原始模板,使其在PCR反应中不能扩增,导致了定量分析的模板数减少而Ct值增高。本实验中,当加入封闭探针量α1基因为0.3 pmol/20ul、α2基因为0.1 pmol/20ul时,其Ct值增高幅度为1.0~1.5,此即封闭探针合适浓度。

    2、α珠蛋白基因CNVs样本封闭前后2-??Ct值比较:

    本实施例中,收集了正常对照,以及基因型为αα/αα、-α3.7/αα、-α4.2/αα、-SEA/αα、αααanti3.7/αα、αααanti4.2/αα、-α3.7/-α3.7、-α4.2/-α4.2的样本各2例,这些样本包含了α1或/和α2珠蛋白基因0、1、2、3个拷贝(见表8所列)。采用本方案所建立的包含和未含封闭探针的检测体系,同时进行检测,对比分析定量分析的ΔCt值及2-ΔΔCt值。实验结果显示(见表8),目的基因封闭后,其定量检测Ct值增高,因此与参比基因相比较的ΔCt值大;基于正常对照样本的数据分析2-ΔΔCt值,目的基因1拷贝封闭后较未封闭稍有减小(表8加粗斜体字部分);目的基因3拷贝封闭后较未封闭明显增高(表8加粗下划线字体部分)。

    结论:本实施例的实验结果证明,本发明所述的方法可广泛用于基因组拷贝数CNVs定量检测。

    <110>  南方医科大学

     

    <120>  一种基因拷贝数的定量检测方法

     

    <130> 

     

    <160>  26   

     

    <170>  PatentIn version 3.5

     

    <210>  1

    <211>  80

    <212>  DNA

    <213>  Mouse

     

    <400>  1

    ccactgcaga aggttgtaca gttttgttga ggcaactgca ggctgtaaaa tgccactcct       60

     

    ctgtgacact ttagccctcc                                                   80

     

     

    <210>  2

    <211>  76

    <212>  DNA

    <213>  Mouse

     

    <400>  2

    taaacctaga aggttgctct gacaaccaca gggcccaccc tcaccaagct aaggatgctt       60

     

    agcttacctt gatctt                                                       76

     

     

    <210>  3

    <211>  24

    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  3

    gatgaccact gcagaaggtt gtac                                              24

     

     

    <210>  4

    <211>  23

    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  4

    ggtgaggagg gctaaagtgt cac                                               23

     

     

    <210>  5

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    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  5

    ggtgataaac ctagaaggtt gctctg                                            26

     

     

    <210>  6

    <211>  28

    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  6

    ggtctaagat caaggtaagc taagcatc                                          28

     

     

    <210>  7

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    <212>  DNA

    <213>  人工序列

     

    <400>  7

    ccactgcaga aggttgtaca g                                                 21

     

     

    <210>  8

    <211>  20

    <212>  DNA

    <213>  人工序列

     

    <400>  8

    ggagggctaa agtgtcacag                                                   20

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  人工序列

     

    <400>  9

    ctgcaggctg taaaatgcca ctcct                                             25

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  人工序列

     

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    aaccacaggg cccaccctca                                                   20

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  Human

     

    <400>  11

    gggtgctgac ctgatgcact cctcaaagca agatcttctg ccagaccccc aggaaatgac       60

     

    ttatcagtga tttctcagg                                                    79

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  Human

     

    <400>  12

    cctgtgtaca acttcctatt ctcagtgaag tgtctcccct gcatcccttt cagccagttc       60

     

    attcagctct gcg                                                          73

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  Human

     

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    cctactgtgc acctacttaa tacacactcc aaggccgctt tacaccagcc tcatggcctt       60

     

    gtcacacgag ccagtgt                                                      77

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  14

    gcttgggtgc tgacctgatg                                                   20

     

     

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    <212>  DNA

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    <400>  15

    cgttccctga gaaatcactg ataagtc                                           27

     

     

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    <212>  DNA

    <213>  人工引物

     

    <400>  16

    tcgtcctgtg tacaacttcc tattctc                                           27

     

     

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    <212>  DNA

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    <212>  DNA

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    caaggccgct ttacaccagc ct                                                22

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